GUÍA PARA PRÁCTICAS DE LABORATORIO

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FICA| Guía para Prácticas de Laboratorio ₁

IAI 310 - FISIOLOGÍA VEGETAL

GUÍA PARA PRÁCTICAS DE

LABORATORIO

ING. AGROINDUSTRIAL Y DE

ALIMENTOS

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Presentación

La presente Guía para Prácticas de Laboratorio ha sido desarrollada para que los estudiantes de la asignatura de Fisiología Vegetal dispongan de la información necesaria para la realización de las prácticas correspondientes de acuerdo a los temas, objetivos y resultados de aprendizaje definidos. En este documento se incluye el proceso en el laboratorio de experimentación e investigación, con los respectivos recursos y resultados esperados, para que el estudiante pueda desarrollar su práctica-taller y la elaboración de sus respectivos informes o cualquier otra evidencia de aprendizaje, que serán evaluadas con las rúbricas que constan en los anexos.

La guía presenta una secuencia donde se especifica cada sesión de prácticas en laboratorio con su respectivo proceso didáctico y formativo.

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1.- OBJETIVO General

Determinar las pruebas de germinación en diferentes suelos y sustratos.

Específicos

Evaluar el metabolismo de la semilla.

Cuantificar los días la germinación en diferentes tipos de suelo y sustratos. Presentar resultados por medio de promedios y desviaciones estándar, con sus respectivas interpretaciones.

2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS Adquirirás las siguientes habilidades:

1. Evalúa los procesos del metabolismo de la semilla, hasta su

germinación.

2. Entrena en la presentación científica de resultados.

Semillas: 180 en total y sanas, es decir sin plagas ni enfermedades. 90 de ellas serán de (monocotiledónea) maíz y las 90 restantes de especie dicotiledónea, (fréjol).

3 bandejas de propagación con 50 celdas c/u.

Polietileno para cubrir los mesones de trabajo, para evitar que el sustrato/humedad ensucie el laboratorio.

Sustrato comercial, suelo de jardín y arena (todos para la siembra de semillas). Deben calcular que cada uno delos sustratos a usar, deberá cubrir una bandeja entera.

4.- ACTIVIDAD FORMATIVA

ASIGNATURA: Fisiología Vegetal

SIGLA: IAI 310 PARALELO: 1,2,3 PERIODO: 2018-1 Fecha: Octubre 2017 PRÁCTICA No: 1 SESIONES: 1

TEMA: GERMINACIÓN DE SEMILLAS EN DIFERENTES SUELOS

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Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberás conocer lo siguiente:)

Nociones de Fisiología Vegetal y su relación entre la genética y el medio ambiente.

Agua, suelo y semilla, su relación con el metabolismo de la semilla.

Descripción de la actividad:

Se procederá a repartir en igual número de receptáculos los distintos tipos de sustrato/suelo a ser evaluados. En cada sección bien demarcada, se sembrarán ambas especies para evidenciar posibles diferencias. No colocar las semillas a profundidades mayores a 1 cm! Humedecer los sustratos/suelos, más NO encharcar las bandejas de germinación.

Una vez preparadas las bandejas de germinación, ponerlas sobre las bandejas plásticas de recolección de cualquier impureza/agua.

Tomar las debidas anotaciones durante la práctica de laboratorio, igualmente fotografías para su informe grupal.

A los 10 días tomar datos relacionados a: *porcentaje de semillas germinadas *porcentaje de semillas no germinadas *altura de plántulas obtenidas

*número de hojas visibles (verdaderas).

Es exclusiva responsabilidad del grupo regar las plántulas para llegar al final del experimento.

El informe técnico de la práctica de laboratorio, se entregará a tiempo en el formato manejado ya por estudiantes en la cátedra de Química (en formato electrónico Word). Este formato estará disponible en el aula virtual.

5.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Bidwel, R. (2002). Fisiología Vegetal. México. Editorial: Mundi Prensa, edición en español.

Ascón-Bieto, J., Talón, M. Fundamentos de Fisiología Vegetal. (2008). 2da Edición. España. Editorial: Mcgraw-Hill.

6.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS

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FICA| Guía para Prácticas de Laboratorio ₅

Comprobar la importancia de la calidad lumínica en el crecimiento de plantas.

Específicos

Evaluar las diferencias de crecimiento vegetativo en respuesta a la calidad de luz. Comprender cómo las plantas reaccionan diferente a las condiciones ambientales. Examinar si existen diferencias estadísticas al 5% entre los tratamientos.

