i
UNIVERSIDAD TÉCNICA ESTATAL DE QUEVEDO
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS
CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
TEMA
“MÉTODO ALTERNATIVO DE PROPAGACIÓN DE PLÁNTULAS
DE PLÁTANO CON ALTA HOMOGENEIDAD SANIDAD Y
POTENCIAL PRODUCTIVO”.
PREVIA A LA OBTENCION DEL TÍTULO DE
INGENIERO AGRONOMO
AUTOR
BYRON AMADO AGUIRRE QUINTERO
DIRECTOR DE TESIS
SOTOMAYOR HERRERA IGNACIO ANTONIO ING. M.SC.
QUEVEDO - ECUADOR
2015
ii
DECLARATORIA DE AUTORIA Y CESIÓN DE DERECHOS
Yo, Byron Amado Aguirre Quintero, declaro que el trabajo aquí descrito es de mi autoría; que no ha sido previamente presentado para ningún grado o calificación profesional; y, que he consultado las referencias bibliográficas que se incluyen en este documento.
La Universidad Técnica Estatal de Quevedo, puede ser uso de los derechos correspondientes a este trabajo, según lo establecido por la Ley de Propiedad Intelectual, por su Reglamento y por la normatividad institucional vigente.
iii
CERTIFICACIÓN
El suscrito, Ignacio Sotomayor Herrera, Ing. Agr. M.Sc., certifica: Que el egresado: Byron Amado Aguirre Quintero, realizó la Tesis de Grado previo a la obtención del título de Ingeniero Agrónomo, Titulada: “METODO ALTERNATIVO DE PROPAGACION DE PLANTULAS DE PLATANO CON ALTA HOMOGENEIDAD SANIDAD Y POTENCIAL PRODUCTIVO”, bajo mi dirección, habiendo cumplido con las disposiciones reglamentarias establecidas para el efecto.
Ing. Agr. M.Sc. Ignacio Sotomayor Herrera DIRECTOR DE TESIS
iv UNIVERSIDAD TÉCNICA ESTATAL DE QUEVEDO
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS
CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
TEMA
“
MÉTODO ALTERNATIVO DE PROPAGACIÓN DE PLÁNTULAS
DE PLÁTANO CON ALTA HOMOGENEIDAD SANIDAD Y
POTENCIAL PRODUCTIVO
”.Presentado al Consejo Directivo como requisito previo a la obtención del título de:
INGENIERO AGRONÓMO
TRIBUNAL DE TESIS
____________________________________ Ing. Cesar Ramiro Bermeo Toledo PRESIDENTE DEL TRIBUNAL DE TESIS
______________________________ __________________________ Ing. Segundo Alfonso Vasco Medina Ing. Hayron Fabricio Canchignia
Martínez
MIEMBRO DEL TRIBUNAL DE TESIS MIEMBRO DEL TRIBUNAL DE TESIS
QUEVEDO - ECUADOR 2015
v
AGRADECIMIENTOS Y DEDICATORIA
Agradecimiento
La presente investigación es el resultado del esfuerzo y dedicación de mucha personas. Algunos han puesto a disposición medios, conocimientos, tiempo y esfuerzo, otros me han brindad ánimo y en ocasiones hasta una mano tendida para ayudarme a levantarme como son mis amigos de carrera Plua Conrrado, Parrales, Moreira, Cedeño, Rizzo Tapia.
Al personal Docente de la Carrera de Ingeniería Agronómica, que me ha guiado con profesionalismo ético en la adquisición de conocimientos contribuyendo a una formación profesional acorde con las necesidades actuales.
Ing. M.Sc. Ignacio Sotomayor Herrera, Líder del Programa Nacional de Banano y Plátano y otras musáceas, de la EET-Pichilingue del INIAP, por haberme dado la oportunidad de realizar este trabajo en este Programa; a la vez por ser el Director de Tesis y compartir sus conocimientos, enseñanzas que me han permitido aprender y alcanzar mis metas. Por su calidad humana y su amistad.
A todo el personal que forma parte del Programa Nacional de Banano, Plátano y Otras Musáceas de la EET-Pichilingue, mis sinceros agradecimientos están dirigidos a los Ingenieros Galo Cedeño García, y Antonio Bustamante González, al personal de campo Milton Carranza, Carlos Carranza y Mauricio Vascones, gracias por su buena voluntad, apoyo y perseverancia. Y a los egresados Alexis Guerra, Jorge López, Juan Carlos Yépez, Francisco Macías.
A la Unidad de Documentación de la EET-Pichilingue en la persona de los Ing. Verónica Zambrano Saltos, Eliana Velásquez Lucas y la Lcda. Isaura Llerena Luna por brindarme su valioso apoyo y colaboración en la bibliografía requerida para el desarrollo de la tesis.
vi
DEDICATORIA
La presente tesis de grado se la dedico a mi dios quien supo guiarme por el buen camino, darme fuerzas para salir adelante y no desmayar en los problemas que se presentaban, enseñándome a encarar las adversidades sin perder nunca la dignidad ni desfallecer en el intento.
A mis padres por su apoyo Aracely Quintero y Jesús Constante que ha hecho el papel de padre desde mis inicios, gracias por sus consejos, comprensión, amor, ayuda en los momentos difíciles y por ayudarme con los recursos necesarios para mis estudios. Quienes me han brindado todo lo que soy como persona, mis valores, mis principios, mi carácter, mi empeño, mi perseverancia, mi coraje, para conseguir mis objetivos, es por ellos que soy lo que soy ahora.
A mi hermana Verónica Aguirre por estar siempre presente, y ser el pilar fundamental que me sostiene, el apoyo incondicional, el consejo sabio y oportuno, a ella mi esperanza, mi alegría y la culminación de este trabajo y lo que representa en mi vida.
A mi sobrina María Verónica Saltos quien ha sido y es una motivación e inspiración, a ella le dedico cada minuto de felicidad ya que con su ternura e inocencia logro motivarme cada día y salir adelante.
A mi amiga Adriana Guamán y mi mejor prima Johanna Quinteros que con su entusiasmo y cariño me dio el valor y coraje para caminar, testigo silenciosa de mis luchas cotidianas en busca de un mejor futuro quien a lo largo de mi vida ha velado por mi bienestar y educación siendo mi apoyo en todo momento.
