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UNIVERSIDAD NACIONAL DEL CENTRO DEL PERÚ FACULTAD DE ZOOTECNIA
ECLOSIÓN DE OVAS EMBRIONADAS NACIONALES E IMPORTADAS Y SUPERVIVENCIA DE LARVAS DE TRUCHA ARCO IRIS EN LA PISCIGRANJA GRUTA MILAGROSA
ACOPALCA – HUANCAYO
TESIS
PRESENTADO POR EL BACHILLER:
MIGUEL ANGEL GARCÍA LIMAS
PARA OPTAR EL TÍTULO PROFESIONAL DE:
INGENIERO ZOOTECNISTA
HUANCAYO - PERÚ
2 012
2
ASESOR
DOCTOR. FERNÁN CHANAMÉ
ZAPATA
3 A dios que siempre está en mi camino, a mis abuelos, Marcelino García Palomino y Aniceta Limas Quispe que en paz descansa y a mi mama Irma Inés García Limas, que siempre me apoyaron incondicionalmente, inculcándome disciplina, honradez, lealtad y superación
DEDICATORIA
4
o A Dios por ayudarme espiritualmente y materialmente para lograr con mi
meta trazada.
o A la Universidad Nacional del Centro del Perú y en especial a la Facultad de
Zootecnia y catedráticos que compartieron sus conocimientos en mi formación profesional.
o Mi sincero agradecimiento al Biólogo Fernán Chanamé Zapata, por su
asesoramiento en la elaboración de mi tesis.
o A la piscigranja Gruta Milagrosa, por permitirme ejecutar el trabajo de investigación en sus instalaciones y proporcionarme todas las facilidades.
AGRADECIMIENTOS
5
ÍNDICE
Pág.
RESUMEN 1
INTRODUCCIÓN 3
I: MARCO TEORICO 5
1. INVESTIGACIONES REPORTADAS SOBRE PORCENTAJE DE FECUNDACIÓN, 5
EMBRIONAMIENTO Y SUPERVIVENCIA DE LARVAS LOGRADAS EN TRUCHA ARCO IRIS 2. OVAS IMPORTADAS 12
3. TRUCHA ARCO IRIS (Oncorhynchus mykiss) 14
3.1. ASPECTOS GENERALES DE LA TRUCHA ARCO IRIS 14
3.1.1. TAXONOMIA 14
3.2. CARACTERISTICAS MORFOLOGICAS 14
3.3. CARACTERISTICAS GENERALES EN LA REPRODUCCION DE LOS PECES 15
3.4. CARACTERÍSTICAS DEL AGUA PARA LA CRIANZA DE TRUCHAS 16
a. Temperatura 16
b. Oxígeno. 18
c. pH 19
d. Otros 20
3.5. PLANTEL DE REPRODUCTORES. 20
3.6. CARACTERÍSTICAS DE LOS PRODUCTOS SEXUALES. 23
6
3.6.1. CARACTERISTICAS GENERALES 23
3.6.2. RENDIMIENTO DE OVAS POR REPRODUCTOR 24
3.6.3. FACTORES QUE AFECTAN LA VIABILIDAD DE PRODUCTOS SEXUALES 25
3.7. SELECCIÓN DE REPRODUCTORES 28
3.7.1. SELECCIÓN DE REPRODUCTORES MADUROS 28
3.8. DESOVE DE REPRODUCTORES 29
3.8.1. DESOVE DE HEMBRAS MADURAS 29
3.9. METODOS DE DESOVE 30
3.9.1. DESOVE POR FRICCIÓN 30
3.9.2. DESOVE POR INTRODUCCIÓN DE OXÍGENO 31
3.10. REPRODUCCIÓN ARTIFICIAL 32
3.10.1. METODOS DE FECUNDACIÓN ARTIFICIAL 33
a. Método seco 33
b. Método húmedo 34
c. Método de La Solución Isotónica 35
3.11. FECUNDACIÓN 36
3.12. INCUBACIÓN 37
3.12.1. CARACTERISTICAS GENERALES DEL PERIODO 37
3.12.2. CAUSAS DE MORTALIDAD DE OVAS DURANTE LA INCUBACIÓN 37
3.12.3. METODOLOGIA DE LA INCUBACIÓN 38
3.12.4. EXTRACCION DE HUEVOS MUERTOS 39
3.12.5. INCUBACIÓN DE OVAS EN LA TRUCHA ARCO IRIS 39
3.12.6. PRUEBA DE FERTILIDAD 40
7
3.13. ECLOSIÓN 40
4. PROTOCOLO PARA LA RECEPCIÓN Y CONTEO DE LAS OVAS IMPORTADAS 41
4.1. RECEPCIÓN DE LAS OVAS 41
4.1.1. APERTURA DE LA CAJA 42
4.1.2. ACLIMATACIÓN DE LAS OVAS 42
4.1.3. AGUA PARA EL CRIADERO 42
4.1.4. DESINFECCIÓN 43
4.1.5. CONTEO DE LAS OVAS 44
4.1.6. INCUBACIÓN DE OVAS 44
5. REABSORCIÓN DEL SACO VITELINO 45
6. MALFORMACIONES MÁS FRECUENTES EN LARVAS DE TRUCHA EN EL PERÚ 49 6.1. Teratodymos 53
6.2. Espirilización de la Región Tronco Caudal (ERTC) 53
6.3. Lordosis 54
7. ANÁLISIS ECONÓMICO Y FINANCIERO 54
8. ASPECTOS E INDICADORES ECONOMICOS EN LA CRIANZA DE TRUCHAS 55
A. RELACIÓN BENEFICIO COSTO (B/C) 57
9. TERMINOLOGIA BASICA 57
II. MATERIALES Y MÉTODOS 60
2.1. LUGAR Y DURACIÓN DE LA INVESTIGACIÓN 60
2.1.1.- LUGAR 60
2.1.2.- DURACIÓN 60
2.2. TIPO Y NIVEL DE LA INVESTIGACIÓN 61
8
2.2.1.- TIPO DE INVESTIGACIÓN 61
2.2.2.- NIVEL DE INVESTIGACIÓN 61
2.3. DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN 61
2.4. POBLACIÓN Y MUESTRA 62
2.4.1.- POBLACIÓN 62
2.4.2.- MUESTRA 62
2.5. INSTRUMENTOS PARA LA RECOLECCIÓN DE DATOS 63
2.6. PROCEDIMIENTO PARA LA OBTENCIÓN DE DATOS 63
2.6.1.- PORCENTAJE DE ECLOSIÓN 63
2.6.2.- PORCENTAJE DE SUPERVIVENCIA DE LARVAS LOGRADAS 64
2.6.3.-PORCENTAJE DE MORTALIDAD DURANTE LA ECLOSIÓN Y REABSORCIÓN DEL SACO VITELINO 64
2.6.4.- PORCENTAJE DE MALFORMACIONES 65
2.6.5.- RELACIÓN BENEFICIO / COSTO 65
2.7. PROCESAMIENTO DE LA INFORMACIÓN 66
III. RESULTADOS 67
3.1. PORCENTAJE DE ECLOSIÓN 67
3.2. PORCENTAJE DE SUPERVIVENCIA DE LARVAS LOGRADAS 68
3.3. PORCENTAJE DE MORTALIDAD DURANTE ECLOSION Y REABSORCION DEL SACO VITELINO 70
3.4. PORCENTAJE DE DEFORMIDAD 72
3.5. RELACION BENEFICIO/COSTO 74
IV. DISCUSIÓN 75
9
4.1. PORCENTAJE DE ECLOSIÓN 75
4.2. PORCENTAJE DE SUPERVIVENCIA DE LARVAS LOGRADAS 76
4.3. PORCENTAJE DE MORTALIDAD DURANTE LA ECLOSIÓN Y REABSORCIÓN DEL SACO VITELINO 77
4.4. PORCENTAJE DE DEFORMIDAD 78
4.5. RELACION BENEFICIO/COSTO 79
V. CONCLUSIONES 80
VI. RECOMENDACIONES 82
VII. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS 83
ANEXOS 88
1. REGÍSTRO Nº 1 MORTALIDAD Y ECLOSION NACIONALES E IMPORTADAS 89
REGÍSTRO Nº 2 DEFORMIDAD PARA LARVAS NACIONALES E IMPORTADAS 90
REGÍSTRO Nº 3 TEMPERATURA MES JUNIO Y JULIO 91
2. ANALISIS ESTADISTICO PARA OVAS 92
3. ANALISIS ESTADISTICO PARA MORTALIDAD 92
4. ANALISIS ESTADISTICO PARA LARVAS LOGRADAS 93
5. ANALISIS ESTADISTICO PARA DEFORMIDADES 93
FOTOS DE LA PISCIGRANJA Y SALA DE INCUBACION 95
FOTOS DE OBTENCION DE OVAS NACIONALES 96
FOTOS DE LLEGADA DE OVAS EMBRIONADAS IMPORTADAS Y MEDICION DE Tº 97 FOTOS DE ATEMPERAMIENTO DE OVAS IMPORTADAS Y CONTEO MANUAL DE OVAS IMPORTADAS Y NACIONALES 98
10 COLOCACION DE OVAS EMBRIONADAS IMPORTADAS Y NACIONALES
Y SUPERVIVENCIA DE LARVAS IMPORTADAS Y NACIONALES 99
TIPOS DE DEFORMIDAD 100
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RESUMEN
La investigación se realizó en la piscigranja “Gruta Milagrosa” ubicado en el Distrito de Huancayo, Provincia de Huancayo, Región Junín, a una temperatura de 8ºC a 14ºC y altitud de 3730 m.s.n.m., iniciándose, el 01 de junio del 2012 y culminando el 28 de julio del 2012 teniendo como el objetivo general de Comparar larvas de trucha arcoíris nacionales e importadas, para lo cual se trabajó con ovas embrionadas obtenidas en la piscigranja y ovas embrionadas importadas provenientes de Dinamarca a las cuales se les dio las mismas condiciones para así compararlas, con el fin de determinarse los siguientes parámetros: determinar los porcentajes de eclosión y supervivencia de larvas logradas, porcentaje de mortalidad durante la eclosión y reabsorción del saco vitelino, porcentaje de deformidad y la relación Beneficio/Costo, para la cual planteamos la siguiente hipótesis: se obtendrán los mejores resultados de eclosión, supervivencia de larvas, menor mortalidad desde eclosión hasta larva lograda, menor deformidad y mejor relación beneficio/costo con las ovas embrionadas importadas provenientes de Dinamarca. Los resultados para las ovas embrionadas importadas y nacionales fueron los siguientes: porcentaje de
