3.2. Discusiones
3.2.7. Capacidad antioxidante ABTS
valores de R2 para betalaínas-capacidad antioxidante y fenólicos totales- capacidad antioxidante son de 0,0078 y 0,2178 respectivamente, claro indicador de una relación muy débil entre estas variables.
Figura 9: Porcentaje de variación de la capacidad antioxidante determinado por DPPH. Variedad Negra collana: 1) cocción a presión atmosférica, 2) cocción a alta presión, 3) tostado, 4) laminado, 5) extruido, 6) expandido.
2,03 mmol Trólox/kg m.s. (5,10; 5,91 y 6,49 mmol TE/kg m.s) En ambos casos no se conoce la variedad de quinua investigada. Menor también al contenido encontrado para semillas amaranthus cruentus variedad Rawa 11,42 ± 1,2 y 12,71 ± 1,1 mmol TE/kg m.s. para la variedad Astek.
La escarificación de estos granos generó variación de la capacidad antioxidante en el orden de 30,95 %; 28,92 % y 19,19 %, con valores de 94,14 ± 1,153; 98,07 ± 0,280 y 81,72 ± 3,489 mg TE/100 g m.s.
respectivamente. Cuando los granos escarificados se cocieron a presión atmosférica, los cambios mostrados fueron de 31,15 %; 47,03 % y 84,99 % respectivamente (tabla 11), con valores de 125,26; 145,10 Y 166,72 mg TE/100 g m.s. respectivamente. Existiendo diferencias significativas entre estos tres resultados.
La cocción a alta presión mantuvo la tendencia observada en el caso anterior, obteniendo capacidades antioxidantes de 114,48 ± 0,715; 131,84 ± 0,552 y 121,51 ± 1,091 mg TE/100 g m.s., para las variedades Huancayo, Pasankalla y Negra collana (tabla 11 y figuras 6 a, b y c), con variación de 20,37; 33,76 y 39,79 % en relación al contenido en quinua escarificada (tabla 12).
El tostado generó capacidades antioxidantes de 114,46 ± 1,124; 151,99 ± 0,518 y 172,95 ±1,121 mg TE/100 g m.s. (tabla 11 y figura 6 a, b y c), existiendo diferencias significativas entre ellas, con variaciones en el orden del 20,35; 53,92 y 91,23 % (tabla 12) en relación a los granos escarificados, para las tres variedades de quinua. Después del laminado las capacidades antioxidantes determinadas fueron 75,26 ± 0,430; 82,43 ± 0,257 y 60,07 ± 0,184 mg TE/100 g m.s. con variaciones de -18,86 %; -15,65 % y -21,65 %;
siendo este el caso que muestra una caída en referencia a los valores informados para quinua escarificada. En la determinación realizada por DPPH se tuvo una tendencia similar aunque con valores fueron cercanos a cero.
Una vez extruidos los granos escarificados las capacidades antioxidantes determinadas fueron 109,34 ± 0,391; 228,13 ± 1,670 y 102,91 ± 0,48; para las tres variedades de quinua estudiadas con variaciones de -15,23 %;
130,05 % y 21,19 %. En cambio cuando los granos escarificados fueron expandidos los valores determinados fueron de 170,54 ± 0,143; 167,33 ± 0,438 y 174,86 ± 0,565; existiendo diferencias significativas entre estos, con variaciones del 76,80; 69,26 % y 93,14 % respectivamente.
La variación de compuestos fenólicos totales y betalaínas como la capacidad antioxidante medida con ABTS, para la variedad Huancayo, se muestra en la figura 10 construida en base a la información que aparece en las tablas 5;
8 y 12,. Aquí se observa que la proporción de variación del contenido de betalaínas es bastante grande, desde -16,72 % para cocción a presión atmosférica, hasta 1087,87 % para expandido, en cambio la variación del contenido de fenólicos totales es menor y va desde -50,83 % para grano extruido hasta 22,83 % para expandido. En este último caso, se evidencia una relación relativamente fuerte entre los fenólicos totales (variable independiente) y la capacidad antioxidante (variable dependiente), explicado por la ecuación y = 1,0154x + 42,665; con un coeficiente de determinación R2 = 0,7402; que indica la proporción de la variación total de la variable dependiente Y explicada por la variación de la variable dependiente X (Lind, Marchal y Wathen, 2012).
