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PROPIEDADES DE MEMBRANAS. - Importancia biológica de los dominios

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(1)

PROPIEDADES DE MEMBRANAS

-Transiciones de fase

-Tipos

-Definiciones -Regulación

- Importancia biológica de los dominios

-dominios en membranas biológicas -forma de caracterizarlos

-Propiedades dinámicas

-difusion lateral - formas de medirla

(2)

MEMBRANAS

:

TIPOS DE FASES

Nomenclatura

L = lamelar

H = hexagonal

Q = cúbica

I:

topología normal ( aceite en agua)

II:

topología invertida ( agua en aceite)

Letras:

Indican la conformación de la cadena c cristalina

β fase gel ordenada

α fase líquida

αβ coexistencia de fases gel y líquida

Subíndices

Letra mayúscula para determinar

(3)

Fase cristalina:

orden a largo y corto alcance en tres dimensiones

Fase gel:

cadenas hidrocarbonadas ordenadas, en conformación trans pero con capacidad de rotación sobre el eje longitudinal en una escala de tiempo de 100ns

MEMBRANAS

:

TIPOS DE FASES

Fase Líquida:

cadenas en conformación líquida,

expansión del área interfacial por molécula ( aprox 15-30%) y rápida difusión lateral de las moléculas

(D trans≅ 10-11 m2 sec-1).

(4)
(5)

MEMBRANAS

:

TRANSICIONES DE FASES

3 Tipos principales

1.- Transiciones entre fases lamelares ordenadas:

cristal-cristal cristal-gel gel-gel

2.- Transiciones entre fases lamelares y fases no lamelares

ej. fase lamelar-solución micelar

3.- Transiciones entre fases fluidas

(6)

MEMBRANAS

:

TRANSICIONES DE FASES

Variables termodinámicas intensivas que pueden inducir

cambios de fase:

temperatura y presión

Condiciones biológicas:

temperatura y presión constantes

Otros factores que pueden inducir cambios de fase:

cambios en la hidratación

cambios en el pH

cambios en la concentración de sales

campos eléctricos

(7)

MEMBRANAS

:

TRANSICIONES DE FASES

Efecto de la estructura química:

Cadena hidrocarbonada

La temperatura de transición

T

t aumenta monotónicamente con el aumento en la longitud de la cadena debido a que las entalpías y entropías de la transición

H

t

S

t aumentan con cada grupo CH2 adicional.

La presencia de dobles enlaces cis o trans reduce drásticamente la temperatura de transición gel-fluido ( típicamente 60 0 C un enlace cis ). El efecto máximo se consigue con el doble enlace en el centro de la cadena

Uniones de tipo eter entre la cadena y la cabeza polar aumentan la temperatura de transición entre 1-5 0 C , inducen la formación de fases gel interdigitadas

(8)

MEMBRANAS

:

TRANSICIONES DE FASES

Cabezas polares

Son importantes:

• la polaridad

• la carga electrostática

• el volúmen de la cabeza polar •las interacciones entre cabezas

Ej. fosfatidiletanolaminas pueden formar puentes de hidrógeno entre ellas, lo que aumenta la temperatura de transición

Efectos del soluto

Los iones presentes en la solución interaccionan con los lípidos cargados reduciendo las repulsiones electrostáticas

El efecto del pH es complejo:

• el pK de los grupos ionizables en la superficie puede diferir hasta en 3 unidades de pH con respecto al pK de los grupos en solución

• el cambio en la ionización de los grupos afecta tanto a las interacciones electrostáticas como al estado de hidratación

(9)

MEMBRANAS

:

TRANSICIONES DE FASES

Efecto del colesterol:

Difumina la transición gel-fluido: fluidiza la fase gel y ordena la fase fluida

Solventes no polares

Se distribuyen preferentemente en el interior hidrofóbico

Facilitan la formación de fases invertidas

(10)

MEMBRANAS

:

TRANSICIONES DE FASES

Efecto de la posición de la insaturación en la cadena en la temperatura de transición

Efecto del tipo de cabeza polar y de la

longitud de la cadena en la temperatura de

(11)

MEMBRANAS

:

TRANSICIONES DE FASES

Efecto del pH del medio en la temperatura de

transición

Efecto de la fuerza iónica del medio en

la temperatura de transición

(12)
(13)