12 eclosión 95.3 y 94.62, supervivencia de larvas 88.85 y 82.81, porcentaje de mortalidad durante la eclosión y reabsorción del saco vitelino 15.32% y 21.64%, porcentaje de deformidad: 3.64% (0.05 % teratodymos, 3.22% lordosis y 0.37%
Espirilados) y 1.47% (0.54% lordosis y 0.93% Espirilados), la relación beneficio costo: 1.57 y 1.53, los cuales son óptimos para ambas muestras, se concluyó que con las ovas embrionadas importadas se obtuvieron los mejores resultados en los parámetros reproductivos y productivos.
13 INTRODUCCIÓN
La acuicultura es una de las mejores técnicas usadas por el hombre para incrementar la disponibilidad de alimento para el consumo humano y se presenta como una alternativa para la administración de los recursos acuáticos. La trucha "Arco iris" Oncorhynchus mykiss, no es una especie nativa de nuestro país pero es cultivada masivamente en diversas partes de nuestro territorio. La truchicultura no ha alcanzado su plenitud de desarrollo porque aún sigue adoleciendo de algunos factores que minimizan la producción y la falta de conocimiento de técnicas para superar estos problemas , las piscigranjas de hoy cuentan con una adecuada infraestructura, manejo y alimentación, sin embargo se ven afectadas por varios factores como son cambios bruscos de temperatura, disminución de oxígeno y otros, que influyen en el nivel de cría, recría y reproducción, por lo cual existen fluctuaciones en su proceso de producción a través de los años, encontrando aumento y disminución en la producción de ovas y larvas logradas por tal razón la mayoría de los productores está viendo por conveniente la importación de ovas embrionadas de países que se dedican específicamente a esta actividad ya que estos cuentan con técnicas sofisticadas, manejo de reproductores y certificación lo cual indica que las ovas embrionadas
14 importadas son mejores en comparación con las ovas embrionadas nacionales, ya que aminora el costo de mantenimiento de reproductores los cuales una vez al año son utilizados para la reproducción y es una carga más para el productor por el uso de una poza especial para ese rubro y la alimentación que según algunas investigaciones indican que el costo de mantenimiento supera el costo de ingreso que estos puedan dar al productor, cosa que con las ovas embrionadas importadas no se da. Para lo cual:
Se planteó las siguientes interrogantes
¿Cuál será el porcentaje de eclosión y supervivencia de larvas?
¿Cuál será el porcentaje de mortalidad durante la eclosión y la reabsorción del saco vitelino?
¿Cuál será el porcentaje de deformados?
¿Cuál será la mejor relación beneficio/costo?
Siendo la hipótesis planteada:
Los mejores resultados se obtendrán con las ovas importadas.
El objetivo general en el presente trabajo es:
Comparar larvas de truchas nacionales e importadas
Los objetivos específicos son:
Determinar el porcentaje de eclosión y supervivencia de larvas.
Determinar el porcentaje de mortalidad durante la eclosión y reabsorción del saco vitelino.
Determinar el porcentaje de deformados durante la etapa de larvas.
Evaluar la relación beneficio/costo
1 I. MARCO TEÓRICO
1. INVESTIGACIONES REPORTADAS SOBRE PORCENTAJE DE FECUNDACIÓN, EMBRIONAMIENTO Y SUPERVIVENCIA DE LARVAS LOGRADAS EN TRUCHA ARCO IRIS
BASTARDO (1993), estudió la tasa de fertilidad, tasa de nacimiento y porcentaje de larvas que alcanzaron la primera alimentación en la especie Oncorhynchus mykiss, diferenciando los cruces entre padres consanguíneos y no consanguíneos. Así mismo llevó el control de la sobre vivencia y elaboró tablas de vida de las diferentes clases de edades de las truchas que integraban la población de reproductores del Campo La Mucuy. La fertilidad observada en los cruces consanguíneos fue significativamente menor que la de los cruces no consanguíneos (P<0,001; gl = 19). La tasa de nacimiento y el porcentaje de larvas que alcanzaron la primera alimentación no presentaron diferencias significativas entre los que procedían de padres emparentados y no emparentados (P<0,2; gl = 19). Indicando que durante el primer año de vida de esta especie la mortalidad es elevada, ubicándose el período crítico durante la
2 incubación, específicamente en los primeros 11 días después de la fertilización, a partir de los cuales la sobrevivencia se mantuvo casi constante hasta los 2 años de edad cuando se presentó otro factor de mortalidad, el cual incremento su efecto al aumentar la edad de los reproductores. El valor más bajo de la esperanza de vida se encontró en la clase de edad de 0-1 año y el mayor valor se observó entre los 1,5-2,5 años de edad (6,40 ± 3,54).Se logró una tasa de nacimiento de un 95.5%, un porcentaje de 94.2% de larvas que alcanzaron la primera alimentación, En cruces no consanguíneos se encontró una tasa de fertilización de 53.7%, una tasa de nacimiento de 97,1% y 97,1% de larvas que alcanzaron la primera alimentación, La sobrevivencia de la trucha arco iris que se evaluó fue desde la fertilización hasta 391 días de edad. La progenie representada procede de un cruce entre hermanos, cuyos padres tenían 5 años de edad. Se pudo ver que hasta el día 11 de incubación la mortalidad fue elevada, alcanzando un 65%, después de esta edad y hasta los 39 días la mortalidad fue descendiendo hasta estabilizarse en un 12%. Los primeros huevos con embrión visible se observaron a partir de los 11 días; a los 18 días todos estaban embrionadas. Estos resultados parecen indicar que el período crítico del proceso de incubación se concentra en la fase de huevos verdes (sin embrión visible). La caída de la sobre vivencia se observó no solamente en esta progenie que presentó una elevada mortalidad, sino también en aquellas en donde la sobrevivencia fue alta, en las cuales se detectó un leve incremento de la mortalidad durante los primeros días del período de incubación.