La relación de las betalaínas con la capacidad antioxidante muestra un R2 = 0,3446 que es bastante débil. Por lo que se puede afirmar que el mayor aporte a la variación de la capacidad antioxidante está dado por el contenido de fenólicos totales, porque aún grandes variaciones del contenido de betalaínas como en el producto expandido con variación del 1087,87 % (eje 6), y de 489,23 % (extruido eje 5), no ha generado un incremento representativo de la variación de la capacidad antioxidante, más bien, este último se ha mantenido cercano a la variación de fenólicos totales.
Figura 10: Porcentaje de variación de la capacidad antioxidante determinado por ABTS. Variedad Huancayo: 1) cocción a presión atmosférica, 2) cocción a alta presión, 3) tostado, 4) laminado, 5) extruido, 6) expandido.
La figura 11 construida en base a la información que aparece en las tablas 5; 8 y 12, muestra el claro aporte tanto de betalaínas como de fenólicos totales en la variación de la capacidad antioxidante. En los ejes 2; 5 y 6 se observa que la variación de betalaínas en el orden de 86,84 %; 448,43 % y 228,25 % respectivamente hace que también se repunte la variación de la capacidad antioxidante, lo que indica que la presencia de betaninas y betaxantinas en el color rojo de los granos de la variedad pasankalla es considerable. Mientras la variación de fenólicos totales se mantiene con variación pequeña que va entre -33,23 % (Laminado o eje 4) hasta 26,27 % para el grano extruido (eje 6), pero, aporta de manera sostenida a la
-200 0 200 400 600 800 1000 1200
1
2
3
4 5
6
betalainas (% de variacion) Fenolicos totales (% de variacion) capac antioxidante abts (% de variación)
variación de la capacidad antioxidante. En este caso los coeficientes de determinación que relaciona estas variables se mantiene con R2 = 0,1615 para fenólicos totales y de R2 = 0,5847 para betalaínas, con ecuación y = 0,2073x + 24,722. En ambos casos muestran débil explicación.
Figura 11: Porcentaje de variación de la capacidad antioxidante determinado por ABTS. Variedad Pasanakalla: 1) cocción a presión atmosférica, 2) cocción a alta presión, 3) tostado, 4) laminado, 5) extruido, 6) expandido.
La figura 12 construida en base a la información que aparece en las tablas 5; 8 y 12, igual que en los dos casos anteriores muestra que existe un aporte sostenido del contenido de fenólicos totales en la variación de la capacidad antioxidante, mientras la variación del contenido de betalaínas tiene un aporte un tanto errático, como el existente en los ejes 5 y 6 (granos extruidos y expandidos) que muestran variaciones que van de 860,05 % a 442,12 %, pero la variación de la capacidad antioxidante se mantiene cercano al de fenólicos totales, mientras para quinua cocida a alta presión (eje 2), y el
-100 0 100 200 300 400 500
1
2
3
4 5
6
betalainas (% de variacion) Fenolicos totales (% de variacion) capac antioxidante abts (% de variación)
laminado (eje 4) el aporte de la variación de las betalaínas (183,94 % y 171,32 %) es representativa.
Figura 12: Porcentaje de variación de la capacidad antioxidante determinado por ABTS. Variedad Negra collana: 1) cocción a presión atmosférica, 2) cocción a alta presión, 3) tostado, 4) laminado, 5) extruido, 6) expandido.
-100 0 100 200 300 400 500 600 700 800 900
1
2
3
4 5
6
betalainas (% de variacion) Fenolicos totales (% de variacion) capac antioxidante abts (% de variación)
CONCLUSIONES
Las conclusiones a las que se arribaron como producto de la ejecución de la investigación son las siguientes:
1. La variación en porcentaje del contenido de fenólicos totales muestra un cambio positivo generado por la escarificación (Huancayo 14,50±0,21; Pasankalla 31,70±1,41; Negra collana 21,35±0,11), cocción con agua a presión atmosférica (Huancayo 4,38±0,68; Pasankalla 16,64±0,82), tostado (Negra collana 2,45±0,83), expandido (Huancayo 22,83±0,53; Pasankalla 26,27±0,85), en los otros casos se verifica una disminución de fenólicos totales.