“Nadie está a salvo de las derrotas, Pero es mejor perder algunos combates en la lucha por nuestros sueños, que ser derrotados sin saber ni siquiera porque se está luchando”. PAULO COELHO
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ÍNDICE DE CONTENIDO
Página
PORTADA... i
DECLARATORIA DE AUTORIA Y CESIÓN DE DERECHOS ... ii
CERTIFICACIÓN ... iii TRIBUNAL DE TESIS ... iv AGRADECIMIENTOS Y DEDICATORIA ... v DEDICATORIA ... vi ÍNDICE DE CUADROS ... x INDICE DE FIGURAS ... xi INDICE DE ANEXOS ... xi
CAPÍTULO I MARCO CONCEPTUAL DE LA INVESTIGACIÓN ... 1
1.1 Introducción... 2
1.2 Objetivos ... 5
1.2.1 Objetivo General ... 5
1.2.2 Objetivos Específicos ... 5
1.3 Hipótesis de la investigación ... 5
CAPITULO II MARCO TEÓRICO ... 6
2.1 Fundamentación Teórica ... 7
2.1.1 Agrupación de las Musas ... 7
2.1.2 Origen y Distribución del Plátano ... 7
2.1.3 Clasificación Taxonómica ... 8
2.1.4 Características Morfológicas ... 8
2.1.5 Selección de Semillas ... 9
2.1.6 Propagación Asexual de Plantas ... 10
2.1.7 Métodos de Propagación ... 11
viii
2.1.7.2 Propagación por División de Cormos (Plantas Jóvenes y/o
Cosechadas) ... 11
2.1.7.4 Método de Multiplicación en Cámara Térmica ... 13
2.1.7.5 Inducción de Cebollines en Campo ... 14
2.1.8 Metodología de Propagación de Semillas en Altas Densidades y el Pre-Enraizamiento ... 15
2.1.8.1 Establecimiento de Vivero ... 16
2.1.8.2 Siembra en Bolsas Plásticas ... 16
2.1.8.3 Fertilización en vivero ... 17
2.1.8.4 Aclimatación de Plántulas ... 17
2.1.8.5 Importancia de la Calidad en Plántulas ... 17
CAPÍTULO III METODOLOGÍA DE LA INVESTIGACIÓN ... 19
3.1 Materiales y Métodos ... 20
3.1.1 Localización del Experimento... 20
3.1.2 Datos Edafoclimáticos de la EET-Pichilingue/... 20
3.1.3 Materiales... 21
3.2 Tipo de Investigación ... 21
3.3 Diseño de la Investigación ... 21
3.3.1 Descripción de los Tratamientos ... 22
3.3.2 Características de las Unidades Experimentales ... 22
3.3.3 Manejo de los Tratamientos ... 24
3.4.5 Variables Evaluadas ... 25
CAPITULO IV RESULTADOS Y DISCUSIÓN ... 29
4.1 Resultados ... 30
4.1.5 Área Foliar e Indice de Calidad de Dickson ... 34
ix
CAPITULO V CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ... 44
5.1 Conclusiones ... 45
5.2 Recomendaciones ... 46
CAPITULO VI BIBLIOGRAFÍA ... 47
6.1 Literatura citada ... 48
x
ÍNDICE DE CUADROS
Página Cuadro 1 Materiales utilizados en el ensayo ... 21 Cuadro 2 Esquema del análisis de varianza ... 22
Cuadro 3 Método de propagación de inducción de cebollines (En campo) . 22
Cuadro 4 Método de propagación de altas densidades (En campo) ... 23
Cuadro 5 Método de propagación de técnica acelerada de semilla (En
vivero) ... 23
Cuadro 6 Método de propagación de cámara térmica (En vivero) ... 23
Cuadro 7 Numero de cosechas, realizada de hijuelos colectados por cosecha y total de unidades cosechada por metro cuadrado en cada uno de los métodos de multiplicación de plantas de
plátano………. 30 30
Cuadro 8 Días a la brotación y tasa de multiplicación al analizar cada método de propagación procedente de cuatro métodos de
propagación de planta de barraganete. ... 32
Cuadro 9 Altura de planta, Diámetro del pseudotallo y Cociente de esbeltez de plántulas procedentes de cuatro métodos de propagación de plátano barraganete. ... 34
Cuadro 10 Área foliar e índice de calidad de Dickson en plántulas de
plátano procedentes de cuatro métodos de propagación de semilla ... 35
Cuadro 11 Numero de raíces y longitud de raíces de plántulas
procedentes de cuatro métodos de propagación. ... 37
xi
INDICE DE FIGURAS
Página Figura. 1 Valores Promedios de Porcentajes de Enraizamiento y
Mortalidad de las Plantas Procedentes de los Métodos de
Multiplicación de Plantas de Plátano. ... 31
Figura. 2 Comparación Entre las Variables Cociente de Esbeltez e Indice
de Calidadde Dickson. ... 36
Figura. 3 Comportamiento de los Costos de Producción de los
Tratamientos y Valor de Plantas Obtenidas ... 38
INDICE DE ANEXOS
Página Anexo 7.1 Análisis de varianza del porcentaje de enraizamiento de
plantas de plátano ... 53
Anexo 7.2 Análisis de varianza sobre los días a la brotación de cormos
de plátano ... 53
Anexo 7.3 Análisis de varianza sobre la tasa de multiplicación de brotes. .... 53
Anexo 7.4 Análisis de varianza sobre altura de plántulas de plátano ... 54
Anexo 7.5 Análisis de varianza sobre índice de esbeltez de plántulas ... 54
Anexo 7.6 Análisis de varianza sobre área foliar de plántulas de plátano ... 54
Anexo 7.7 Análisis de varianza sobre índice de calidad de Dickson de
plántulas de plátano ... 55
Anexo 7.8 Análisis de varianza sobre número de raíces de plántulas de
plátano ... 55
Anexo 7.9 Análisis de varianza sobre longitud de raíces de plántulas de
plátano ... 55
Anexo 7.10 Labores culturales del experimento ... 56
xii
RESUMEN EJECUTIVO
En los últimos años en el Ecuador se ha venido incrementando el área den renovación en cuanto al cultivo de plátano, la necesidad de renovar y las bajas condiciones económicas de la mayoría de los pequeños productores conlleva a que estas renovaciones se realicen de manera tradicional y rustica lo que permite el ingreso a nuevas áreas de producción de patógenos del suelo y raíces que son transportados a través de material infectado.
Con la necesidad de incorporar y dotar a estos productores de técnicas y/métodos que les permitan obtener semillas de plátano de buena calidad y a bajo costo se implementó en presente trabajo de investigación el cual tuvo como objetivos específicos el comparar el potencial propagativo de cuatro métodos de multiplicación de plántulas de plátanos, establecer el mejor de los métodos de multiplicación y determinar los costos de producción de estos.
Este experimento se ejecutó en la Estación Experimental Tropical Pichilingue del Instituto Nacional Autónomo de Investigaciones Agropecuarias (INIAP), ubicada en el Km 5 vía Quevedo-El Empalme, Cantón Quevedo, Provincia de Los Ríos. Los métodos de multiplicación en estudio fueron: Método de propagación de inducción de cebollines (En campo); Método de propagación de altas densidades (En campo); Método de propagación de técnica acelerada de semilla (En vivero); Método de propagación de cámara térmica (En vivero).
Se establecieron bajo un diseño experimental bloques completos al Azar con 4 repeticiones. Para la consecución de los objetivos se estudiaron las variables: Días a la Brotación, el Coeficiente de multiplicación y número de cosechas efectuadas/tratamiento, porcentaje de enraizamiento (%), Cociente de Esbeltez, altura de planta, diámetro del pseudotallo, índice de calidad de Dickson, área foliar, número de raíces, longitud de raíces. Al haber obtenido los resultados se logró observar que el tratamiento que mayor cantidad de plantas obtuvo durante el desarrollo del experimento fue el método de cebollines con 1800 unidades, seguido del método de altas densidades con 600 hijuelos, Por
xiii último, el método de multiplicación en cámaras térmicas obtuvo en promedio 300 hijuelos y la técnica TRAS que presento el valor más bajo correspondiente a 200.
Se concluye que los métodos de cebollines y alta densidades presentaron comportamientos superiores en producción de hijuelos y en el desarrollo vegetativo con relación a los demás métodos, mientras que por superficie sembrada el método de reproducción en cámaras térmicas presentó mayor número de hijuelos.
xiv
ABSTRACT
In recent years in Ecuador has been increasing renewal den area for crops of bananas, the need to renew and low economic conditions of most small producers entails that these renovations are completed in a traditional way and rustica allowing entry into new areas of production of pathogenic soil and roots that are transported through infected material. With the need to incorporate and endow these techniques producers and / methods that enable them to obtain seeds of good quality bananas and inexpensively implemented in this research which had specific objectives to compare propagative potential of four methods banana seedlings multiplication establish best determine multiplication methods and production costs thereof. This experiment was carried out in Pichilingue Tropical Experimental Station of the Autonomous National Institute of Agricultural Research (INIAP), located at Km 5 track Quevedo-El Empalme, Canton Quevedo, Los Rios Province. The methods of multiplication in the study were: Method of propagation induction of chives (in the field); Method of propagation of high densities (in the field); Accelerated Method of propagation technique seed (in the nursery); Method of propagation of thermal camera (in the nursery). They settled under a complete block experimental design with 4 replications Random. Days to Sprouting, the coefficient multiplication and number of harvests made / treatment rooting percentage (%), slenderness ratio, plant height, pseudostem diameter, quality index: To achieve the objectives variables were studied Dickson, leaf area, root number, root length. Having obtained the results are successfully observed that as many treatment plants obtained during the development of the method of experiment was 1800 units chives, following the method of high densities with suckers 600, Finally, the method of multiplication in chambers thermal scored an average of 300 tillers and technical AFTER I present the lowest value corresponding to 200. We conclude that the methods of chives and high densities behaviors had higher tiller production and vegetative growth relative to other methods, while that planted the playback method in thermal cameras showed higher number of tillers.