3 La alta mortalidad encontrada durante la fase de huevos verdes puede deberse al hecho de que procedía de un cruce consanguíneo, ya que los resultados reportados en este trabajo indicaron claramente una disminución significativa en la tasa de fertilización de los cruces entre hermanos. Kincaid (1989), mencionado por Bastardo (1993), señaló que, en la trucha arco iris en una generación de cruces entre hermanos, se encontró una reducción significativa de la tasa de crecimiento, sobre vivencia, conversión de alimento e incremento en la frecuencia de larvas malformadas, también señala que la eficiencia en la conversión de alimento de los peces consanguíneos fue 5,6% menor que en los grupos no consanguíneos. Aulstad y Kittelsen (1990), mencionado por Bastardo (1993), señalaron que las deformaciones encontradas en larvas procedentes de cruces consanguíneos presentaron diferencias significativas con los controles y al menos parcialmente estas deformaciones son hereditarias. Igualmente señalaron que el factor o factores que causan las deformaciones observadas también causaron altas mortalidades en huevos y larvas que no mostraron deformaciones. Indica que entre otras causas que pueden originar altas mortalidades, es importante señalar los óvulos no fertilizadas; mala calidad de los huevos o sobre maduración de los mismos; semen de pobre calidad; causas externas y otras. Un inadecuado manejo durante esta fase puede ocasionar pérdidas considerables. Jensen y Alderci (1990), citado por Bastardo (1993), demostraron que los huevos de Oncorhynchus kisutch presentaron tres niveles de sensibilidad a los choques mecánicos; el primer nivel, inmediatamente después de la fertilización, el segundo
4 durante el período de clivaje celular y el tercero y más alto nivel después del cierre de la yema.
BARJA (2010), menciona que en 5 años de evaluación en el centro piscícola El Ingenio, el porcentaje promedio de embrionamiento fue de 63,89+10,35%; el porcentaje de mortalidad embrionaria fue 36,07+10,42% y el porcentaje promedio de supervivencia de larvas de trucha arco iris fue 70,43+5,22%.
MADALENGOITIA (2006), determino el shock térmico en Oncorhynchus mykiss “trucha arco iris” en el Centro Piscícola Motil – La Libertad su objetivo fue establecer la temperatura y el tiempo del shock térmico para la generación de triploides viables de Oncorhynchus mykiss. Las ovas fecundadas e hidratadas fueron sometidas a temperaturas de 26°, 28° por 5 y 10 minutos y a 30° por 3 y 5 minuto.
Teniendo como resultados: Un porcentaje promedio de mortalidad de ovas por un shock térmico de 5 minutos a una temperatura de 10ºC una mortalidad de 42.83%, a 26ºC una mortalidad de 41.72% y a 30ºC una mortalidad de 70.5%
En cuanto al porcentaje de sobrevivencia de larvas con temperaturas de tratamientos en shock térmico de 5 minutos, se obtuvo a una temperatura de 10ºC una sobrevivencia de 62.99%, a una temperatura de 26ºC una sobrevivencia de 37.39•% y a una temperatura de 30ºC una sobrevivencia de 19.74•%
5 BLANCO (1995), menciona que, los trabajos que realizaron con Salvelinus fontinalis, asimilables perfectamente a la trucha arco iris Oncorhynchus mykiss, donde las temperaturas biológicas las relacionó con las temperaturas industriales óptimas permitidas, haciendo constar que el porcentaje de alevines vivos depende no solamente de la temperatura de incubación, sino de las temperaturas en las que se haya realizado la ovulación.
BLANCO (1995), señala que, investigadores ingleses para precisar el término fertilidad a nivel de las explotaciones comerciales, han estudiado el porcentaje medio de supervivencia, partiendo de un número conocido de óvulos, en los diferentes estadios de desarrollo del huevo embrionado y alevín, Bromage y Cunaranatunga (1988), citado por Blanco (1995), establecieron como media, que a los siete días después de la inseminación el 90% de los óvulos utilizados han sido fecundados y se mantuvieron vivos. En el estadío siguiente, inmediatamente después de la aparición de los ojos, persistieron vivos el 80%
después de la eclosión del lote inicial, que continúo con un 75% en el estadío de larva. Después de comenzar a nadar persistieron un 60% y aproximadamente se encontraron vivos el 35% a los cuatro meses de edad.
Otro investigadores comprobaron con una media de supervivencia del 73% al llegar al estadio de ojos visibles, Springate y Bromage (1985), citado por Blanco (1995), señalaron que en las diferentes piscifactorías el valor más alto de
6 supervivencia hasta la fase de ojos visibles fue de 83% en una de las piscigranjas y el más bajo de 46.5%.
BASTARDO Y COCHE (1983), realizaron en su investigación la madurez gonadal de la trucha arco iris, a lo largo de un periodo reproductivo (1982-1983) de los meses de agosto a mayo. Durante el cual se controló la mortalidad diaria, encontrando una tasa de fertilización promedio de 0.41 mientras que la tasa promedio de nacimiento 0.80. Esto indica que bajo las condiciones de este estudio la primera fase de desarrollo de esta especie presenta elevadas mortalidades.
El mayor número de hembras maduras 63% fueron observadas durante los meses de octubre, noviembre y diciembre con lo que coincide con las temperaturas promedio más bajos. Los resultados señalan una alta tasa de nacimiento promedio (0.80+- 0.16 D.S) mientras que la tasa de mortalidad de los huevos antes de la aparición visible fue de 0.59 +- 0.19.Por último se encontró una tasa de fertilidad 0.41+- 0.19. No obstante a partir de los huevos embrionadas que sobrevivieron se obtuvo un 80 % de nacimiento o eclosión.
Los resultados de sobrevivencia en porcentaje desde la fertilización hasta la fase de alevines. Se observó una caída brusca desde el inicio de la incubación hasta la aparición visible del embrión. A partir de la fase de huevos embrionadas y hasta el nacimiento de larvas se observa una estabilización de la sobrevivencia para luego presentar una disminución durante la fase de alevines.
7 La fase de incubación tuvo una duración promedio de 24,30+-1,42 días con una temperatura promedio de 12,81+-0,51 Cº, estos resultados señala que la fase de incubación es más corta en Venezuela que en los países de donde esta especie es nativa. En cuanto a la tasa de mortalidad encontrada es este trabajo durante los primeros días de incubación coincide con lo reportado con otros autores.
ALVARADO (1996), en su trabajo de investigación se controló el efecto del peso sobre la maduración gonadal de la trucha arcoíris. Algunos investigadores han encontrado que el peso y la edad de maduración gonadal están relacionados, así el incremento del tamaño del pez por selección y factores ambientales favorables actúan decreciendo la edad de maduración sexual. La maduración temprana de las gónadas de las truchas hembras (desove precoz) ocurre un año o más antes que la mayoría de la misma edad, existen varios métodos para adelantar la maduración de las gónadas por tratamiento hormonal, el cual decrece la edad de maduración por 2 a 4 semanas y por manipulación del fotoperiodo en cuatro meses. Los métodos anteriores pueden ser usados para adelantar el desove en corto tiempo, de allí la importancia de estudiar el efecto del peso corporal sobre la edad de maduración de la trucha Arco Iris (Oncorhynchus mykiss) bajo condiciones de cultivo. Este trabajo se realizó con temperaturas entre 9- 12°C, el pH de 6,8 -7,8 y el oxígeno disuelto de 7,8 -9 Mg. /l. A las truchas se les evaluaban cada 8 días el estado de madurez; las que expulsaban los huevos por leve presión abdominal eran seleccionadas para realizar el desove al siguiente día se procedía a la fertilización por el método seco con semen de machos de
8 tres años de edad. En los resultados según Leitritz y Lewis (1989), citado por Alvarado (1996), señalaron que por selección genética en tres generaciones han logrado incrementar el número de truchas desovadas de 53% a 98% a los dos años de edad. Sin embargo en la maduración de las truchas no solo intervienen factores genéticos, sino también factores ambientales como el régimen de alimentación, el cual tiene un efecto mayor sobre la maduración de las hembras que de los machos. La tasa de fertilización y nacimiento fueron 72,54+16,88 y 78,02+11,83%, respectivamente y el porcentaje de larvas vivas a los 46 días de incubación fue de 95,26+4,75%. Gall y Gross(1984), citado por Alvarado (1996), encontraron en truchas de dos años de edad que procedían de tres criaderos diferentes, tasas de fertilización de 88,4; 85,5 y 73,2%, considerando ésta última como muy baja, presumiendo que se debe a entrecruzamiento en este lote de truchas. Los resultados del trabajo indican que esta población de truchas presentó una baja tasa de desove, fertilización y nacimiento.