2. El cambio porcentual del contenido de betalaínas muestra una disminución cuando la quinua es sometida a cocción en agua a presión atmosférica (Huancayo -16,72±7,07; Pasankalla -16,19±10,39; Negra collana -1,07±9,87) y al ser escarificada (Negra collana -13,53±9,64), las demás operaciones generaron cambios positivos.
3. La variación en porcentaje de la capacidad antioxidante medida en DPPH, mostró cambios positivos para casi la totalidad de operaciones y métodos de cocción utilizados a excepción del tostado (Pasankalla -42,06±0,51; Negra collana -40,05±0,49), laminado (Pasankalla -3,22±0,56; Negra collana - 0,31±1,91) y expandido (Pasankalla -0,41±1,07; Negra collana -4,78±0,01).
4. El cambio porcentual de la capacidad anatioxidante medida en ABTS, evidenció variaciones positivas para la mayor parte de operaciones y métodos de cocción utilizadas, a excepción del laminado (Huancayo -18,86±0,43; Pasankalla - 15,65±0,26; Negra collana -21,65±0,18) y extruido (Huancayo -15,23±0,29).
RECOMENDACIONES
1. Emprender investigaciones, siguiendo el mismo procedimiento experimental del presente estudio, considerando otros colores intermedios del epispermo de granos comerciales de quinua, entre otros: amarillo, crema, marrón, gris, verde y otros matices con que se cuentan, además de incorporar la operación de cocción con microondas.
2. Profundizar el estudio de los componentes bioactivos que durante las operaciones de proceso quedan en la quinua, se eliminan en las aguas de cocción, y en los restos de pericarpio separado durante el escarificado.
3. Profundizar el estudio, para determinar los tipos de ácidos fenólicos y las diversas subclases de flavonoides presentes en los granos de quinua de las variedades Huancayo, Pasankalla, Negra collana y otras.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
Abderrahim, F., Huanatico, E., Segura R., Arribas, S., González C., & Condezo, L. (2015). Physical features, phenolic compounds, betalains and total antioxidant capacity of coloured quinoa seeds (Chenopodium quinoa Willd.) from Peruvian Altiplano. Food Chemistry, 186, 83-90.
Aguilar, S. (2005). Fórmulas para el cálculo de la muestra en investigaciones de salud. Secretaría de Salud del Estado de Tabasco Villahermosa, México.
Ahmed, I., Mikail, M., Bin, M., Bin, N., Rasad, M., Ghani, R. (2015). Antioxidant activity and phenolic profile of various morphological parts of under utilised Baccaurea angulata fruit. Food Chemistry, 172, 778-787.
Akbar, E., Sadiq, Z., Zia, M. (2018). Betalains: Biomolecular Aspects. Springer International Publishing AG, part of Springer Nature. Disponible en:
https://doi.org/10.1007/978-3-319-95624-4
Aldave, G. (2016). Efecto de la temperatura y tiempo de tostado en los caracteres sensoriales y en las propiedades químicas de granos de cacao (Theobroma cacao L.) procedente de Uchiza, San Martín, Perú para la obtención de NIBS. Tesis Para optar el Grado Académico de Magíster en Ciencias de los Alimentos. Unidad de Posgrado Facultad de Farmacia y Bioquímica de la Universidad Nacional Mayor De San Marcos.
Alongi, M., Verardo, G., Gorassini, A., & Anese, M. (2018). Effect of pasteurization on in vitro α-glucosidase inhibitory activity of apple juice.
Food Science and Technology, 98, 366-371.
Altan, A., Maskan, M. (2012). Development of extruded foods by utilizing food industry by products. Advances in Food Extrusion Technology.
Contemporary Food Engineering Series, 1, 121-167.
Alvarez, L., Wijngarrd, E., Arendt, E. Gallager, E. (2010). Polyphenol composition and in vitro antioxidant activity of amaranth, quinoa buckwheat and wheat as affected by sprouting and banking. Food Chemistry, 119, 770-778.
Anderson, A. (1992). Art of Treating Starch Material. Specification forming part of Letters Patent No. 707,892. New York.
Anton, A., Fulcher, G., Arntfield, S. (2009). Physical and nutritional impact of fortification of corn starch-based extruded snacks with common bean (Phaseolus vulgaris L.) flour: Effects of bean addition and extrusion cooking. Food Chemistry, 113, 989-996.
Apaza, V., Cáceres, G., Estrada, R., Pinedo, R. (2013). Catálogo de variedades comerciales de quinua en el Perú. Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación y la Agricultura Representación de la FAO en el Perú - Instituto Nacional de Innovación Agraria (INIA).