1
CAPITULO I
2 1.1
Introducción
Dada la importancia socio económica que representa el plátano para el país y su creciente población, que cada vez exige mayor cantidad de alimentos ricos en energía, no se justifica continuar con los rendimientos que actualmente se reportan para esta musácea (6 t/ha). Esta situación pone en riesgo la actividad, la seguridad y soberanía alimentaria de millones de personas que dependen directa e indirectamente de este cultivo para su subsistencia. Hasta el año 2012 se reportaron 144981 ha sembradas de las cuales se cosecharon 113135 ha, con un volumen de producción de 541916,65 TM. De ésta, producción se exportó alrededor del 30%, quedando finalmente para el autoconsumo el 70% de la producción nacional (INEC, BNF, & MAGAP, 2010).
La pérdida de la producción en plátano reportada en el año 2010 se consideró en alrededor de 10000 ha, las cuales fueron afectadas principalmente por plagas y enfermedades, además de factores abióticos tales como frío, inundaciones y sequías. Adicionalmente, existen alrededor de 60340 hectáreas de plantaciones longevas con edades entre 10 y más de 20 años, lo que ha sido también otro factor determinante para la baja productividad registrada, debido al desgaste fisiológico y al ataque permanente de las diferentes plagas y enfermedades (INIAP, 2010).
En los últimos diez años, se ha evidenciado un proceso de renovación continua de las plantaciones de plátano puesto que se ha observado en ellas un constante deterioro. Sin embargo, una limitante que actualmente enfrentan los productores al momento de renovar o establecer nuevas áreas de cultivo es la escasez de semillas de buena calidad disponible para la siembra.
Tradicionalmente, el tipo de semilla más utilizada por los productores, han sido los cormos o “hijuelos de espada” que se obtienen directamente de las plantaciones en producción, los cuales son extraídos de las plantas madres sin ningún criterio de selección. Esto ha conducido a que las nuevas plantaciones presenten serios problemas fitosanitarios como el Virus del Estriado de las
3 hojas de banano (BSV), Nematodos (Radopholus similis entre otros), Picudo negro (Cosmopolites sordidus), etc., los mismos que provocan pérdidas significativas de la producción. Por otra parte Con la utilización de cormos directamente extraídos de la planta madre se aprovecha un bajo número de hijuelos, además su extracción provoca el debilitamiento de toda la unidad productiva, lo cual contribuye de una u otra forma a la obtención de los bajos rendimientos. (Coto & J, 2009).
Actualmente uno de los métodos utilizados en la propagación del banano es sin duda alguna la propagación in vitro, la misma que no ha sido muy aceptada en la propagación masiva de plátano, ya que es económicamente incompatible con los pequeños productores.
Con los diferentes métodos de propagación desarrollados hasta la actualidad, se podría maximizar el potencial que naturalmente poseen las yemas vegetativas para la obtención de un número de plantas con alta uniformidad y potencial productivo (Coto & J, 2009).
Se justifica debido a las constantes pérdidas que ocurren durante el proceso productivo del cultivo de plátano, es consecuencia de los múltiples impactos ocasionados por plagas y enfermedades, así como de las diferentes fisionarías provocadas por estrés ambiental. Sin embargo, el factor más determinante para el rápido deterioro de las plantaciones, es el poco uso de herramientas para el MIC y el uso irracional de material vegetal.
Es uno de los limitantes de usar material vegetal puro tratado por agricultores, es por eso que es un factor que las enfermedades y plagas se diseminen con facilidad en las plantaciones establecidas con anterioridad, pero si lo realizamos s de la manera mas adecuada significativamente vamos a reducir el ataque estas y volveremos un cultivo económicamente rentable. En nuestras condiciones realmente los productores de plátano no se preocupan y toman en consideración la procedencia y calidad de la semilla que va a ser utilizada. Esto probablemente se debe a la falta de conocimiento para establecer protocolos
4 de manejo de semillas es lo que ocasionan que a corto o mediano plazo tengamos una contaminación ya se de insectos como de plagas, por no manejar como es de la manera técnica y adecuada, con características superiores con fines de multiplicación y establecimiento de nuevas plantaciones.
Por otra parte los productores plataneros desconocen otras alternativas de propagación, razón por la cual la presente investigación plantea estudiar métodos alternativos para la multiplicación rápida de esta musácea, y así poder determinar a corto plazo un método promisorio con alto nivel de proliferación y de bajo costo, el mismo que deberá ser validado por los expertos en transferencia de tecnología para que finalmente a mediano plazo sea entregado a los productores como una nueva alternativa de multiplicación de semilla de alta calidad sanitaria y potencial productivo.
5 1.2
Objetivos
1.2.1 Objetivo General
Contribuir a mejorar el estado productivo y sanitario de nuevas plantaciones de plátano mediante la utilización de material de siembra proveniente de procesos de multiplicación de fácil adopción de alta calidad sanitaria y productiva.
1.2.2 Objetivos Específicos
➢ Comparar el potencial propagativo de cuatro métodos de multiplicación de plántulas de plátanos.
➢ Identificar el mejor método de multiplicación de plantas
➢ Determinar los costos de producción de los tratamientos
1.3
Hipótesis de la investigación
(Ho): No existe diferencia entre los tratamientos estudiados, en consecuencia todos los métodos producen igual cantidad de plantas.
(Ha): Si existe diferencia entre los tratamientos, en consecuencia uno de los métodos en estudio produce mayor cantidad de plantas, en comparación a los demás métodos en estudio.
6
CAPITULO II
7
2.1 Fundamentación Teórica
2.1.1 Agrupación de las Musas
Los cultivares del genero Musa, son de tipo herbáceo, diploides, tetraploides, de ciclo perenne, con excelente adaptación en varias regiones del país. En este género sobresalen tres partes fundamentales como: el cormo, el sistema radicular, el tallo y su sistema foliar. El banano tiene su origen en dos grandes grupos del genero Musa acuminata y Musa balbisiana, son ancestros frecuentes de muchas variedades triploides y tetraploides reconocida.
Taxonomy and origins of cultivated bananas. (London: Journal of the Linnean Society of London Botany , 1995) (Robinson & Sauco, 2010). La capacidad del genoma de las musáceas está compuesta por 550 Mbps y 600 Mpb. Este genoma es un poco más grande que la Arabidopsis thaliana, pero más reducido que la cebada o el centeno. Estas conformado por 11 cromosomas siendo este haploide y son de tamaño reducido (Lisak M, 1999).
(Manrique S.M, 2007) Y (Robinson & Sauco, 2010) mencionan que el plátano se consume en muchos países y este forma parte de la dieta básica de las familias siendo indistintamente de cualquier estrato social. Tiene gran contenido energético y minerales lo cual lo hace diferente al resto de las frutas.