2. OVAS IMPORTADAS
Kuramoto (2008), sostiene que los productores de ovas y alevines intervienen en el primer eslabón de la cadena de valor de la trucha. Las ovas o los huevos fertilizados de trucha generalmente son importados desde países como Estados Unidos, Dinamarca y Chile en donde se han desarrollado técnicas para lograr que las ovas contengan las características necesarias para que las truchas en su vida adulta tengan los estándares de calidad necesarios para su
9 comercialización y garanticen una adecuada rentabilidad del negocio (i.e.
mayor convertibilidad de alimento en peso, truchas hembras, etc.).
Existe también una producción nacional de ovas, pero sus características genéticas son menos convenientes para la crianza de truchas, ya que no se controla el sexo de los alevines resultantes o no hay un adecuado manejo de la consanguineidad de las ovas, que reducirá el rendimiento de la trucha adulta.
De acuerdo a los datos de Sierra Exportadora, hay cuatro productores nacionales de ovas con una producción de 4’500,000 de ovas por año, mientras que los importadores de ovas son 17 con un nivel de importación de 27 millones de ovas al año
Luego de un periodo de entre 20 y 35 días, las ovas eclosionan dando lugar a los alevines, que son las larvas de pez que luego se convertirán en las truchas engordadas que se comercializarán. Los productores de alevines venden su producto a los centros de crianza. Hay 32 productores que producen alevines con ovas importadas y 5 que producen con ovas nacionales (Sierra Exportadora, 2007).
10 3. TRUCHA ARCO IRIS (Oncorhynchus mykiss)
3.1. ASPECTOS GENERALES DE LA TRUCHA ARCO IRIS
3.1.1. TAXONOMIA
• Reino Animalia
• Subreino Metazoa
• Phylum Chordata
• Clase Osteichthyes
• Orden Salmoniformes
• Suborden Salmonoidoi
• Familia Salmonidae
• Genero Oncorhynchus
• Especie mykiss
• Nombre cientifico Oncorhynchus mykiss
• Nombre comun trucha arco iris Kendall (1988)
11 3.2. CARACTERISTICAS MORFOLOGICAS
Chaname y Lizárraga (2000), mencionan que la trucha arco iris se caracteriza por presentar un cuerpo fusiforme. El color de su tegumento es verde azulado, en el dorso de sus flancos, que posee reflejos de aspecto cobrizo y el vientre blanco.
A lo largo de los flancos muestra una franja iridiscente, distribuidos por todo el cuerpo, a excepción de la zona ventral, donde aparecen manchas negras de pequeñas dimensiones.
A través su ciclo biológico experimenta o puede sufrir variaciones en su morfología, coloración. Distribución geográfica, reproducción, etc. Debido a las condiciones específicas del medio ambiente en que vive. Las aletas características de la trucha arco iris, Son: una aleta caudal, una aleta dorsal, una aleta adiposa, dos aletas pectorales, dos aletas ventrales y una aleta anal.
Las truchas son animales dioicos (sexos separados) diferenciándose los sexos por algunas características externas. Por ejemplo el macho es de cuerpo más delgado, la cabeza de forma triangular con la mandíbula inferior ligeramente más prolongada en forma de pico, la hembra tiene la cabeza redondeada (ovalada) y el cuerpo más voluminoso.
La trucha arco iris es el salmónido más apropiado utilizado en el cultivo industrial y en el consumo directo, por su rápido crecimiento, menor tiempo de incubación y mayor facilidad de adaptación a la alimentación artificial.
12 3.3. CARACTERISTICAS GENERALES EN LA REPRODUCCION DE LOS PECES.
Blanco (1995), manifiesta que desde un punto de vista general, la reproducción de los peces se realiza atendiendo al origen y comportamiento fisiológico de sus órganos sexuales o gónadas, por dos mecanismos distintos.
Dependiendo de las especies, uno denominado gonocorismo y el otro por hermafroditismo.
Entendemos por gonocorismo en los peces a la existencia de un determinado órgano sexual en un determinado individuo, que le define claramente en este sentido. Así decimos que un individuo es macho por la presencia única de testículos, y hembra por la presencia única de ovarios. La mayoría de las especies de peces conocidas son peces gonogoricos, es decir son machos o son hembras, y habitualmente en la reproducción se comportan como tales. Esta condición de macho o hembra le viene impuesto por su carga genética.
3.4. CARACTERÍSTICAS DEL AGUA PARA LA CRIANZA DE TRUCHAS
a. Temperatura
Blanco (1984), afirma que la trucha en condiciones naturales es un pez que puede vivir en aguas comprendidas entre 0º y 25ºC, sin embargo los límites entre los cuales su crecimiento y desarrollo son óptimos, corresponden a 9ºC como
13 límite inferior y 17ºC como límite superior. La temperatura adecuada para que la trucha arco iris, realice sus funciones en forma óptima, es de 15ºC.
Sobre el desarrollo embrionario y la eclosión actúan dos factores fundamentales:
la temperatura del agua donde se realiza la eclosión y la concentración de oxígeno en ella. La temperatura es el factor más importante, pues actúa sobre la duración del periodo de incubación y sobre el tiempo de eclosión. El primer huevo eclosionado aparece a los 290 grados-día siendo necesario 70 grados-día más para que la eclosión se realice en su totalidad.
Huet (1978), manifiesta que la incubación se realiza en agua muy pura a una temperatura relativamente alta: de 10ºC a 12º C, distinguiendo tres fases en el periodo que se extiende desde el principio de la incubación hasta que finaliza la reabsorción de la vesícula vitelina.
1ra Fase: De la fecundación hasta la aparición de los ojos.
2da Fase: De la aparición de los ojos a la eclosión.
3era Fase: De la eclosión hasta que finaliza la reabsorción de la vesícula.
La rapidez del desarrollo embrionario de las distintas fases de incubación depende de varios factores, que a su vez dependen sobre todo de la temperatura;
es más corta para la trucha “arco iris” que para la común.
La duración del desarrollo embrionario se expresa en grados-día, dato que indica el número de días que exigiría la incubación de los huevos de una especie de pez a la temperatura de un grado centígrado.
14 El periodo de duración de la incubación expresada en días, por la temperatura media de la incubación, constituye un número bastante constante.
Para la trucha común es de 400 a 460 grados-día; para la trucha arco iris es de 290 a 330 grados-día. La eclosión dura alrededor de 50 grados-día para los huevos de una misma puesta.
La reabsorción de la vesícula dura aproximadamente 220 grados-día para la trucha común y el salvelino, y 180 grados-día para la trucha “arco iris”.
Imaki (1987), manifiesta que debe evitarse temperaturas mayores a 13ºC por lo menos desde la aparición de los ojos en la ova; pasado el periodo embrionario, la ova puede eclosionar sin obstáculos graves a una temperatura de 18ºC, sin embargo, la temperatura conveniente oscila entre 10 º y 12ºC.
Ramírez, (1989), menciona que la evaluación limnológica de un cuerpo de agua comprende la temperatura, que es un factor determinante del crecimiento, desarrollo y reproducción, considerando apta para la incubación, entre 8 y 11ºC.
b. Oxígeno.
Blanco (1984), manifiesta que la tasa de oxígeno tiene un valor secundario con respecto a la temperatura, pero sus variaciones dan origen a modificaciones de los tiempos establecidos.
Así los huevos en incubación tienen necesidades de oxígeno menor que los alevinos, pero el éxito de la eclosión depende en gran parte de la tasa de
15 oxígeno. El óptimo establecido es de 4,5 – 7 mg/l, siendo el mínimo que asegura las funciones fisiológicas del huevo de trucha arco iris 2,9 mg/l, originándose una mortalidad del 100% con 1,6 mg/l.