Asimi, O. Sahu, N., & Pal, A. (2013). Antioxidant capacity of crude water and ethylacetate extracts of some Indian species and their antimicrobial activity against Vibrio vulnificus amednd Micrococcus luteus. Journal of Medicinal Plants Research, 7(26), 1907–1915.
Azeredo, H. (2009). Betalains: properties, sources, applications, and stability - a review. International Journal of Food Science & Technology, 44, 2365- 2376.
Badui, S. (1990). Química de los alimentos (2ª Ed.). México: Editorial Alhambra Mexicana.
Ballester, J., Gil, J., Haros, C. and Espinar, F. (2019). Effect of Incorporating White, Red or Black Quinoa Flours on Free and Bound Polyphenol Content, Antioxidant Activity and Colour of Bread. Plant Foods for Human Nutrition, 74, 185–191.
Bartoszek, M., y Polak, J. (2012). An electron paramagnetic resonance study of antioxidant properties of alcoholic beverages. Food Chemistry, 132(4), 2089-2093.
Bartolo, D.E. (2014). Influencia de la temperatura de tostado sobre el contenido de compuestos fenólicos totales y la capacidad antioxidante de la Cañihua (Chenopodium pallidicaule Aellen) variedad Cupi. Informe de tesis presentado como requerimiento para optar el título profesional de Ingeniero de Alimentos. Facultad de Ingeniería y Arquitectura, E.A.P. de Ingeniería de Alimentos. Universidad Peruana Unión, Perú.
Bernal, C. (2010). Metodología de la investigación. 3ra. Ed. Editorial Pearson.
Colombia.
Bhattacharya, S. (2012). Raw materials for extrusion of foods. Advances in Food Extrusion Technology. Contemporary Food Engineering Series, 1, 69-101.
Bojanic, A. (2011). La Quinua: Cultivo milenario para contribuir a la seguridad alimentaria mundial. FAO, Oficina Regional para América Latina y el Caribe.
Burghardt, M. (1984). Ingeniería Termodinámica. Segunda Edición. Editorial Harla. México.
Camire, M., Camire, A., & Krumbar, K. (1998). Chemical and nutritional changes in foods during extrusion. Food Science Nutrition, 29, 35-57.
Carciochi, R.,Dimitrov, K., D´Alessandro, L. (2016). Effect of malting conditions on phenolic content, Maillard reaction products formation, and antioxidant activity of quinoa sedes. Food Sci Technol. DOI 10.1007/s13197-016-2393-7.
Carini, R., Poli, G., Diazini, M., Maddix, S., Slater, T., & Cheesman, K. (1990).
Comparative evaluation of the antioxidant activity of a tocopherol, a tocopherol polyethylene glycol 1000 succinate and a tocopherol succinate in isolated hepatocytes and liver microsomal suspensions.
Biochemical Pharmacology, 39, 1597–1601.
Carunchia, M., Wang, L., and Han, J. (2015). The use of antioxidants in the preservation of snack foods. In Handbook of Antioxidants for Food Preservation. Elsevier-Woodhead Publishing Series in Food Science, Technology and Nutrition: Number 276. Amsterdam.
Castañeda, A., Pacheco, L., Páez, M., Rodríguez, J., & Galán, C. (2009).
Chemical studies of anthocyanins: A review. Food Chemistry, 113(4), 859–871.
Cavalcanti, R., Santos, D., & Meireles, M. (2011). Non-thermal stabilization mechanisms of anthocyanins in model and food systems and overview.
Food Research International, 44(2), 499-509.
Challem, J., y Block, M. (2008). Antioxidantes naturales. Madrid, Ediciones Noutilus S.L.
Cheftel, J. y Cheftel, H. (1976). Introducción a la bioquímica de los alimentos.
Volumen I. Editorial Acribia, Zaragoza.
Cheng, G., & Breen, P. (1991). Activity of phenylalanine ammonialyase (PAL) and concentrations of anthocyanins and phenolics in developing strawberry fruit. Journal of the American Society for Horticultural Science, 116, 865-869.
Cheng, P., Bozo, G., Feixas-Coutin, J., Marcone, M., Pauls, P., Tang, Y., &
Tsao, R. (2014). Free and conjugated phenolics compounds and non- darketing cranberry bean (Phaseolus vulgaris L.) seed coats. Journal of Functional Foods. Aticle in prees.