2.1.2 Origen y Distribución del Plátano
Según (Velez, 2009)el cultivo de plátano tiene su origen en Asia meridional, siendo conocido desde el año 650 DC. Se presume que la especie llegó a las islas Canarias en el siglo XV y después fue traída a América en el año 1516. Esta fruta al principio se la explotaba para el propio consumo, luego en Canarias es donde empezó a cultivarse para la comercialización y esto fue a finales del siglo XIX y principios del siglo XX. El plátano es el cuarto cultivo de frutas más importantes del planeta. Los países latinoamericanos y del Caribe, producen para el mercado mundial aproximadamente 10 millones de un total de
8 15 millones de toneladas. Es consumido en más de 100 países y cada vez va entrando a nuevos mercados.
2.1.3 Clasificación Taxonómica
Según (Simmonds, 1973), la clasificación taxonómica del Plátano barraganete es la siguiente: Reino: Plantea Clase: Liliopsida Orden: Zingiberales Familia: Musaceae Género: Musa Especie: Paradisiaca 2.1.4 Características Morfológicas
Investigadores como (Belalcazar & Lozada, 1991) y (Tazan, 2003), indican que entre las principales características morfológicas del plátano se puede mencionar las siguientes: raíz superficial, carnudas, de intensidad blanca amarillenta y conforme sigue su desarrollo y ciclo vegetativo suele tornarse opaca, extendiéndose hasta casi tres metros de longitud con un diámetro de 5 a 10 milímetros.
La semilla obtenida a través de la propagación asexual es la parte primordial, originándose en el mismo las el resto de la planta que a la larga se originara la floración y posteriormente el fruto el cual es la parte fundamente de este cultivar.
Entre las estructuras que conforman las hojas, se originan por el meristemo axilar, en el entrañable con dificultades de lapso de aspecto de unión al cultivar.
9 Según lo indicado por (Belalcazar & Lozada, 1991). en su tasa de desarrollo fisiológico, para obtener fructificación y cosechas uniformes
2.1.5 Selección de Semillas
Uno de los principales factores para lograr el éxito de una explotación comercial del cultivo de plátano es, la selección y obtención de semillas o material de propagación en cantidad suficiente, con la calidad fisiológica adecuada (vigor), y libre de plagas y enfermedades, sin que esto implique una elevación exagerada en los costos iniciales del cultivo. El establecimiento de un cultivo en óptimas condiciones (apariencia deseable, vigor y excelente aspecto fitosanitario) que facilite la instalación y manejo de un lote comercial con plantas uniformes, solo ha sido posible con la utilización de vitroplantas (Martinez & Hernandez, 2004)
Sin embargo, a través de una selección rigurosa de plantas en etapas de vivero, sometidas a un estricto control, también ha sido posible lograr este objetivo; lo cual implica la aplicación de medidas fitosanitarias dirigidas a las semillas previo al establecimiento del vivero tales como: remoción del tejido necrótico de la superficie del cormo, desinfección (tratamientos químicos y físicos), selección de semillas por tamaño e inducción de brotación por métodos químicos y orgánicos de cepas (Adelaja, 1995).
La técnica de micro-propagación se ha convertido en una alternativa para la multiplicación y saneamiento de especies de reproducción vegetal. Esta tecnología tiene ventajas en comparación con los métodos tradicionales de reproducción de semilla vegetativa de plátano, porque se garantiza material de mayor calidad debido al saneamiento de plagas y enfermedades de origen bacteriano y fungoso, además, se obtiene un mayor número de plantas que se pueden generar en un corto periodo, en áreas reducidas y con uniformidad de las plantaciones producidas que permite planificar la cosecha (UPEB, 1992).
10 En el cultivo de plátano la labor de deshije es una práctica primordial para lograr mayor rendimiento y calidad de la cosecha de acuerdo con la edad fisiológica en que se efectúe el objetivo que se busque. Es conveniente diferenciar tres tipos de deshije a) de formación para la eliminación de plantas improductivas, b) de producción para mantener un número ideal de unidades de producción, buscando una producción escalonada y c) de producción de semilla, que consiste en el entresaque o selección de hijuelos para semilla (Cuello & G, 2006).
2.1.6 Propagación Asexual de Plantas
La dispersión por parte vegetales, se concreta como la duplicado de una planta a partir de otra similar o igual; ya que en hipótesis cualquier parte de un vegetal puede dar comienzo a otra de semejantes particularidades según se le den las condiciones bióticas y abióticas. Todo esto gracias a la toti potencia que presentan las elementos no caracterizados de los tejidos y partes vegetales, que les permite duplicar y diversificar para dar origen a las varias organizaciones de la planta (Rojas & Alarcon, 2004).
La reproducción asexual presenta tres cambios como son: la propagación por partes vegetativas como rizomas, estacas, bulbos, y segmentos de órganos de la planta como el tallo y hojas. La segunda es divulgación por cuñas donde parte de una planta (yemas y varetas) se incrustan a otra (tallos, patrones o porta injertos). Además está la dispersión in vitro, en la cual células y tejidos son incitados a crecer en condiciones de ambiente (Vásquez et al , 1997)
La propagación vegetativa o asexual se utiliza para producir una planta que posea el mismo genotipo que la planta madre (planta donadora) y que esto es posible porque todas las células de una planta poseen la información necesaria para reproducir la planta entera (Taiariol, 2000)
11 2.1.7 Métodos de Propagación
2.7.1.1 Propagación Tradicional (Uso de Hijos o Retoños)
La mayoría de los productores utilizan un sistema de siembra caracterizado por la escasa o nula aplicación de prácticas culturales básicas como riego, fertilización, control de malezas y plagas, entre otras.se destaca el hecho de que las plantas se encuentran bajo libre crecimiento, por ausencia de labores de deshije, con el consecuente alto índice de competencia entre ellas (Martinez & Hernandez, 2004).
2.1.7.2 Propagación por División de Cormos (Plantas Jóvenes y/o Cosechadas)
Esta técnica ha sido utilizada en diferentes países productores. En Venezuela fue aplicada con notable éxito. A partir de ahí ha sido adoptada como alternativa de propagación rápida y masiva, pudiendo ser aplicada a cormos que provengan de plantas jóvenes o recién cosechadas. Para su aplicación es necesario ubicar e identificar las distintas yemas presentes en el cormo, lo cual permitirá que el sistema sea eficiente. A continuación se describe de forma general los pasos a seguir para su aplicación (Martinez & Hernandez, 2004).
Para la selección del material, se recomienda el uso de cormos aparentemente sanos y vigorosos; y el número de plantas a obtener dependerá de su tamaño , por ello los cormos pequeños no son recomendables, La limpieza de cormos se realiza removiendo los restos de tierra con abundante agua, y con un cuchillo bien afilado se procede a eliminar las raíces y tejidos necrótico que se encuentren afectados por plagas y microorganismos , dejando sólo una porción de pseudotallo que permita sujetarlo con la mano (Martinez & Hernandez, 2004).
Se debe realizar la desinfección de los cormos para lo cual se prepara una solución de agua y cloro a razón de cinco mililitros por litro de agua, en la cual
12 se deben sumergir estos materiales durante tres minutos para su desinfección. De igual manera, las herramientas utilizadas para realizar los cortes deben ser previamente desinfectadas con la mezcla anteriormente citada antes del siguiente corte. Cabe destacar que este proceso de desinfección es el más práctico y económico para su aplicación en el campo, y la misma es considerada como parcial, ya que al utilizar otros productos químicos de amplio espectro, se incrementan los costos operacionales (Martinez & Hernandez, 2004).
La exposición de las yemas se ejecuta cortando la base de la hoja externa hasta llegar a la siguiente, quedando expuesta una yema lateral en forma de "V" formado por la intercepción de las bases de las hojas. Este procedimiento se realiza sucesivamente hasta que se evidencie la presencia de yemas. Una vez descubiertas todas las yemas posibles en el cormo, se procede a realizar cortes en secciones, similar al corte hecho sobre un pastel, tratando en lo posible de dejar en cada sección una yema visible (Martinez & Hernandez, 2004).