Huet (1978), señala que las necesidades de oxígeno para los salmónidos son de 9 mg/l, lo que corresponde a una temperatura de 20 ºC en agua pura;
excepcionalmente y momentáneamente, el contenido de oxígeno puede bajar hasta 5,5 mg/l.
Imaki (1987), indica que la concentración de oxígeno por debajo de 4 mg/l, ocasiona un mal desarrollo del embrión, con aparición de alevinos deformes en tasa elevada. Se necesita una buena oxigenación por encima de 5,4 mg/l, durante todo el proceso de incubación.
c. pH
Blanco (1984), afirma que los valores normales de pH para el cultivo de truchas varían entre 5,5 y 9,5 siendo estos, los límites de alarma para los huevos y alevinos de salmónidos; la persistencia de estos valores puede ser causa de mortalidad.
16 Huet (1978), manifiesta que la mejor agua piscícola es la que tiene una reacción neutra o ligeramente alcalina (pH entre 7,0 y 8,0); el límite superior peligroso de pH es variable según la especie y llegaría a 9,2 para las truchas y a 10,8 para lucio, carpa y la tenca.
d. Otros
Ramírez (1989), manifiesta que el bióxido de carbono, que normalmente se encuentra en el agua en bajas concentraciones producto del proceso de respiración y oxidación, siendo recomendable no exceder los 4 mg/l. Otro factor que determina la productividad de las aguas, es la alcalinidad total cuyos valores deben fluctuar entre 20 a 200 mg/l. Así mismo la dureza total que expresa la capacidad de solubilidad del agua, para fines truchícolas se recomienda de 80 a 300 mg/l.
3.5. PLANTEL DE REPRODUCTORES.
Leitritz (1980), mencionados por Morales (1995), sostiene que el mejoramiento de la vida de animales y plantas de varios tipos, a través de la selección de reproductores es un viejo arte, el cual ha producido casi todos nuestros animales domésticos y plantas cultivadas. En muchos casos la evolución de nuestras razas y variedades presentes se pierden en la antigüedad. En años recientes la nueva ciencia de la genética aplicada a la reproducción de plantas y animales ha
17 acelerado grandemente los mejoramientos. En países donde la piscicultura es importante razas importantes han venido siendo desarrolladas por varios propósitos, incluyendo el rápido crecimiento, resistencia a las enfermedades, gran belleza, etc. Para resolver los requerimientos de una reproducción artificial, hay muchas cosas que deben ser consideradas para hacer de un programa un éxito.
La producción de huevos en la época correcta del año, resultando peces que alcancen tallas correctas para el poblamiento cuando sean necesitados, es muy importante desarrollo de razas que maduren a los dos años en vez de a los tres ahorra el costo del manejo del reproductor. Un año extra selección de reproductores para obtención de huevos grandes da como resultado alevinos con un mejor inicio en la vida y alta supervivencia. La selección de hembras que producen un número grande de huevos es importante ya que reduce el número de peces reproductores requeridos. Es siempre importante seleccionar huevos de alta calidad. Es importante seleccionar los peces más grandes de la raza de dos años de edad, dado que asegura un rápido crecimiento del pez con incremento en la economía de un programa de producción de truchas. Es esencial seleccionar peces con buena conformación y coloración tanto en machos y hembras, sino fuera así, deformidades y pobre condición de los peces serán reproducidas. Resistencia a enfermedades también pueden ser desarrolladas a través de la selección de crianza. El objetivo de un programa de selección de crianza es abastecer de peces reproductores de calidad y al mismo tiempo continuar la mejora de la economía de la producción de alevinos, peces de tamaño subcapturable y capturable a través de medios genéticos.
18 Sedwick (1976), dice que el plantel de reproductores constituye la base de cualquier unidad productora de ovas y alevinos. El manejo que se les proporcione determina su óptimo rendimiento y por ello deben ser tratados con cuidado, además, constituye un capital valioso para el piscicultor.
Turli (1970), refiere que en el Perú, la época de reproducción de trucha Arco Iris está comprendida entre abril y noviembre, siendo los meses de mayor actividad Junio y Julio.
En la sierra central, el desove abarca los meses entre mayo y setiembre.
Ministerio de Pesquería (1975). Cabe mencionar que las modificaciones climáticas sufridas en los últimos años están cambiando las épocas de desove, ya que actualmente las épocas de desove según los datos de los registros de la piscigranja “La Cabaña”, se dan a partir de los meses de Abril a Diciembre, siendo época de mayor actividad los meses de mayo a Julio. Iniciando la actividad reproductiva de las hembras a partir de los dos años de edad y los machos a la edad de un año.
Arrignon (1984), las hembras desovan una vez al año, mientras que los machos pueden renovar su reserva de esperma varias veces en la misma temporada.
Completando esta recomendación este autor agrega que en los cultivos se requiere de 0,6 litros/minuto/metro cuadrado, lo que representa un aforo de 2 litros/segundo en un estanque de 200 m2. Otros autores establecen niveles de
19 aforo a base de la biomasa cultivada: 5 litros/segundo por tonelada de trucha, Sedwick (1976) y 1 litro/min./Kg según Arrignon (1984). Ambos autores señalan que la cantidad de agua necesaria para el cultivo de trucha depende del nivel de crianza y de la temperatura del cuerpo acuático y dan estos valores para temperatura no mayores de 15ºC el rango de aforo que recomiendan fluctúa entre los 0,3 y 1 litro/min./Kg para peces mayores de un año.
Para conseguir que los reproductores maduren en condiciones óptimas, se recomienda mantenerlos en estanques a temperatura constante de 15,5ºC los primeros 16 meses de vida para luego trasladarlos a estanque de reproductores 12ºC para que completen su maduración Leitritz (1980).
Para estimular la producción de esperma, es práctica común colocar un grupo de hembras en maduración en un estanque cuyas aguas deriven al estanque de los machos Huet (1983).
3.6. CARACTERÍSTICAS DE LOS PRODUCTOS SEXUALES.
3.6.1. CARACTERISTICAS GENERALES.
Durante la época de desove, es fácil apreciar las características de los productos sexuales (ovas y esperma) maduros y con ello a los reproductores hábiles para la reproducción.
20 Huet (1983), menciona que en un grado óptimo de madurez la buena lecha es blanca y cremosa; la lecha mala es acuosa y grumosa. Una lecha no madura, solo será expulsada y bajo una fuerte presión y estará mezclada con sangre.
La lecha esta demasiada madura, si, primeramente sale un líquido acuoso seguido a continuación por una lecha igualmente acuosa.
Los huevos maduros deben expulsarse fácilmente, los huevos solo permanecen maduros ocho días. Los huevos demasiados maduros originan alevines entre los que hay dominancia del sexo masculino y bastantes malformaciones.
3.6.2. RENDIMIENTO DE OVAS POR REPRODUCTOR.
Como referencia de producción de ovas Brown y Gratzer (1980), señala que una hembra de dos años puede alcanzar un promedio de 15 ovas por gramo, con 102 gramos de ovas (1530 ovas), mientras que una hembra de tres años puede contener 8 a 9 ovas por gramo, con 256 gramos de ovas (2210 ovas). El incremento en el tamaño de los huevos es del orden del 40%, mientras que el número de ovas se incrementa en un 42%.
Para hembras de tres años Sedwick (1976), refiere que pueden producir 3000 ovas mientras que Arrignon (1984), menciona que la hembras de esta edad de aproximadamente un kilogramo aportan menos ovas por individuo, pero proporcionalmente más ovas por kilogramo, de 2700 ovas, 0.7kg en promedio.
Los machos producen alrededor de 3 ml de esperma, producción homogénea para la mayoría de reproductores de dos a cuatro años Huet (1983).
21 3.6.3. FACTORES QUE AFECTAN LA VIABILIDAD DE LOS PRODUCTOS SEXUALES.
a. LA TEMPERATURA DE MADURACIÓN.