Chirinos, R., Pedreschi, R., Rogez, H., Yvan Larondelled, Y., Campos, D.
(2013). Phenolic compound contents and antioxidant activity in plants with nutritional and/or medicinal properties from the Peruvian Andean región. Industrial Crops and Products, 47, 145-152.
Clarke, R. (1989). Roasting and Grinding. Cofee Technology. Elsevier Applied Science. New York.
Clement, S. & Mabry, J. (1996). Pigment Evolution in the Caryophyllales: a Systematic Overview. Department of Botany, University of Texas at Austin.
Coultate, T.P. (2002). Food: The chemistry of its components. Fourth edition, TJ International Ltd, Padstow, Cornwall, Great Britain.
Crozier, A., Jaganath, I., & Clifford, M. (2009). Dietary Phenolics: Chemistry, bioavailabity and effects on health. Natural Products, 26, 1001-1043.
Chanvrier, H., Desbois, F., Perotti, F., Salzmann, C., Chassagne, S., Gumy, J., and Blank, I. (2013). Starch-based extruded cereals enriched in fibers: A behavior of composite solid foams. Carbohydrate Polymers, 98, 842–
853.
Dias, Mendoza y Vidaurre (2015). Cinética de la degradación de betalaínas y fenoles totales durante la cocción de la quinua (chenopodium quinoa).
Rev. Ingeniería: Ciencia, Tecnología e Innovación, 2, 2.
Dini, I., Tenore, G., & Dini, A. (2010). Antioxidant compound contents and antioxidant activity before and after cooking in sweet and bitter Chenopodium quinoa seeds LWT - Food Science and Technology, 43(1) 447-451.
Dorman, H. Peltoketo, A., Hiltunen, R., & Tikkanen, M. (2003). Characterization of the antioxidant properties of the odourised aqueous extracts from selected Lamiaceae herbs. Food Chemistry, 83, 255–262.
Escribano, J., Cabanes, J., Jiménez, M., Tremolada, M., Gómez, L., García, F., Gandía, F. (2017). Characterization of betalains, saponins and antioxidant power in differently colored quinoa (Chenopodium quinoa) varieties. Food Chemistry, 234, 285-294.
FAO (Food and Agriculture Organization of the United Nations). (1998). Under- utilized Andean food crops. Latin América and the Caribbean, Rome, Italy.
Fellows, P. (2009). Food processing technology. Principles and practice (3ª Ed.). Oxford: Woodhead Publishing Limited.
Fennema, O. (2000). Química de los alimentos (2ª Ed.). Zaragoza: Editorial Acribia S.A.
Frame, N. (1994). The technology of extrusión cooking. Salisbury: Springer Science Business Media Dordrech.
Gagandeep, J. & Gould, K. (2015). Are betalin pigments the functional homologues of anthocyanins in plants?. Environmental and Experimental Botany.
Galili S., & Hoyay R. (2014). Polyphenols in plants. Purificaction and extract preparation: Determination of polyphenols, flavonoids and antioxidant capacity in dry seeds. USA: Ed. Academic Press.
Gandía, F & García, F. (2018). Biosynthesis of betalains: yellow and violet plant pigments. Review. Trends in Plant Science. (in press).
Goldberg, B. (1984). Safety vent for pressure cookers. Patent Number:
2,436,566. United States Patent Office.
Gómez, A., Iafelice, G., Verardo, V., Marconi, E. and Caboni, M. (2014).
Influence of pearling process on phenolic and saponin content in quinoa (Chenopodium quinoa Willd). Food Chem, 157,174-178.
Gordon, W., Grove, B., Hempenius, W., Kirkwood, J., Heights, A. (1986).
Process for preparing a highly expanded oat cereal product. Patent No 4,620,981. United States Patent.
Herbach, K., Stintzing, F., and Carle, R. (2006). Betalain stability and degradation - Structural and chromatic aspects. Journal of Food Science, 71, 41-50.
Hernández, R. y Coello, S. (2008). El paradigma cuantitativo de la investigación científica. Editorial Universitaria del Ministerio de Educación Superior de la República de Cuba. La Habana.
Hernández, R.; Fernández, Baptista, M. (2014). Metodología de la investigación. Sexta edición. Ed. McGraw-Hill, Bogotá.