Las secciones obtenidas serán sembradas en canteros previamente preparados o directamente en bolsas plásticas, tratando en lo posible que la yema se encuentre cubierta por tierra o el sustrato utilizado. En esta etapa es fundamental el suministro de riego, evitando la saturación y condiciones que desencadenen en un estrés hídrico. El proceso de crecimiento y desarrollo puede ser condicionado y acelerado al aplicar una fuente de nitrógeno; sin embargo su uso excesivo puede originar citotoxicidad. Además realizar la selección de éstas basados en el vigor ya que el rendimiento de plantas por cormo es de 10 plántulas la misma que pueden ser trasplantadas al campo en un periodo de nueve meses (Martinez & Hernandez, 2004).
2.1.7.3 Técnica de Reproducción Acelerada de Semilla (TRAS)
Esta técnica consiste en extraer del campo cormos previamente seleccionados y llevados a almácigos o sitios destinados para la multiplicación de las semillas,
13 donde se siembran y se procede a eliminar la yema apical del cormo madre a un centímetro bajo la corona que une al cormo con el pseudotallo para inducir la brotación inmediata de las yemas laterales, previamente acondicionados para que se facilite la brotación de las yemas axilares (Álvarez et al , 2013).
Después de un mes y medio de haber realizado la inducción de brotes, se procede a realizar la primera cosecha de plántulas para ser trasplantadas a fundas de 5 x 8 pulgadas para sí darles el debido mantenimiento hasta que las plántulas estén aptas para ser llevadas al sitio definitivo. Se pueden realizar tres cosechas de rebrotes por cormo, cada una efectuada después de un mes o mes y medio, obteniéndose así un total de 24 hijuelos por cormo (Aguilar & Acuña, 2004).
2.1.7.4 Método de Multiplicación en Cámara Térmica
El proceso de cámara térmica es el método más rápido y fitosanitario confiable para la producción rápida de material vegetal de plátano. Consiste en construir un área cerrada con plástico agro lene (color transparente), con la finalidad de aumentar la temperatura en más de 45°C (Álvare et al ,2013)
En la cámara, se someten los cormos y las yemas inducidas a un sistema de limpieza que comprende la termoterapia (con temperaturas entre 40 y 60 °C), humedad relativa entre 30 y 100%, y un fotoperiodo hasta de 24 horas (complementado mediante luz artificial en la noche). Estos tres parámetros, así como la frecuencia del fertirriego (riego de solución nutritiva) incrementan la potencia de multiplicación de los cormos así como también las plantas libres de plagas (Álvarez et al , 2013).
Luego de la construcción de la cámara térmica, se seleccionan cormos de uno a dos kilogramos de peso, a los cuales se les procede a eliminar el punto de crecimiento con la ayuda de una herramienta puntiaguda, con la finalidad de estimular la emisión de brotes laterales. Los cormos se colocan en la cámara climatizada ya sea en canteros previamente construidos o en fundas de polietileno (Álvarez et al , 2013).
14 Una vez que emergen los brotes laterales con una altura aproximadamente entre cinco y diez centímetros estos deben extraerse, para el efecto se cortan y se les realiza un corte en cruz similar al del cormo madre para matar el punto de crecimiento y propiciar la salida de callos y multimeristemas. Luego que se hayan emitido los brotes y alcancen una altura entre 5 a 10 cm, se procede a sacarlos de la cámara de enraizamiento entre 8 a 10 días cuando ya hayan emitido raíces son finalmente sembrados en fundas de vivero de 5x12 pulgadas. Con esta técnica se puede producir entre 20 a 30 hijuelos por cormo en un lapso de 6 meses, aunque según datos obtenidos en Colombia estos pueden llegar a producir de 90 unidades por metro cuadrado por mes cada yema sembrada, en un periodo de 6 meses (Álvarez et al , 2013).
2.1.7.5 Inducción de Cebollines en Campo
En estés método se seleccionan plantas de la propia finca que tengan antecedentes de un buen comportamiento agronómico y con características de vigor, sanidad y calidad en el racimo. Una vez cosechada la planta madre, se procede a cortar en bisel toda la unidad productiva a cinco centímetros por encima del suelo para luego eliminar el punto de crecimiento.
Después de ello se procede a cubrir los rizomas cortados con tierra y materia orgánica y posteriormente se aplican 100 g de urea con el fin de estimular la rápida brotación de yemas. Pasado los treinta días de la inducción, se procede a cosechar los “cebollines” que se encuentren en un rango de peso entre 200 a 400 gramos, a los mismo se les elimina las raíces para posteriormente trasladarlos a fundas para ser manejados en el vivero. Con esta técnica se pueden obtener alrededor de 10 cebollines por cormo en un tiempo de 30 días, los cuales estarán listos para ser llevados al campo definitivo a los 60 días de la extracción. Los sitios de inducción de brotes, continuarán produciendo semillas mientras se les dé un manejo adecuado (Palencia & Martin, 2006).
15 2.1.8 Metodología de Propagación de Semillas en Altas Densidades y el
Pre-Enraizamiento
La metodología consiste en sembrar hijuelos puyones previamente seleccionados de un metro de altura con un cormo de 15 centímetros de diámetro aproximadamente. Estos hijuelos deben ser limpiados y sembrados a un distanciamiento de tres metros entre la doble hilera, un metro veinte entre hileras y un metro entre plantas, con lo que se obtiene una densidad de 6666 plantas/ha. Una vez sembradas las plantas, se deben realizar fertilizaciones mensuales con urea a razón de 40 g/planta. Después de cinco o seis meses se procede a decapitar todas las plantas, con lo que se elimina la dominancia apical para inducir un mayor número de brotes por unidad biológica.
Luego de un mes de haber realizado la inducción de brotes, se procede a cosechar todos los hijuelos (entre 5 a 10 hijuelos por cormo) los cuales son separados y limpiados para ser llevados a camas enraizado ras, en donde estarán por un lapso de tiempo de 20 días. Posterior a ello, se procede a retirar los hijuelos o coritos, en donde se seleccionan únicamente los que han emitido raíces (se estima que alrededor del 10% de los cormos no emitirán raíces), los mismos que se trasladan a fundas de polietileno para ser manejados en el vivero. Finalmente dos meses después de permanecer en el vivero estarán listos para ser sembrados en el campo definitivo. Con esta metodología se puede garantizar un 100% de plantas enraizadas obteniendo de 33330 a 66660 plantas/a en un periodo de nueve meses (Fernández, 2006) (Coto & J, 2009).
El uso de camas da muy buenos resultados porque se estimula el enraizamiento de los cormos y el desarrollo del brote vegetativo; además, se evita la pérdida de bolsas y sustrato de siembra, ya que aún en las mejores condiciones de manejo de los cormos, se estima que un 10% de ellos no germinan. La cama enraizad ora se compone de arena y aserrín en una relación de 1:1. Estos materiales permiten el fácil manejo y cosechar la plántula sin romper sus raíces (FHIA, 2009).
16 El tamaño de la cama enraizad ora es de 1.0 a 1.20 m de ancho; el largo del mismo depende de la cantidad del material de siembra y la altura debe ser de 30 cm. Se estima que se pueden colocar 120-150 cormos por metro cuadrado. Esta cama enraizad ora no requiere sombra, pero sí un buen suministro de agua. El sustrato debe mantenerse húmedo pero no saturado (FHIA, 2009).
2.1.8.1 Establecimiento de Vivero
El vivero se lo puede implementar con un 50% de sombra o a pleno sol. Las bolsas deben distribuirse en filas formando bloques de cormos con el mismo tamaño. El ancho del bloque debe ser de cuatro bolsas, dejando una pequeña calle (40 a 50 cm de ancho) entre bloques, para facilitar la ejecución de las labores de manejo. Para asegurar una buena sincronización de crecimiento en el campo es necesario hacer una minuciosa clasificación de las plantas por tamaño. La primera clasificación de las plantas se da al momento de sembrar los cormos (enraizados o no) en las fundas y cuando las plantas están listas para su siembra definitiva en el campo (FHIA, 2009).