Leitritz (1980), coincide en señalar que probablemente no exista otro factor que influya más en el desarrollo de los peces y agrega que los reproductores deben mantenerse a temperaturas de 10 a 12,5ºC por un periodo de seis meses antes de la época de desove. Añade que las temperaturas inferiores a los 5.5ºC y las superiores a los 13ºC afectan la maduración y sostiene que los huevos provenientes de reproductores mantenidos a temperaturas superiores a los 13.5ºC no se desarrollan normalmente.
b. ALIMENTACIÓN
Huet (1983), señala que los reproductores mantenidos en estanques deben ser alimentados hasta los dos meses antes del inicio de la época de desove en forma normal, luego para reducir la tasa de alimentación en ese lapso y suspenderla totalmente al iniciarse la temporada de desove. Las variaciones bruscas en la calidad y cantidad del alimento pueden inducir a la esterilidad en el reproductor.
22 También señala que la producción de ovas y esperma depende de la calidad y cantidad del alimento suministrado.
c. LA EDAD Y LA TALLA.
Huet (1983), menciona que la edad del inicio de la maduración en la trucha Arco iris es de dos años para las hembras y que debido a ello recomienda que las ovas de hembras menores no deben utilizarse ni de aquellas de más de seis años.
Tanto la cantidad como la calidad de los productos sexuales mejoran con la edad y a partir de los dos años hasta los cuatro donde empieza a declinar.
Huet (1978), asegura también que la talla del macho no influye sobre la talla del alevín, pero que algunas características deseables del parental pueden transmitirse a sus descendientes, tales como la precocidad en el crecimiento, por lo que estos reproductores deben separarse y utilizarse en el desove. En cuanto al porcentaje de hembras estériles, menciona que este aumenta del 15% en hembras de tres años a más del 50% en hembras de más de seis años. En lo relacionado a la producción de esperma de los machos agrega que la edad óptima se encuentra entre el segundo y cuarto año de vida.
d. PRESENCIA DE OVAS RESIDUALES REABSORBIDAS.
23 La presencia de ovas residuales reabsorbidas obstaculiza la fecundación de las ovas viables, como también causan trastornos en el sistema reproductor del pez durante el desove, además, la reabsorción conduce a una posible esterilidad del reproductor según diversos autores.
e. TAMAÑO DE LAS OVAS.
El diámetro de las ovas se relación con alevinos de mayor o menor talla, según sea mayor o menor el tamaño de la ova, las ovas de los reproductores de menos de tres años, son por estos motivos considerados inapropiados para la producción de alevinos, por la baja viabilidad relacionada con un diámetro entre 3,5 y 5 mm. Según lo menciona Huet (1983).
f. EXTRACCIÓN DE OVAS INMADURAS O SOBREMADURAS.
Las hembras maduras como las hembras sobremaduras, constituyen un problema en el momento del desove, más agudo en el segundo caso. Las ovas provenientes de reproductores de estas condiciones se asocian a bajas tasas de fertilidad y daños al sistema reproductor del pez, en relación con la utilización de hembras de menos de tres años, el hecho de que estos animales contengan ovas inmaduras los hace inadecuadas para el desove, porque contiene una proporción mayor de ovas inmaduras que las de mayor edad. Aun cuando tienen ovas maduras Huet (1983).
24 Se deben evitar desovar hembras inmaduras ya que esto da como resultado ovas rotas, pobre fecundación y posibles daños permanentes en el sistema reproductor del pez Leitritz, (1980), pues tanto la inmadurez como la sobre maduración traen consigo daños para el pez y perjudica la fecundación siendo imposible alcanzar un nivel óptimo.
3.7. SELECCIÓN DE REPRODUCTORES.
3.7.1. SELECCIÓN DE REPRODUCTORES MADUROS.
Huet (1983), afirma que esta selección debe realizarse cada tres a ocho días.
Leitritz (1980), agrega que la estimación del tiempo exacto de desove es de gran importancia, pues la viabilidad de las ovas alcanza su nivel máximo en un margen muy estrecho de tiempo, siendo uno de los aspectos de mayor trascendencia en una piscigranja, pues se relación con óptimos porcentajes de fecundación.
Esta selección se realiza mediante el examen del reproductor y de las características externas que denotan la madurez. En las hembras el abdomen es blando, hinchado y el poro genital se observa inflamado y protuberante; basta una leve presión hacia la abertura genital para expulsar las ovas maduras. Los machos presentan la mandíbula inferior prominente y una fuerte coloración iridiscente. La presión hacia la abertura genital causa la salida del esperma Huet (1983).
25 Sedwick (1976), es más reservado al describir las características de los reproductores maduros, asegurando que la determinación de la madurez es función de la experiencia del operario y que uno experimentado puede reconocer el grado de madurez sin el manipuleo.
3.8. DESOVE DE REPRODUCTORES.
3.8.1. DESOVE DE HEMBRAS MADURAS.
Leitritz (1980), menciona que el acto de obtener óvulos del pez hembra y la esperma del pez macho son referidos como desove o extracción de ovas.
Las palabras huevo u ova son sinónimos, aun cuando se considera que los méritos de la propagación artificial no son tan grandes como se pretendió en los tempranos años de la piscicultura.
Sedwick (1976), afirma que el describir la metodología del desove en forma literal ayuda poco a alcanzar la eficiencia necesaria para conseguir buenos resultados en la fecundación, y que esta debe adquirirse mediante la práctica del desove.
Los pasos generales de esta etapa son: la selección de ejemplares maduros, el desove de las hembras, la fecundación de las ovas con el esperma del macho, el
26 lavado y endurecimiento de las ovas y la instalación de estas en los bastidores de incubación.
La descripción de los métodos de desove y fecundación artificial es materia de la sección siguiente. Para los pasos previos y subsecuentes a los métodos de desove y fecundación nos basamos en la amplia información presentada por Sedwick (1976), Brown y Gratzer (1980), Leitritz (1980) y otros.
3.9. METODOS DE DESOVE
3.9.1. DESOVE POR FRICCIÓN.
Se toma la trucha hembra procurando secarla, luego sujetando con la mano izquierda por el pedúnculo caudal, siempre manteniendo el cuerpo del pez oblicuamente con la cabeza hacia arriba, con la mano derecha y dedo pulgar e índice se desliza suavemente por el vientre de la trucha con una continua y regulada presión desde la altura de la base del opérculo hasta el oviducto genital, tratando de extraer todos los óvulos posibles, toda esta operación deberá realizarse en el menor tiempo posible, para luego devolver las truchas al estanque de recuperación. De igual modo se procede con la trucha macho, vertiendo el líquido seminal directamente en los óvulos contenidos en un recipiente, uniendo de esta manera los productos sexuales de la trucha macho y de la trucha hembra muy suavemente utilizando una pluma de ave, para luego dejar en reposo por espacio de 20 minutos para luego proceder al lavado de los
27 huevos, con agua limpia y baja presión con la finalidad de eliminar la esperma excedente y residuos de excremento que han salido juntamente con los óvulos al momento del desove. La técnica del desove se ve ventajosamente con la ayuda de una mesa desovadora, especialmente cuando la trucha es de mayor tamaño y peso.
3.9.2. DESOVE POR INTRODUCCIÓN DE OXÍGENO.
MEZA F. (2002) menciona que para el desove por este método, se procede de la misma manera en la sujeción de la hembra, para luego ubicarla en la mesa desovadora con la finalidad de inmovilizar al pez, procediendo luego a insertar con la mano derecha la aguja hipodérmica de ½ a 1 pulgada, dentro de la cavidad del cuerpo, dependiendo del tamaño del pez, la aguja es insertada en la cavidad celómica del pez por debajo de la aleta ventral derecha zona media del pez para obtener mejores resultados. La presión de la fuerza del aire dentro de la cavidad celómica es de cerca de 2 ½ a 3 libras por pulgada cuadrada. Cuando el desove ha sido completado, la aguja es retirada y el aire en el pez es expelido con la mano derecha haciendo una ligera presión en la zona ventral. Experimento han demostrado que un pequeño menor de numero de ovas quedan en el pez después de un desove por introducción de aire que después del desove por fricción y en muchos casos el desove por aire es más rápido, los óvulos son limpios y no hay cubiertas rotas, hay menos oportunidad de daño a los peces adultos particularmente por un desovador experimentado.