Hirose Y., Fujita, T., Ishii, T., Ueno, N. (2010). Antioxidative properties and flavonoid composition of Chenopodium quinoa seeds cultivated in Japan.
Food Chemistry, 119, 1300-1306.
Hong, Y., Barrett, D., & Mitchell, A. (2004). Liquid chromatography/mass spectrometry investigation of the impact of thermal processing and storage on peach procyanidins. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 52, 2366-2371.
Huang, A., Von Elbe, J., (1987). Effect of pH on the degradation and regeneration of betanine. Journal of Food Science, 52, 1689-1693.
Hussain, E., Sadiq, Z. and Zia-Ul-Haq, M. (2018). Betalains: Biomolecular Aspects. Springer International Publishing AG, part of Springer Nature.
eBook: https://doi.org/10.1007/978-3-319-95624-4
Instituto de Nutrición y Tecnología de Alimentos INTA. (2015). Antioxidantes:
Definición, clasificación y conceptos generales. CORFO CHILE:
Proyecto Innova 08CT111UM-12 Recuperado de
http://www.portalantioxidantes.com/antioxidantes/
Isogai, M., Maki, M., Ishii, T., Shigueki, K., Satoru, Y., Ito, S. (1994). Presure cooker. Patent Number: 5,229,563. United States Patent.
Khanal, R. C., Howard, L. R., & Prior, R. L. (2010). Effect of heating on the stability of grape and blueberry pomace procyanidins and total anthocyanins. Food Research International, 43, 1464-1469.
Kazemzadeh, M. (2012). Introduction to extrusion technology. Advances in Food Extrusion Technology. Contemporary Food Engineering Series, 1, 1-22.
Khan, M., Giridhar, P. (2015). Plant betalains: Chemistry and biochemistry.
Phytochemistry, 117, 267-295.
Kónica Minolta US. (2020). Entendiendo el espacio de color L a* b*.
https://sensing.konicaminolta.us/mx/blog/entendiendo-el-espacio-de- color-cie-lab/
Koziol M.J. (1991). Afrosimetric estimation of threshold saponin concentration for bitterness in quinoa (Chenopodium quinoa Willd) Journal of the Science of Food and Agricultura, 54, 211-219.
Lang, G., Lindermann, I., Ferreira, C., Hoffmann, J., Vanier, N., and Oliveira, M.
(2019). Effects of drying temperature and long-term storage conditions on black rice phenolic compounds. Food Chemistry, 287, 197-204.
Laqui-Vilca, C., Aguilar, S., Mamani, W., Montaño, J., Condezo, L. (2018).
Ultrasound-assisted optimal extraction and thermal stability of betalains from colored quinoa (Chenopodium quinoa Willd) hulls. Industrial Crops
& Products, 111, 606–614.
Letelier, M., Rodríguez, C., Sánchez, S., Aracena, P. (2011). Surfantance and antioxidant properties of an extract from Chenopodium quinoa Willd seed coats. Journal of Cereal Science, 53, 239-243.
Li, H., Deng, Z., Zhu, H., Hu, C., Liu, R., Young, J. (2012). Highly pigmented vegetables: Anthocyanin compositions and their role in antioxidant activities. Food Research International, 46(1), 250-259.
Luck, O. (1994). Investigación fitoquímica. Perú: Fondo Editorial Pontificia Universidad Católica del Perú.
Macavilca, E., Condezo, L. (2020). Assessment of total antioxidant capacity of altiplano colored quinoa (Chenopodium quinoa willd) by visible and near- infrared diffuse reflectance spectroscopy and chemometrics. Food Science and technology 134, 110-138.
Mache, J. (2015). Efecto de la velocidad de giro, el nivel de abertura del escarificador, velocidad de agitación y tiempo de lavado en el contenido final de saponina y proteínas de quinua (Chenopodium quinoa Willd).
(Tesis de pre grado). Universidad Nacional del Centro del Perú.
Huancayo.
Maillard, M ., Soum, M., Boivin, P. and Berset, C. (1996). Antioxidant Activity of Barley and Malt: Relationship with Phenolic Content. Lebensm.-Wiss. u.- Technol, 29, 238-244.