2.1.8.2 Siembra en Bolsas Plásticas
En este caso los cormos pequeños después de ser limpiados y desinfectados, se proceden a sembrar en bolsas plásticas. Para la desinfección se puede usar una solución de Védate en la dosis de 24 l (13 ml/10 l de agua), más Acromicina (3 g/l de agua) donde se. Realiza una inmersión corta de 2-5 minutos. Si el material de siembra presenta buena sanidad, no se realiza la Desinfestación antes de la siembra. En este último caso los cormos se deben tratar con la misma solución antes descrita a las 2 y 7 semanas después de la siembra, tratando cada cormo con 50 ml de solución (FHIA, 2009).
El tipo de sustrato que se utiliza en las fundas plásticas depende de la disponibilidad local, pero se requiere que sea friable y rico en materia orgánica. En la FHIA, ha dado muy buenos resultados utilizar la mezcla de tierra con cascarilla de arroz en relación 3:1, colocándola en bolsas de 20 x 22.5 cm (FHIA, 2009).
17 2.1.8.3 Fertilización en vivero
La fertilización de las plántulas se la realiza semanalmente aplicada al follaje. Para ello, se puede utilizar Nutrex en dosis de 5 g/l de agua. Se estima que entre 6 y 8 semanas después de la siembra en funda, las plantas están listas para sembrarse en el campo. Este tiempo permite generalmente que las plantas lleguen a formar dos pares de hojas y 30 cm de altura (FHIA, 2009).
2.1.8.4 Aclimatación de Plántulas
En transcurso de expansión de otro especie vegetal, se compone como posterior ciclo de adaptación de plantas, llamada frecuentemente como ciclo de endurecimiento. En esta fase las plantas son reubicadas desde el lugar donde se hallan multiplicado a un ambiente con las externas, donde se ubican en contenedores individuales y se desisten por un periodo de condiciones inspeccionadas, y aptas para el campo (Toledo, y otros, 2005). Los eventos ocurridos deben ser los mejores, para que estas plantas se adapten y no sufran un stress pos siembra.
Las bajas tasas de supervivencia durante la adaptación son debidamente a muchas características anatómicas y utilizables de las plantas perfeccionadas, ya que están destacadas por el ambiente material, químico y volátil de los envases (Cañal & Majada, 2001).
2.1.8.5 Importancia de la Calidad en Plántulas
El comportamiento de la planta es el principal mecanismo que está en manos de un futuro de nuevos cultivos. De forma similar que una semilla, es la virtud de una plántula donde por sus condiciones morfológica, fisiológica, sanitaria, y genéticas (Villar, 2003).
Al crear un vigor de plantas sería capaz de obtener el progreso recomendable en un medio definitivo. Es de gran jerarquía contar de plántulas de aptitud para adquirir un buen desempeño en el campo, pues de lo inverso se poseería una
18 amplia versatilidad de vigor y se haría necesario realizar programas de transplantes (Duryea, 1985).
El mecanismo genético como indicador de aptitud, hace narración al comienzo de la semilla que se convirtió en una nueva plántula. La característica morfológica y fisiológica es dependiente, en gran parte, de sus caracteres genéticos y hace referencia a los disímiles cambios fisiológicos concernientes con la economía hídrica y del carbono en la planta. Finalmente, el elemento higiénico como repertorio de atributo hace referencia a la estampa de patógenos en la planta que pueden reducir o retardar el progreso pendiente de las plántulas en situaciones de campo (Villar, 2003).
Los primordiales indicadores morfológicos que se calculan como índoles de calidad estos pueden ser de forma cualitativo y cuantitativo como: Plantas con heridas no curadas, tallos múltiples, raíces desfiguradas, altura y diámetro del tallo, coeficiente de Esbeltez e índice de calidad de Dickson, Peso de biomasa, etc. (Peñuelas & Bueno. 2000).
Los indicadores fisiológicos que más se manejan para determinar la calidad de una plántula, es el contenido de nutrientes y carbohidratos, rodeado de clorofila, conductancia estomática y determinación del vigor (Birchler & Pardos, 1998) (Villar, 2003).
Cabe recalcar que se hace difícil, nombrar o especificar cuáles son las propiedades morfo-fisiológicos que conciernen estimar para establecer un indiscutible juicio de eficacia, pero una vez referidos, estos permitirán precisar a la mejor planta (Birchler & Pardos 1998).
19
CAPITULO III
20
3.1 Materiales y Métodos
3.1.1 Localización del Experimento
La presente investigación se desarrolló desde agosto del 2013 hasta febrero 2014, en la Estación Experimental Tropical Pichilingue del Instituto Nacional Autónomo de Investigaciones Agropecuarias (INIAP), ubicada en el Km 5 vía Quevedo-El Empalme, Cantón Quevedo, Provincia de Los Ríos. El Centro Experimental está ubicado a una altitud de 75 msnm y geográficamente en las coordenadas 1o O6´ latitud Sur y 79o 25´ longitud Occidental.
3.1.2 Datos Edafoclimáticos de la EET-Pichilingue1/
Temperatura (°C) ………. 25 °C Precipitación (mm) ………. 2118 mm Humedad relativa (%) ………. 89%
Heliófanía (h/año) ………. 899 horas luz
Suelo ………. Limo arenoso
PH ………. 6,5
1 Coordenadas geográficas registradas con GPS
21 3.1.3 Materiales
Cuadro 1 Materiales utilizados en el ensayo
Materiales de Insumos Materiales de Materiales de
Campo Agrícolas oficina laboratorio
Sustrato (Tierra) Urea Calculadora Guantes
Cuchillo YaraMila Computadora Estufas
Fundas Cámara fotográfica Balanza
electrónica
Baldes Hojas de papel
bond A4
Plástico termino Tablero
Cinta métrica Lápices
Machete Esferográficos
Palilla Libro de campo
Escarbadora Canas Letreros Datalogger Escaleras Carreta Taladro Remaches Palas Calibrador Aspersora manual (Jacto)
Cormos de plátano Barraganete
Plántulas de plátano Barraganete 3.2 Tipo de Investigación
La investigación realizada es de tipo exploratoria donde se determina el mejor método de propagación de semilla de plátano variedad barraganete.
3.3 Diseño de la Investigación
Se planteó un Diseño de Bloques Completos al Azar (DBCA) en 4 repeticiones. Para la comparación de medias se la ejecutó mediante la prueba de Tukey al 95% de contingencia. El cuadro 3, presenta el esquema del análisis de varianza utilizado.