MEMBRANAS

Los dominios tienen distintas propiedades físicas

Membrana en fase sólida: no se puede estirar lateralmente, solo se puede doblar en una dirección ( como una hoja de papel)

Membrana en fase fluida: permite deformaciones laterales que

se relajan mediante el flujo lateral , por lo que se pueden doblar en dos dimensiones y formar segmentos esféricos ( como un globo)

La presencia de dominios: contraresta la cooperatividad de los lípidos y permite acomodar asimetrías y zonas especializadas

(14)

DOMINIOS EN MEMBRANAS BIOLOGICAS

Dominios fluidos

: muchos procesos importantes de invaginación, evaginación a escalas micrométricas requieren curvaturas de dominios fluidos

Dominios sólidos

( Rafts ): fracciones de membrana resistentes a la extracción con detergentes y enriquecidas en colesterol y esfingomielina. Tamaño alrededor de 50 nm. Enriquecidos en algunos tipos de proteínas (caveolina, por ejemplo)

Dominios de proteínas

: Agregación de proteínas de membrana:

• receptores de sinapsis químicas ( anclados por interacción a proteínas citoplasmáticas) • agregación de receptores inducida por interacción con ligandos

(15)

DOMINIOS EN MEMBRANAS BIOLOGICAS

GM1 = glicoesfingolípido

PLAP = “placental akaline phospatase” TfR = “transferin receptor”

(16)

MEMBRANAS:

PRESENCIA DE PROTEINAS

La presencia de proteínas también puede generar “ fases laterales” gobernadas por:

interacciones entre proteínas

interacciones de las proteínas de membrana con proteínas del citoesqueleto

composición lipídica de la membrana

(17)

MEMBRANAS:

TENSION LATERAL

Perfil de tensión lateral de la bicapa En el equilibrio la tensión lateral neta (la integral del perfil a través de la membrana)

es igual a cero

(18)

MEMBRANAS

:

COEXISTENCIA DE FASES

Los dominios en membranas biológicas son importantes para la función, dinámicos y muy complejos

Estudios teóricos y experimentales en modelos sencillos ( mezclas de lípidos ) permiten conocer y cuantificar los parámetros que determinan la segregación de fase, la forma de los dominios ( determinada por la tensión de línea y la interacción entre los dipolos de las moléculas en los dominios), las propiedades físicas de las membranas, ...

Existen múltiples formas de reconstitución de proteínas de membrana en sistemas lipídicos ( liposomas, liposomas gigantes, membranas ancladas,...) de composición conocida que permiten estudiar más en detalle la importancia de la interacción lípido-proteína en la función biológica

(19)

MEMBRANAS

:

COEXISTENCIA DE FASES

Formas de estudiar y/o visualizar los dominios lípídicos:

• Calorimetría:

permite medir cantidades termodinámicas

• Métodos espectroscópicos:

fluorescencia, resonancia magnética nuclear, resonancia de spin electrónico

• Microscopía electrónica

• Microscopía de fuerzas atómicas

• Difracción de rayos X

(20)

MEMBRANAS

:

COEXISTENCIA DE FASES

(21)

MEMBRANAS

:

COEXISTENCIA DE FASES

(22)

MEMBRANAS

:

COEXISTENCIA DE FASES

(23)

MEMBRANAS:

PROPIEDADES DINÁMICAS

1.- Movimientos conformacionales de las cadenas

2.- Difusión rotacional de las moléculas de lípidos

3.- Difusión lateral

4.- Movimiento de las cabezas

5.-Vibraciones fuera del plano del centro de masa de los lípidos

6.- Ondulaciones colectivas de la bicapa

(24)

MEMBRANAS:

PROPIEDADES DINÁMICAS

Comportamiento dinámico abarca un amplio espectro de escalas

espaciales y temporales:

• Movimientos conformacionales de las cadenas

• Difusión rotacional de las moléculas de lípidos

• Movimiento de las cabezas

Tiempos de correlación de 10-11 s a 10 –4 s

Se pueden estudiar por métodos espectroscópicos:

• resonancia magnética nuclear ( 10-5 s 10 –4 s) • resonancia de spin electrónico ( 10-8 s 10 –7s) • fluorescencia ( 10 –9 s )