28 3.10. REPRODUCCIÓN ARTIFICIAL.
Drummond (1988), refiere que la proporción de hembra a macho es cuestión de opiniones, del tiempo y disponibilidad de machos sexualmente maduros. Un macho por cada tres hembras es una proporción bastante adecuada, aunque se ha llegado a trabajar hasta con 15 hembras de 3 años por cada dos machos de tres años. La mayoría de las truchas “Arco Iris” mantenidas en piscifactorías de agua dulce, alcanzan la madurez sexual al final del tercer año de vida, a menos que se haya obtenido un lote tardío.
Imaki, (1987), nos dice que el objetivo de la reproducción artificial es estabilizar el suministro del recurso trucha de buena raza y sana. Es necesario que los reproductores se seleccionen y tengan como norma un cuerpo robusto, sano, grande y de una misma generación. En cuanto se refiere a los reproductores machos, estos llegan a madurar en dos años y se disponen a fecundar ovas de varias hembras a la vez, y en repetidas veces. La razón recomendada de reproductores por sexo es de tres hembras a un macho.
Pérez (1982), dice, en principio, que los reproductores son utilizados por primera vez al tercer año de vida. La mejor edad para las hembras es entre los tres y seis,
29 ya que después de los siete años los óvulos tienden a volverse estériles; los machos tienen su mejor época entre los tres y cuatro años. El periodo de celo en las hembras solo dura ocho días, y en los machos es más largo, pues se puede exprimir hasta tres a ocho veces con intervalo de una a dos semanas.
Rubín (1979), dice que la edad para iniciarlos en su función de sementales es, entre los dos y cuatro años, y deben sustituirse cuando rebasen los cinco años, en que comúnmente comienza a declinar su potencial genético. Una hembra joven de dos años ya puede ser fecundada, pero dará crías más débiles y en menor número; y otro tanto puede suceder con el macho que aun cuando aparenta completa madurez sexual, aportara cantidad mucho menor de espermatozoides y engendrara hijos de menor fortaleza.
3.10.1. METODOS DE FECUNDACIÓN ARTIFICIAL.
a. METODO SECO.
Pérez (1982), menciona que el método seco logrado por el ruso Wrasskij en (1896), se distingue del método húmedo porque los productos sexuales en un recipiente libre de agua. Con éste método se alarga sensiblemente los cortísimos tiempos en el que los espermatozoides pueden fecundar al huevo.
Arrignon (1984), menciona que en el método seco, el huevo está rodeado de una película de líquido celómico y lecha que facilita la movilidad de los
30 espermatozoides, aumenta la amplitud de desplazamiento y prolonga su vida. Es importante tener en cuenta esta circunstancia para el proceso de fecundación artificial. Por eso, es mejor el empleo del método “Seco” que el llamado método
“Húmedo”, inspirado en las condiciones de reproducción natural y sujeto al imperativo del tiempo, pues la fecundación debe ser dentro de 90 segundos. El método de fecundación en seco se funda en que el acto de la unión del espermatozoide con el ovulo deberá realizarse en un ambiente propiciando solo por el contenido del fluido ovarico, el cual es expulsado juntamente con los óvulos al momento del desove.
b. METODO HUMEDO.
Pérez (1982), menciona que este método de fecundación, tiene como principio dar las condiciones como en la naturaleza se realiza con los productos sexuales de las truchas hembras y machos que viven en ambientes naturales, procediendo el desove indicado con anterioridad a diferencia que los óvulos de la hembras son recepcionados en recipientes que contengan una cantidad apropiada de agua;
para luego verter en ella el líquido seminal y ayudados por la pluma de ave, realizar movimientos ondulatorios muy suaves para así poder mejorar la fecundación. Luego se deja en reposo por espacio de 20 minutos y finalmente proceder al lavado expulsando los espermatozoides y heces restantes para luego dejar en reposo para el respecto endurecimiento.
31 c. METODO DE LA SOLUCIÓN ISOTÓNICA.
Wakabayashi (1989), refiere que el método de solución isotónica, descubierto en Japón por el doctor Desaburo Inaba, M. Nomura y K. Tominaga (1958) utiliza la
solución isotónica
Cloruro de Sodio (Químicamente Puro)……… ...90,4 g.
Cloruro de Potasio……….. 2,4 g.
Cloruro de Calcio bihidratado……… 2,6 g.
Agua……… 10,0 l.
En este método se emplean los mismos procedimientos de desove, pero en lugar de recibir los óvulos en seco o en agua, se utiliza la solución isotónica contenida en el recipiente para realizar un lavado previo a la fecundación, después del lavado se procede a adicionar el líquido espermático del macho para ser mezclado muy suavemente con una pluma de ave y así ayudar a una mejor fecundación.
La solución isotónica deberá ser preparada el mismo día del desove disolviendo 100 gramos de sal común en 10 litros de agua y se agrega al recipiente antes de realizar el desove. El principio del método consiste en mantener en solución las albuminas mediante la concentración de electrolitos de tal forma que no obstaculice la fecundación de las ovas viables Leitritz (1980).
32 3.11. FECUNDACIÓN.
Leitritz y Lewis (1980), refieren que el micrópilo en su posición normal en un ovulo recientemente desovado tiene la apariencia de un pequeño apéndice semejante a un cornucopio diminuto aproximadamente en ángulo recto a la cubierta exterior y proyectado hacia adentro. Este pequeño apéndice comienza a moverse hacia un lado tan rápido como el agua entra a través de los poros e inicia la mezcla con el fluido peri vitelino. El micrópilo está en su posición de gran abertura al tiempo en que el ovulo es tomado del pez. Tan pronto como este comienza a moverse de un sitio a otro, la abertura decrece en tamaño y continua haciéndolo hasta que el micrópilo sea movido hasta una posición la que sella completamente la abertura de la cubierta exterior, por esta razón la gran oportunidad para la fecundación ocurre inmediatamente después que el ovulo haya sido desovado. Ha sido establecido que una gota de esperma contendría suficientes espermatozoides para fecundar 10,000 ovas. Es necesario que el contacto entre la esperma y los óvulos ocurra, allí entonces la necesidad de movimientos y mezcla de huevos y esperma juntos dado que hay una limitación en el tiempo en que tanto los óvulos y la esperma se mantienen viables, una correcta medición del tiempo en las operaciones de desove es necesario.
33 3.12. INCUBACIÓN.
3.12.1. CARACTERISTICAS GENERALES DEL PERIODO.
Sedwick, (1976), menciona que después de la fecundación, los huevos se lavan e hidratan de 10 a 15 minutos hasta alcanzar su volumen y consistencia final.
Para posteriormente ser trasladados a la sala de incubación disponiéndolos en los bastidores o incubadoras evitando diferencia de temperatura de más de un grado centígrado entre el agua del balde y de la artesa, por ser los huevos muy sensibles a las variaciones de temperatura.
Además no deberán ser expuestas a la radiación de la luz solar, pues los rayos ultravioletas causarían grandes mortalidades cuando inciden sobre los huevos. La duración de la incubación es función de la temperatura, Huet (1983), señala que esta tiene una duración de 290 a 330 grados-día.
Brown y Gratzer (1980), cita un margen de duración más estrecho de 307 a 310 grados-día para temperaturas entre 10 y 12,8 grados centígrados.
3.12.2. CAUSAS DE MORTALIDAD DE OVAS DURANTE LA INCUBACIÓN
34 Huet (1983), menciona que los huevos son muy sensibles a los golpes a partir de los 5 a 8 días de incubación, hasta la aparición de los ojos.
Sedwick (1976), menciona también que los huevos son sensibles a la micosis que empieza a desarrollarse sobre las ovas muertas no extraídas y se extiende a las viables, las deficiencias de oxígeno disuelto pueden acarrear mortalidades masivas.