22 Cuadro 2. Esquema del análisis de varianza
Fuentes de variación Grados de Libertad
Total (TxB)-1 15
Bloques B-1 3
Tratamientos T-1 3
Error (T-1)(B-1) 9
3.3.1 Descripción de los Tratamientos
Tratamiento 1: Método de propagación de inducción de cebollines (En campo)
Tratamiento 2: Método de propagación de altas densidades (En campo)
Tratamiento 3: Método de propagación de técnica acelerada de semilla (En vivero)
Tratamiento 4: Método de propagación de cámara térmica (En vivero)
3.3.2 Características de las Unidades Experimentales
Cuadro 3. Método de propagación de inducción de cebollines (En campo)
Área del ensayo 180 m2 : (18 m x 10 m)
Área de parcelas neta 75 m2
Distancia entre cormos 2.50 m
Distancia entre repeticiones 2.50 m
Numero de hileras por parcela neta 2
Número de plantas por parcela neta 10
Número de plantas por hilera 5
Numero de parcelas netas 4
23 Cuadro 4. Método de propagación de altas densidades (En campo)
Área del ensayo 75 m2 : ( 15 m x 5 m )
Área de parcelas neta 21 m2 :
Distancia entre cormos 1 m
Distancia entre repeticiones 3 m
Numero de hileras por parcela neta 2
Número de plantas por parcela neta 10
Número de plantas por hilera 5
Numero de parcelas netas 4
Total de cormos utilizados en el ensayo 40
Cuadro 5. Método de propagación de técnica acelerada de semilla (En vivero)
Área del ensayo 6 m2 :( 4 m x 1.50 m )
Área de parcelas netas 4.5m2 :
Distancia entre cormos 0.25 cm
Distancia entre repeticiones 50
Numero de hilera por parcela neta 2
Número de plantas por parcela neta 10
Número de plantas por hilera 5
Numero de parcelas netas 4
Total de cormos utilizados en el ensayo 40
Cuadro 6. Método de propagación de cámara térmica (En vivero)
Área del ensayo 35 m2 : ( 7 m x 5 m )
Área de parcelas neta 4.5m2 :( 4x 1)
Distancia entre cormos 0.80 m
Distancia entre repeticiones 0.70 m
Numero de hileras por parcela neta 2
Número de plantas por parcela neta 10
Número de plantas por hilera 5
Numero de parcelas netas 4
24 3.3.3 Manejo de los Tratamientos
Inducción de Cebollines en Campo
Se seleccionaron plantas madres de una plantación previamente establecida para después cortar en bisel con un cuchillo toda la unidad biológica a cinco centímetros por encima del suelo. Posteriormente se cubrieron los rizomas cortados con tierra y materia orgánica posteriormente se aplicó 100 g de urea alrededor de los cormos con el propósito para estimular la inmediata brotación de yemas. Pasado los días de la inducción, se procedió a realizar la primera cosecha de las plantas a los 20 días. A los cebollines que se encontraron en un rango de peso entre 200 a 400 g, se les eliminó las raíces y se trasladaron a fundas para ser manejados en vivero. A los 30 días se registró la tasa de enraizamiento y mortalidad en las plantas de vivero.
Método de Propagación en Altas Densidades y el Pre-Enraizamiento
Se sembraron hijuelos puyones previamente seleccionados de 0,50 m de altura con un cormo de 15 cm de diámetro. Estos hijuelos se limpiaron y se sembraron a un distanciamiento de 3 metros en la doble hilera, 1,20 m entre hileras gemelas y 1 m entre plantas, con lo que se obtuvo una densidad de 6666 plantas/ha. Una vez sembradas las plantas, se realizaron fertilizaciones mensuales a base de urea a razón de 40 g/planta, para estimular en crecimiento de brotes. Después de siete meses se procedió a decapitar todas las plantas, con lo que se eliminó la dominancia apical para inducir un mayor número de brotes por unidad biológica. Luego de 15 días de haber realizado la inducción, se procedió a cosechar todos los hijuelos los cuales fueron separados y limpiados para ser llevados a camas enraizadoras, en donde estuvieron por un lapso de 30 días para determinar la tasa de rendimiento y mortalidad. Después se procedió a retirar los hijuelos, en donde se seleccionaron únicamente los que habían emitido raíces y se trasladaron a fundas de polietileno para ser manejados en el vivero. Finalmente dos meses después de permanecer en el vivero, estos hijuelos estuvieron listos para ser sembrados en el campo definitivo.
25 Técnica de Reproducción Acelerada de Semillas (TRAS).
Esta técnica consistió en extraer del campo cormos previamente seleccionados y llevados a canteros, en donde se sembraron directamente y se procedió a eliminar la yema apical del cormo madre a 1 cm bajo la corona que une al cormo con el pseudotallo para inducir la brotación rápida de las yemas laterales. Después de 21 días de haber realizado la inducción, se procedió a realizar la primera cosecha y fertilización mediante tres aplicaciones fraccionadas para tres meses con YaraMila 20 g/mes. Esto se realizó con la finalidad de nutrir al cormo y darle una mayor inducción de brotes. Los hijos cosechados fueron colocados en un recipiente con agua para estimular el crecimiento de raíces en un lapso de 4 a 5 días para después ser trasplantados a fundas de 5x8 pulgadas.
Método Masivo en Cámara Térmica.
Este método consistió en construir un área cerrada con plástico transparente agrolene, con la finalidad de promover el aumento de la temperatura en más de 45°C. Luego de la construcción de la cámara térmica, se seleccionaron cormos de 1 a 2 kg de peso, a los cuales se les procedió a eliminar raíces y partes de tejido infectado por nematodos. Después se procedió a sembrar los cormos en las camas para luego eliminarle el punto de crecimiento con la ayuda de un cuchillo para estimular la emisión de brotes laterales. La primera cosecha se hizo a los 15 días y las fertilizaciones se hicieron de igual manera que se realizó en el método descrito anteriormente. Cada brote cosechado se colocó en un recipiente con agua para estimular el crecimiento de raíces, proceso que tardo entre 4 y 5 días para después ser trasplantados en fundas de polietileno.
3.4.5 Variables Evaluadas
De acuerdo al esquema ya establecido, se evaluaron las siguientes variables dependientes:
26 Fase de Brotación
Días a la Brotación: Esta variable se la registró en días, cuando los cormos emitieron al menos un brote bien diferenciado.
Coeficiente de Multiplicación: se calculó mediante la fórmula siguiente:
CM = N° Plantas totales N° de Cormos iniciales
Número de Cosechas: se registró en número de cosechas efectuadas/tratamiento.
Fase de Enraizamiento
Porcentaje de Enraizamiento (%): Se lo determinó a los 30 días después de la siembra DDS.
PE% =N° de Plantas enraizadas
N° de Plantas totales ∗ 100
Fase de Calidad de Plantas
Cociente de Esbeltez: Es la similitud entre altura de planta (cm) y su trazo (mm), demostrando ser un indicador del vigor de planta.
Altura de Planta: Esta se la estableció en centímetros cuando la planta expresó la quinta hoja, para lo cual se evaluó desde el ras del suelo hasta la V creada entre la cuarta y quinta hoja.
Diámetro del Pseudotallo: Lo determinamos en (mm) cuando la planta emitió la quinta hoja, lo cual se lo realizó a nivel del suelo.
CE = Altura de planta en cm Diametro del pseudotallo
27 Peso Seco Biomasa Aérea: Se determinó en (gr) cuando las plantas emitieron la quinta hoja, lo cual se recolectó el tejido aéreo de las plantas (pseudotallo + cormo y hojas), donde se llevó a una estufa a 80°C por 48 horas hasta tener pesos constantes.
Peso Seco Biomasa Radical: Se lo determino en gramos cuando las plantas habían emitido la quinta hoja, y se recogió por completo el tejido radicular, el cual fue ubicado en una estufa por 48 horas y a una temperatura de 80°C hasta obtener pesos constantes.
Relación Parte Aérea/Parte Radical: Es la proporción del fragmento transpirante y la parte absorbente, y se calculó a partir de la relación de los pesos secos de cada de sus partes.
RPA R =
Peso seco parte aerea en g peso seco de la parte radical en g
Índice de Calidad de Dickson: Este índice se calculó mediante la correspondencia entre peso seco total de la planta (g) y la suma de Esbeltez y la similitud parte aérea/parte radical.
Área Foliar: Esto se expresó en cm2 debido a que son plantas en fase de
vivero, y registró cuando las plantas emitieron la quinta hoja, verdadera donde se aplico la formula correspondiente por (Kumar, Krishnamoorthy, Nalina, & Soorianathasundharam, 2002)
AFT = L x A x K x N x K2
Dónde:
AFT = Área foliar total en cm2
L = Largo de la tercera hoja A = Ancho de la tercera hoja
K (0,80) = Factor de curvatura de Murray (1960).