Movimientos que ocurren a escalas microscópicas < nm

ESPACIO

(25)

MEMBRANAS:

PROPIEDADES DINÁMICAS

Difusión lateral

Vibraciones fuera del plano del centro de masa de los lípidos Ondulaciones colectivas de la bicapa

TIEMPO ESPACIO

ESPACIO

TIEMPO

Coeficientes de difusión lateral: Lípidos:

Fase ordenada: D t ≅ 10-11- 10-16 cm2 sec-1 Fase desordenada D t ≅ 10-8 - 10-7 cm2 sec-1 Ocurre a escalas microscópicas, nanoscópicas

y macroscópicas

segundos

(26)

MEMBRANAS:

DIFUSION LATERAL

Difusión lateral:

lípidos

proteínas

Puede regular la interacción entre componentes de la membrana

Procesos de agregación de proteínas

Procesos de señalización

Procesos que dependen de la interacción entre proteínas de membrana

(27)

MEMBRANAS:

DIFUSION LATERAL

Teorías

Difusión en medios homogéneos

1.- Modelo hidrodinámico continuo: para el estudio de difusión de partículas de tamaño mucho mayor que el tamaño del solvente ( proteínas moviéndose en la bicapa)

2.- Modelo del volumen libre. Considera la “ discrecionalidad” de la bicapa y es apropiado para el estudio de la difusión de lípidos

Difusión en medios no homogéneos

Se puede estudiar en 2 tipos de sistemas: • Membranas con lípidos y proteínas

• Membranas con distintos lípidos segregados en fases

(28)

MEMBRANAS:

DIFUSION LATERAL

Difusión en medios no homogéneos Existen dos posibilidades:

a) Que una fase está interconectada a lo largo del plano de la membrana (la fase percola):

b) Que la fase está constituida por dominios discontinuos ( la fase no percola) Basicamente se trata de entender el comportamiento de un sistema que consta de una

fase fluida que percola y de una fase minoritaria que actúan como obstáculos para la difusión de las moléculas en la fase fluida

Situaciones que se han estudiado teórica y experimentalmente:

1) Difusión de lípidos en sistemas donde coexisten lípidos en fase sólida y líquida

2) Difusión de lípidos en sistemas donde coexisten lípidos y proteínas

(29)

MEMBRANAS:

DIFUSION LATERAL

Técnicas utilizadas para medirla:

1.- Fluorescence Recovery After Photobleaching (FRAP)

2.- Single Particle Tracking (SPT)

3.- Métodos basados en reacciones bimoleculares

( blanqueo de fluorescencia o transferencia de energía)

Cada técnica mide difusión en distintos dominios del espacio:

1 y 2 a escalas mucho mayores que el diámetro molecular

3 a escalas del orden del diámetro molecular

(30)

MEMBRANAS:

DIFUSION LATERAL

(31)

MEMBRANAS:

DIFUSION LATERAL

2.- Single Particle Tracking (SPT)

Se marca una proteína o un lípido con partículas de oro coloidal y se sigue su movimiento con un microscopio óptico.

Tamaño de las partículas de oro: 40 nm

El movimiento se sigue durante 2-10 segundos registrando la posición cada 100 microsegundos - 1 segundo

(32)

LIPIDAT Lipid Phases and Phase Transitions Database

LIPIDAG Lipid Miscibility/Phase Diagram Database

LMSD Lipid Molecular Structures Database

Other sites An extensive listing of related websites and databases

Miscellaneous CMC Database, Crystallization Screens Database,

http://www.ldb.chemistry.ohio-state.edu/

http://www.biophysics.org/btol/

LDB - The Lipid Data Bank

BTOL VOLUMES Bioenergetics

Channels, Receptors & Transporters Computational Biology & Theory Electrophysiology

Intermolecular Forces Membranes

Muscle & Cell Contractility Nucleic Acids

Proteins

Supramolecular Assemblies NMR

Separations & Hydrodynamics Sequence Analysis

Single Molecule Techniques Spectroscopy

Thermodynamics

Becoming a Biophysicist

Teaching Biophysics - BJ articles BJ Supplements/Computer Programs

Referencias

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