Mayta, J. (2009). Estudio y evaluación del contenido de plomo total en alimentos procesados en expansores tipo batch tradicionales y prototipo rediseñado. Maestría en Agricultura Andina Especialidad en Postcosecha y Marketing. Escuela de Post Grado, Universidad Nacional del Altiplano.
Meenakshi, P. (2007). Critical Steps in Developing Functional Foods. En:
Effects of Food Processing on Bioactive Compounds. Gene Tech Books, New Delhi.
Méndez, C. (1995). Metodología: Guía para elaborar diseños de investigación en ciencias económicas, contables y administrativas. Ed. Mcgraw-Hill, Santafé de Bogotá
Miranda, M., Vega, A., Lopez, J., Parada, P., Sanders, M., Aranda, M., Uribe, E., Di Scala, K. (2010). Impact of air-drying temperature on nutritional properties, total phenolic content and antioxidant capacity of quinoa seeds (Chenopodium quinoa Willd.). Industrial Crops and Products, 32, 258-263.
Miranda, M., Vega, A., Uribe, E., López, J., Martínez, E., Rodríguez, M., Quispe, I., and Di Scala, K. (2011). Physico-chemical analysis, antioxidant capacity and vitamins of six ecotypes of chilean quinoa (Chenopodium quinoa Willd). Procedia Food Science, 1, 1439-1446.
Murray, J. (1984). Coffee roaster: Patent Number: 4,484,064. United States Patent.
Nagatsu, T., & Sawada, M. (2009). L-dopa therapy for Parkinson’s disease:
past, present, and future. Parkinsonism Relat. Disord, 15, S3-S8.
Nickel, J., Spanier, L., Torma, F., Arocha, M., and Helbig, E. (2016). Effect of different types of processing on the total phenolic compound content, antioxidant capacity and saponin content of Chenopodium quinoa Willd
grains. Food Chemistry, doi:
http://dx.doi.org/10.1016/j.foodchem.2016.04.031.
Nowak, V., Du, J. and Charrondiere, R. (2016). Assessment of the nutritional composition of quinoa (Chenopodium quinoa Willd.). Food Chemistry 193, 47–54.
Ohtsubo, K., Susuki, K., Yasui, Y., & Kasuni, T. (2005). Bio functional components in the processed pre germinated Brown rice by a twin-screw extruder. Journal Food Composition Anal, 18, 303-316.
Oliveira, L., Carvallo, M., & Melo, L. (2014). Health promoting and sensory propertiesof phenolic compound in food. Revista Ceres, 61, 764-779.
Oroian M. (2015). Antioxidants: Characterization, natural sources, extraction and analysis. Food Research International, 74, 10-36.
Osorio, C., Hurtado, N., Dawid, C., Hofmann, T., Heredia-Mira, F. J., & Morales, A. L. (2012). Chemical characterisation of anthocyanins in tamarillo (Solanum betaceum Cav.) and Andes berry (Rubus glaucus Benth.) fruits. Food Chemistry, 132(4), 1915-1921.
Ozdal, T., Capanoglu, E., & Altay, F. (2013). A review on protein–phenolic interactions and associated changes. Food Research International, 51(2), 954–970.
Paggi; V. (2003). Adecuación de una máquina expansora de cereales tipo cañón para prácticas de laboratorio en la Universidad Tecnológica Equinoccial. Estudio de caso: arroz (Oryzae sativa l.), maíz (Zea mays l.), quinua (Chenopodium quinoa Willd) y trigo (Triticum vulgare l.). Tesis Escuela de Ingeniería en Industrialización de Alimentos. Facultad de Ciencias de la Ingeniería. Universidad Tecnológica Equinoccial. Quito.
Pasko, P., Barton, H., Zagrodzki, P., Gorinstein, S., Fołta, M., and Zachwieja, Z. (2009). Anthocyanins, total polyphenols and antioxidant activity in amaranth and quinoa seeds and sprouts during their growth. Food Chemistry, 115, 994-998.
Pearsall, D. (1992). The origins of plant cultivations in South América. In The origins of agriculture: an international perspective. Eds. C. Wealwy Cowan & P.J. Watson. Smithsonian Institution Press, 1, 173-206.
Pereira, E., Encina, Ch., Barros, L., Gonzales, U., Cadavez, V., Ferreira, I.
(2019). Chemical and nutritional characterization of Chenopodium quinoa Willd (quinoa) grains: a good alternative to nutritious food. Food Chemistry, 280, 110-114.