28 K2 (0,662) = Nuevo factor de curvatura de (Kumar, Krishnamoorthy, Nalina, & Soorianathasundharam, 2002)
Número de Raíces: para esta variable se inspecciono que las plántulas tengan su hoja quinta donde se contabilizo sus raíces del cormo.
Longitud de Raíces: en esta variable mencionada se observo que las plántulas tenga su quinta hoja verdadera donde empezamos a evaluar la parte enlazada del cormo incluso, el ápice y su masa radical.
29
CAPITULO IV
30
4.1 Resultados
4.1.1 Producción de Hijuelos
Se muestra la producción de hijuelos de plátanos obtenido por cada método de reproducción. El método de cebollines efectuados en 7 cosechas produjo 257 hijuelos por cosecha, colectados en total 1799 en un área de 75 metros cuadrados, estos 24 hijuelos por metro cuadrado.
Los métodos con menor número de cosecha, 3 fueron Tras y Cámara Térmica que produjeron el menor número de hijuelos 67 y 100 colectándose 201 y 300 para cada método en un área similar de 4.5 metros cuadrados, obteniéndose 45 y 67 hijuelos por metro cuadrado para Tras y Cámara Térmica.
Cuadro 7 Numero de cosechas, realizada de hijuelos colectados por cosecha y total de unidades cosechada por metro cuadrado en cada uno de los métodos de multiplicación de plantas de plátano.
Tratamientos No. De cosecha No. Hijuelos por cosecha Hijuelos colectados total Área utilizada (m2) Hijuelo por (m2) Método de cebollines 7 257 1799 75 24 Método de altas densidades 4 150 600 21 29 TRAS 3 67 201 4.5 45 Cámara térmica 3 100 300 4.5 67
4.1.2 Porcentaje de Enraizamiento y Mortalidad
La fase de enraizamiento de las plantas se determinó mediante la evaluación del porcentaje de enraizamiento, donde no se obtuvo diferencia estadística como se observa en el anexo 1.
31 En la figura 1, se muestran los resultados del porcentaje de enraizamiento y mortalidad de las plantas sembradas en vivero hasta 30 días después de la siembra. En esta se puede apreciar que las plantas que se obtuvieron a partir del método de cámaras térmicas (CT) presentaron el porcentaje más alto de enraizamiento. Caso contrario, con el método de altas densidades (AD) presentó el valor más alto de mortalidad, obteniendo un 19%. Los tratamientos obtuvieron menores mortalidad correspondiente a 17 y 13% para TRAS y el método de cámaras térmicas, (CT)
4.1.3 Días a Brotación y Tasa de Multiplicación
Los días a brotación y tasa de multiplicación, no presentaron diferencias estadísticas (anexos 2 y 3), respectivamente, que los métodos de multiplicación evaluados no influyeron en el tiempo de brotación y porcentaje de multiplicación de brotes.
Figura 1 Valores promedios de porcentajes de enraizamiento y mortalidad
de las plantas procedentes de los métodos de multiplicación de plantas de plátano.
32 Los promedios de días a brotación y tasa de multiplicación, fueron valores obtenidos entre 8,08 y 8,35 días, no existió diferencia entre los tratamientos. Y la muerte del punto de crecimiento. (cuadro 8)
Al referirnos a la tasa de multiplicación, se observa una ligera diferencia numérica, donde el mayor porcentaje lo obtuvo la técnica de reproducción de acelerada semillas (TRAS), con 24,4% seguido del tratamiento cámaras térmicas con 22,43% y el método de altas densidades con 19,5%. Por su parte, el método de cebollines obtuvo un 16,13% de multiplicación.
Estos resultados permiten definir que los métodos de multiplicación tuvieron efecto sobre la tasa multiplicación expresada, pero no se lograron establecer diferencias estadísticas entre los tratamientos, como se muestra en el cuadro referido.
Cuadro 8. Días a la brotación y tasa de multiplicación al analizar cada método de propagación procedente de cuatro métodos de propagación de planta de barraganete. Tratamiento Días de la brotación Tasa de multiplicación (%) Método de cebollines 8,3 a 13,1 a
Método de alta densidad 8 a 19,5 a
Técnica de reproducción acelerada de
semillas (TRAS) 8,2 a 24,4 a
Cámara térmica 8,25a 22,4 a
Medias con una letra en común no son significativamente diferentes según el test de Tukey (0,05)
4.1.4 Altura de Planta, Diámetro del Pseudotallo y Cociente de Esbeltez
Los resultados estadísticos de las variables altura de planta, diámetro del pseudotallo y cociente de esbeltez se muestran en los anexos 4 y 5, en su orden, donde se puede apreciar que hubo diferencia estadística en todos los casos analizados.
33 La variable altura de planta se observa diferencia estadística entre el método de cebollines (T1) y el de cámaras térmicas (T4) con valores de 36,2 y 31,5 centímetros respectivamente. Por otra parte, el resultado obtenido por el método de altas densidades T2 (35,2 cm) es igual estadísticamente al método cebollines, cuadro 10. Los resultados obtenidos para esta variable indican que los métodos de multiplicación influyeron estadísticamente sobre la altura de las plantas.
El diámetro del pseudotallo de los brotes, se observan diferencias estadísticas, el método de cebollines obtuvo el valor más alto con 33.1 milímetros, al método. Por el contrario el tratamiento en alta densidad y la cámara térmica presentaron los valores más bajos respectivamente se presentaron como iguales estadísticamente a los mencionados anteriormente.
La variable cociente de esbeltez es considerada la indicadora de calidad de plantas, y se la incluyó en la ejecución del presente experimento. Este parámetro ha sido estudiado en la evaluación de la calidad de plantas en diversos cultivos. Esta variable relaciona altura de la planta y diámetro del tallo, donde se obtiene un resultado a partir de la división de la primera por la segunda.
En el cuadro 10 se muestran los valores y la separación de medias de la variable mencionada, pudiéndose notar que existe diferencia estadística en los valores obtenidos por los tratamientos. En este contexto, altas densidades con valor de 1,14 difiere estadísticamente a los demás tratamientos, los cuales obtuvieron 1,09 y 1,03 para método de cebollines, cámaras térmicas y el de la técnica TRAS 1,03 en su orden.
34 Cuadro 9. Altura de planta, Diámetro del pseudotallo y Cociente de esbeltez de plántulas procedentes de cuatro métodos de propagación de plátano barraganete. Tratamiento Altura de planta (cm) Diámetro del pseudotallo (mm) Cociente de Esbeltez Método de cebollines 36.2 a 33.1 a 1.09 b
Método de alta densidad 35.2 ab 30.8 bc 1.14 a
Técnica de reproducción acelerada
de semillas 32.3 bc 31.3 ab 1.03 c
Cámara térmica 31.5 c 28.8 c 1.09 b
Medias con diferentes letras son significativamente diferentes según el test de Tukey (0,05)
4.1.5 Área Foliar e Indice de Calidad de Dickson
El cociente de esbeltez, área foliar y el índice de calidad de Dickson son indicadores de calidad de plantas. En los anexos 6 y 7, presentan resultados del análisis estadístico realizado, donde se aprecia que existe diferencia significativa entre los tratamientos.
La variable área foliar (cuadro 10) se aprecia los valores obtenidos y separación de las medias según la prueba de Tukey. Los métodos de altas densidades y de cebollines presentaron los mejores promedios con 30,85 y 29,1 cm2, siendo estos estadísticamente similares.
El área foliar de las plantas fue influido por el método de multiplicación de donde procedieron. Los métodos de Cebollines y Altas densidades fueron los que mayor promedio presentaron, también ocurrió con las plantas procedentes de Cámaras térmicas, debido a la naturaleza de su origen tendieron a ser más pequeñas y por ende sus hojas menos desarrolladas, pero presentaron un número adecuado de hojas (5) a temprana edad en comparación a los demás tratamientos.