3.12.3. METODOLOGIA DE LA INCUBACIÓN
Huevos recién extraídos o huevos verdes, pueden ser manipulados y medidos tan pronto como ello inicien su endurecimiento por agua y por aproximadamente 40 horas después, dependiendo de la temperatura del agua, las ovas verdes nunca deben ser manipuladas o movidos innecesariamente durante el proceso de endurecimiento, ni después que aquellos que tengan 48 horas o más, cuando el desarrollo se acelera y el primer estado de delicadeza se inicia después que las manchas oculares aparecen, los huevos de trucha y salmón pueden ser manipulados sin un gran peligro de daño en tanto ellos no sean sujetos a golpes inusuales, congelación o deshidratación. Varios métodos de medida y conteo de huevos han sido desarrollados aunque todos tienen ciertos defectos. El método volumétrico de california con otros dos bien conocidos métodos fueron adoptados hace muchos años por su precisión y simplicidad. Uno de estos métodos utiliza la regla o canaleta de Von Bayer Leitritz (1980) y mediante ella puede determinar el
35 diámetro promedio de las ovas y haciendo el uso de una tabla de conversión que completa la medición se puede determinar el número de huevos por litro.
El método consiste en colocar en la canaleta de sección triangular de 12 pulgadas de longitud, una muestra de ovas de la bandeja con que se trabaja, se contabilizan las ovas se repite el procedimiento por varias veces para así poder tener un promedio con mayor precisión. El número de ovas en promedio en 12 pulgadas de la canaleta permite hallar los datos mencionados en la receptiva tabla y así poder realizar los cálculos de produccion.
3.12.4. EXTRACCION DE HUEVOS MUERTOS
A menos que un fungicida sea usado para prevenir del hongueamiento a los huevos muertos y la expansión de los hongos a los otros fértiles, es necesario retirar los huevos muertos. Esto se llama extracción de huevos muertos.
La técnica fue mejorada cuando la pipeta fue universalmente adoptada para la extracción de huevos muertos, esto consiste en un tubo de vidrio largo cerca de 8 pulgadas de longitud. Insertado dentro de un bulbo o jeringa de jebe, donde se irán succionando uno en uno los huevos muertos evitando mover los otros sanos y fértiles.
3.12.5. INCUBACIÓN DE OVAS EN LA TRUCHA ARCO IRIS
36 INCOPESCA, (2010), señala que, la incubación que comprende desde la fecundación del huevo hasta el nacimiento del alevín. Tiene una duración aproximada de 34 días dependiendo de la temperatura del agua (a mayor temperatura menor tiempo y viceversa). Esta etapa es delicada y requiere de mayor cuidado pues necesita que el agua corra constantemente y sea de la mejor calidad posible. Por lo general se utilizan filtros con el fin de retener sólidos suspendidos y la temperatura debe estar idealmente entre los 9 y 13 °C.
Aproximadamente a los 17 días se observa la aparición de los ojos y la formación de la columna vertebral, entonces se Ie llama "ova embrionado". En esta etapa la ova es fuerte y se pude manipular, siendo posible su transporte hacia otros lugares.
3.12.6. PRUEBA DE FERTILIDAD
Leitritz y Lewis (1980), manifiestan que para ovas de salmón la muestra de ovas a analizar se sumerge en una solución de ácido acético a 5 o 10%, al cabo de unos minutos el embrión es blanqueado por el ácido siendo posible determinar si la ova se encuentra fecundada, esta operación se puede hacer a partir de las 48 horas de incubación y cuanto más desarrollado se encuentre el embriones más fácil hacer la determinación.
3.13. ECLOSIÓN
37 Al término de la incubación el alevín rompe la membrana externa con la cola y emerge del cascaron (Huet 1983).
La eclosión dura alrededor de 50 grados día aproximadamente una semana, así lo primero aparece la cabeza, el alevín se abre paso con dificultad, pudiendo morir, entre los alevinos que nacen primero es entre los que se producen mayor número de malformaciones.
Sedwick (1976), menciona que en las aguas ligeramente acidas, las cascaras de los huevos se disuelven, pero en aguas alcalinas, es necesario removerlos pues obstruyen las mallas de los bastidores o incubadoras, se debe aumentar el aforo hasta cuatro veces su nivel durante la incubación, pues la eclosión requiere un suministro adicional de oxígeno disuelto.
4. PROTOCOLO PARA LA RECEPCIÓN Y CONTEO DE LAS OVAS IMPORTADAS
4.1. RECEPCIÓN DE LAS OVAS
www.troutlodge.com (2011), dice que una vez llegadas las ovas al criadero, es importante tomar nota de la condición del empaque y de las ovas, además de realizar un conteo preciso de las ovas recibidas. Adicionalmente asegúrese de medir con precisión las condiciones del criadero, incluyendo temperatura y saturación de oxígeno del agua. El tomar nota de toda esta información no sólo
38 es importante para sus propios registros y futuras etapas del proceso de incubación, sino que también permite a troutlodge realizar un mejor diagnóstico de la causa de cualquier problema en la rara situación de que se produzcan problemas en la eclosión de las ovas.
4.1.1. APERTURA DE LA CAJA
www.troutlodge.com (2011), afirma que los clientes deben abrir las cajas de ovas con extremo cuidado.
4.1.2. ACLIMATACIÓN DE LAS OVAS
www.troutlodge.com (2011), dice que una vez abierta la caja, es crítico aclimatar las ovas al agua del criadero. La aclimatación significa que la temperatura de las ovas gradualmente se iguale a la temperatura de incubación de su criadero. Las ovas llegarán sobre hielo a una temperatura de +/- 4ºC (39.2ºF) y se recomienda que usted aumente la temperatura de las ovas tan lentamente como 1ºC cada hora.
4.1.3. AGUA PARA EL CRIADERO
www.troutlodge.com (2011), señala que debido a que un buen comienzo es crítico para lograr un crecimiento y sobrevivencia de los peces a largo plazo y a la
39 mayor susceptibilidad de peces a enfermedades y mal manejo durante las etapas iniciales, es imperativo que usted use el agua de mayor calidad de su criadero.
Idealmente los sistemas de criadero deben ser de paso y usar agua fría libre de patógenos. La temperatura ideal de incubación para trucha Arcoíris es 8-12ºC (~46-54ºF), aunque las temperaturas entre 4 y 18ºC (~39-64ºF) son satisfactorias si se toman ciertas precauciones. Un programa estricto de bioseguridad debería estar operando en el criadero para limitar la introducción de enfermedades. Este programa debe incluir, como mínimo, un pediluvio y maniluvio desinfectante y todo equipamiento debe ser reservado exclusivamente para uso en el criadero.
4.1.4. DESINFECCIÓN
www.troutlodge.com (2011), sostiene que todas las ovas despachadas han sido desinfectadas en una solución de yodo de 100 ppm al momento de su hidratación y antes de su incubación, y luego nuevamente antes de su empaque.
Sin embargo, muchos piscicultores desinfectan las ovas nuevamente a su llegada, ya sea por elección o porque se requiere por ley. Es crítico considerar que las ovas no deber ser desinfectadas dentro de los cinco (5) días previos a la eclosión, ya que esto puede causar mortalidad excesiva y/o eclosión prematura.
Las ovas son despachadas desde Troutlodge con 245 TCU, lo que significa que llegarán con ~65 TCU (6.5 días a 10ºC) faltantes antes de la eclosión.
40 4.1.5. CONTEO DE LAS OVAS
www.troutlodge.com (2011), afirma que una vez que las ovas han sido exitosamente aclimatadas, y por lo tanto re-hidratadas, usted puede proceder a contarlas. Se pueden usar varios métodos para contar ovas. Trotlodge usa el método Von Bayer al contar y empacar ovas, ya que es simple y preciso. Otros métodos incluyen desplazamiento volumétrico, pesaje, o uso de un contador de ovas eléctrico. Independientemente del método usado, repita el proceso tres a cinco veces para asegurar un conteo preciso.
4.1.6. INCUBACIÓN DE OVAS
www.troutlodge.com (2011), afirma que una vez que haya realizado los pasos para la recepción y conteo de las ovas, es el momento de pasarlas a sus incubadoras. Como en todos los pasos en el proceso del criadero, esto debe ser realizado con gran cuidado sólo por personal capacitado. Existen muchos sistemas de incubación y es importante encontrar uno que se adecúe a sus necesidades y presupuesto. Los tres sistemas más comunes de incubación son:
o Bateas de incubación horizontales ("California trays")
o Incubadoras de jarro con flujo ascendente ("Mac Donald Jars")