1. Evalúa los procesos del metabolismo vegetal en crecimiento. 2. Entrena en la presentación científica de resultados.

Bandejas de propagación con plántulas mono y dicotiledóneas, bandejas plásticas para evitar que el sustrato/humedad caiga en la cámara, diferentes sustratos y suelo, cámara climática con fotoperíodo 10h. Papel celofán de color: azul, verde y rojo, polietileno negro (en suficiente cantidad) para crear compartimentos sobre las bandejas, palos pinchos de bambú, cinta adhesiva. Traer reglas plásticas.

Nociones de la fisiología vegetal y su relación entre la genética y el medio ambiente.

Agua, suelo, planta, su relación con el metabolismo de la planta.

Aprovechando las bandejas de germinación en la cámara climática, a cada una de ellas

Fecha: Noviembre 2017 PRÁCTICA No: 2 SESIONES: 1

TEMA: EFECTO DE LA LUZ EN CRECIMIENTO DE PLANTAS

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FICA| Guía para Prácticas de Laboratorio ₆ se las dividirá en 4 secciones. Cada sección abarcará los distintos sustratos usados y las

especies ya sembradas.

Se procederá a crear las paredes de separación lumínica por medio de polietileno negro, palos de bambú y cinta adhesiva. Una vez determinadas las zonas, se las cubrirá con los diferentes colores de papel celofán, uno por sección. De esta manera solo un tipo de irradiación cubrirá una sección.

Tomar las debidas anotaciones durante la práctica de laboratorio, igualmente fotografías para su informe grupal.

Se anotará inicialmente: número de hojas presentes por planta, altura de plántula. Se tomará la altura de cada planta al final del experimento y se hará un promedio de cada variable por cada tratamiento para poder reportarlas en el informe. Al final del experimento se tomarán datos de:

Área foliar total Número de hojas Espacio entre nudos

Biomasa (peso fresco, peso seco: después de 3 días @ 70°C).

Es exclusiva responsabilidad del grupo regar las plántulas para llegar al final del experimento.

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Comprobar la influencia de fuente lumínica y temperatura en la transpiración de un vegetal.

Específicos

Evaluar las diferencias de velocidades de conducción de una solución en el xilema en respuesta a la cantidad de luz.

Evaluar las diferencias de velocidades de conducción de una solución en el xilema en respuesta a distintas temperaturas.

Comprender cómo las plantas reaccionan diferente a las condiciones ambientales. Calcular las velocidades de transporte por el xilema.

1. Evalúa la velocidad del transporte por el xilema. 2. Entrena la presentación científica de resultados.

Materiales a traer por grupo:

3 apios de tamaño grande (se usarán 9 hojas con sus pedúnculos por frasco), escalpelo (hay en laboratorios, pero pueden traer estiletes también para más velocidad de trabajo), cinta adhesiva, 1 caja de cartón (min 60*40*40 cm, pero no gigantescas tampoco, deben poder contener una lámpara sin causar incendio). Solución de azul de metileno al 25% (hay en el laboratorio), 3 frascos de vidrio de mayonesa o nutella grande (boca ancha). Mínimo 3 reglas plásticas y dos lámparas pequeñas sin pantalla (transportables y de preferencia no de pinza): cada una con un foco/bombilla de 60 W.

Es imperioso traer las lámparas como han sido descritas.

Medio metro de polietileno negro para cubrir cualquier paso de luz indeseado. De igual manera, se usará el frigorífico del LQ2 para 1 frasco con sus respectivas 9 hojas.

Fecha: Diciembre 2017 PRÁCTICA No: 3 SESIONES: 1

TEMA: VELOCIDAD DE TRANSPORTE POR EL XILEMA

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Relación planta-fuente de irradiación.

Se separarán hojas de apio con sus respectivos tallos y se introducirán 9 en cada frasco (De ser necesario traer más frascos). Cada momento en el tiempo se tomará la medición de 3 pedúnculos. Tiempos de medición: 15, 25 y a los 45 min). De esta manera cada grupo constará en cada momento de medición con 3 valores y esto para cada condición. La base de las hojas se introducirá en las soluciones de azul de metileno al 25%. Un frasco con 9 hojas (3 frascos por grupos: uno a dejar sobre el mesón del LQ6, otro dentro de caja y otro en la refrigeradora LQ2). Poner el 1er frasco dentro de la caja. El segundo dejar sobre el mesón y por último, el tercer frasco se coloca en el frigorífico del LQ2. Respetar la regla de decisión aclarada en clase.

Se anota el momento del inicio del experimento. Y se toma datos en tiempos específicos. Mediante el tiempo transcurrido y la distancia recorrida por la solución se puede calcular la velocidad de transporte por el xilema.

𝑣𝑒𝑙𝑜𝑐𝑖𝑑𝑎𝑑 (𝑐𝑚 ℎ ) =

60 ∗ 𝑑𝑖𝑠𝑡𝑎𝑛𝑐𝑖𝑎 𝑡𝑖𝑒𝑚𝑝𝑜

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Evaluar el efecto de las fitohormonas en la brotación de raíces y en brotación desde nudos.

Específicos

Evaluar el efecto de fitohormonas para acelerar la brotación desde meristemas. Evaluar el efecto de fitohormonas en la brotación de raíces.

Evaluar el incremento de biomasa (peso fresco y peso seco) en los diferentes tratamientos.

1. Evalúa el efecto de la aplicación de la fitohormona en la brotación de tejido desde los meristemas.

2. Aplica el uso de las fitohormonas en cultivos de importancia nacional.

3. Capacita en la presentación científica de resultados.

1000ml de producto a dosis recomendada con auxina (única fitohormona) 1000ml de producto a dosis recomendada con citoquininas (única fitohormona) 20 estacas de mora de castilla (o material vegetal pedido), importante asegurar homogeneidad de material a ser obtenido.

15kg de sustrato comercial (una sola marca; NO tierra de jardín)

4 macetas plásticas grandes alargadas con hoyos para permitir percolación de

ASIGNATURA: Fisiología Vegetal

SIGLA: IAI 310 PARALELO: 1-3 PERIODO: 2018-1 Fecha: Octubre 2017 PRÁCTICA No: 4 SESIONES: 1

TEMA: EFECTO DE LAS FITOHORMONAS EN LA BROTACIÓN MERISTEMÁTICA

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FICA| Guía para Prácticas de Laboratorio ₁₀ agua.

Serán prestados durante el semestre algunas macetas de la materia, pero los grupos tienen la responsabilidad de completar el número de macetas necesarios para cumplir con la práctica, y al terminarla devolver las macetas en buen estado. 1 spray blanco mate para pintar las macetas plásticas.

1 marcador permanente de punta gruesa de color negro.

1 tijera de jardinería (de preferencia marca Felco). SOLO ser cortará así el material, no con cuchillos ni tijeras escolares.

Conocimiento del efecto de las fitohormonas como reguladores, promoviendo o inhibiendo el crecimiento y desarrollo del tejido meristemático

Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberás dominar lo siguiente:)

Conocimiento de punto de crecimientos meristemáticos.

Conocimiento de acción hormonal (para la entrega del documento al final del semestre).

Se procederá a preparar las diluciones en función de las recomendaciones del producto comercial (venir con los cálculos preparados). El mismo número de estacas serán tratados con los productos y en cada equipo de trabajo dejará un grupo como testigo (en total 3 soluciones y por último el testigo: agua pura).

En cada producto a utilizarse se formulará la concentración recomendada por la casa comercial.

En cada solución se deberá sumergir las estacas por un lapso de 1 h, luego del cual se dejará secar al ambiente por 20min para su posterior siembra. Cada maceta tendrá un solo tratamiento.

Previa exposición de las estadas en las soluciones: Cada grupo tomará el promedio del peso inicial de las estacas y al final del experimento evaluará: peso fresco total, peso fresco y peso seco de raíces (únicamente), número de hojas y altura de planta, número de nudos con biomasa.

Las estacas para asegurarse de que sean de la misma calidad se conseguirán del mismo lugar y con mínimo 4 nudos cada una. Tener en cuenta la dirección de siembra de las estacas. Si las estacas son grandes, se deberán podar técnicamente mediante el uso de la tijera de jardín (NADA MÁS).

El día del pesaje seco: cada grupo deberá procesar TODO su material para su secamiento en el disecador del LQ2 (3 días a 70 Celsius). Identificar de manera adecuada para no confundir estacas!!!!!! Usar fundas de papel kraft y coordinar

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FICA| Guía para Prácticas de Laboratorio ₁₁ con tiempo ingreso con ayudante de laboratorio.

Tomar las debidas anotaciones durante la práctica de laboratorio, igualmente fotografías para su informe grupal. Con datos tomados: procesar de manera adecuada y presentar científicamente.

Es exclusiva responsabilidad del grupo cuidar de sus plantas para no romper

los brotes conseguidos, evitar secamientos y aplicar las recomendaciones para el buen procesamiento de datos.

El informe técnico de la práctica de laboratorio, se entregará a tiempo en el formato manejado ya disponible en el aula virtual.

Bidwel. R. (2002). FISIOLOGIA VEGETAL. México. Editorial: mundi prensa, edición en español.

Ascòn. Bieto. Fundamentos de Fisiología Vegetal. ( 2008). 2da. Edición. España. Editorial: Mcgraw-Hill.

Espinosa R., Guerron A. (2012). Enraizamento de diferentes estructuras vegetativas de mora de castilla (rubus glaucus benth) utilizando diferentes tratamentos con hormonas. Universidad Técnica del Norte.