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UNIVERSIDAD MAYOR DE SAN SIMÓN

FACULTAD DE MEDICINA “AURELIO MELEAN”

PROGRAMA DE LICENCIATURA EN NUTRICIÓN Y DIETÉTICA

LAS BIOMOLECULAS DE LA VIDA

LIPIDOS

ASIGNATURA

: Bioquímica

DOCENTE: Dra. Miriam Rosario Arnez Camacho

INTEGRANTES:

Coca Callejas Maricel

Flores Illanes Tahiz Shahuri

Macias Fernández Natalia

Torrico Aguilar Maria Selene

Villarroel Sarmiento Carlos

COCHABAMBA-BOLIVIA

OCTUBRE 2013

LAS BIOMOLECULAS DE LA VIDA

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1. DEFINICIÓN

Los lípidos son   biomoléculas   orgánicas   formadas   básicamente   por carbono e hidrógeno y generalmente   también oxígeno;   pero   en   porcentajes   mucho   más   bajos.   Además   pueden contener   también   fósforonitrógeno y azufre,   como   se   observa   en   las   siguientes   estructuras (Figura 1).

2. CARACTERÍSTICAS

Entre ellas se indican que son:

 Insolubles en agua

 Solubles en disolventes orgánicos, como éter, cloroformo, benceno, etc.  Hidrofobicidad.

La   baja   solubilidad   de   los   lípidos   se   debe   a   que   su estructura química es   fundamentalmente hidrocarbonada (alifática, alicíclica o aromática), con gran cantidad de enlaces C-H y C-C) en un 100% covalente y su momento dipolar es mínimo. 

El  agua,  al  ser  una  molécula   muy   polar,  con  gran  facilidad  para  formar puentes de hidrógeno, no es capaz de interaccionar con estas moléculas. En   presencia   de   moléculas   lipídicas,   el agua adopta   en torno a   ellas   una estructura muy ordenada que maximiza las interacciones entre las propias moléculas de agua, forzando a la molécula hidrofóbica al interior de una estructura en forma de jaula, que también reduce la movilidad del lípido como se puede notar en Figura 2. Todo ello supone una configuración de baja   entropía,   que   resulta   energéticamente   desfavorable.   Esta disminución de entropía es mínima si las moléculas lipídicas se agregan entre   sí,   e   interaccionan   mediante   fuerzas   de   corto   alcance,   como   las fuerzas   de   Van   der   Waals.   Este   fenómeno   recibe   el   nombre   de   efecto hidrofóbico.

3. FUNCIONES DE LOS LÍPIDOS

Función de reserva. Son la principal reserva energética del organismo. Un gramo de grasa produce  9,4  kilocalorías   en   las   reacciones   metabólicas   de   oxidación,   mientras que proteínas y glúcidos sólo producen 4,1 kilocaloría/gr.

Función estructural. Forman las bicapas lipídicas de las membranas. Recubren órganos y le dan consistencia, o protegen mecánicamente como el tejido adiposo de pies y manos.

Figura 1.

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Función biocatalizadora.   En   este   papel   los   lípidos   favorecen   o   facilitan   las   reacciones químicas que se producen en los seres vivos. Cumplen esta función las vitaminas lipídicas, las hormonas esteroideas y las prostaglandinas.

Función transportadora. El transporte de lípidos desde el intestino hasta su lugar de destino se  realiza   mediante   su   emulsión  gracias  a   los   ácidos   biliares   y   a  los  proteo   lípidos.   Y  el transporte de proteínas liposolubles.

Sabor y textura de los alimentos.   Los   lípidos   resultan   indispensables   para   lograr preparaciones de cocción con agradable sabor. Por otra parte, las grasas retardan el vaciado gástrico, por lo que aumentan la sensación de saciedad después de la ingesta.

4. CLASIFICACIÓN DE LOS LÍPIDOS

a. LÍPIDOS SAPONIFICABLES

Los lípidos saponificables agrupan a los derivados por esterificación u otras modificaciones de ácidos grasos, y se sintetizan en los organismos a partir de la aposición sucesiva de unidades de dos átomos de carbono. En este grupo se incluyen:

ÁCIDOS GRASOS Y SUS DERIVADOS

Los   ácidos   grasos   son   ácidos   monocarboxílicos   de   cadena   larga,   como   se   indica   a continuación. Por lo general, contienen un número par de átomos de carbono, normalmente entre 12 y 24. Ello se debe a que su síntesis biológica tiene lugar mediante la aposición sucesiva de unidades de dos átomos de carbono. Sin embargo también existen ácidos grasos con un número impar de átomos de carbono, que probablemente derivan de la metilación de un ácido graso de cadena par.

Las propiedades químicas de los ácidos grasos derivan por una parte, de la presencia de un grupo   carboxilo,   y   por   otra   parte   de   la   existencia   de   una   cadena   hidrocarbonada.   La coexistencia de ambos componentes en la misma molécula, convierte a los ácidos grasos en moléculas débilmente anfipáticas.

El grupo -COOH es capaz de formar puentes de hidrógeno, de forma que los puntos de fusión de los ácidos grasos son mayores que los de los hidrocarburos correspondientes.

Según   la   naturaleza   de   la   cadena   hidrocarbonada,   distinguimos   tres   grandes   grupos   de ácidos grasos:

ÁCIDOS GRASOS SATURADOS

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Desde   el punto   de   vista   químico,   son   muy   poco   reactivos.   Por  lo   general,   contienen   un número par de átomos de carbono.

Los ácidos grasos saturados más abundantes son el palmítico (hexadecanoico) y el esteárico (octadecanoico). Los ácidos grasos saturados de menos de 10 átomos de C son líquidos a temperatura   ambiente   y   parcialmente   solubles   en   agua.   A   partir   de   12   C,   son   sólidos   y prácticamente insolubles en agua. En estado sólido, los ácidos grasos saturados adoptan la conformación alternada todo-anti, que da un máximo de simetría al cristal, por lo que los puntos de fusión son elevados. El punto de fusión aumenta con la longitud de la cadena.

Los ácidos

grasos de cadena impar probablemente derivan de la metilación de un ácido graso de cadena par. En ellos, la simetría del cristal no es tan perfecta, y los puntos de fusión son menores. Ejemplos   son   el   ácido   propiónico   (C3:0),   valeriánico   (pentanoico,   o   C5:0)   y   pelargónico (nonanoico, o C9:0).

Los lípidos ricos en ácidos grasos saturados constituyen las grasas. Conviene en este punto hacer una distinción entre los términos lípidos, grasas y aceites. Grasas son aquellos lípidos que son sólidos a temperatura ambiente, mientras que aceites son aquellos lípidos que son líquidos a temperatura ambiente. Tanto los aceites como las grasas son lípidos.

ÁCIDOS GRASOS INSATURADOS

Con mucha frecuencia, aparecen instauraciones en los ácidos grasos, mayoritariamente en forma de dobles enlaces, aunque se han encontrado algunos con triples enlaces. Cuando hay varios dobles enlaces en la misma cadena, estos no aparecen conjugados (alternados), sino

Acido palmítico (C16:0) 

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cada tres átomos de carbono. En el siguiente cuadro (1) se muestra algunos ejemplos de ácidos grasos insaturados y poli saturados.

Ácido Oleico (C 18:1;19)       

Familia

ω-9

Ácido Linoléico (C 18:2; 9,12)

ω-6

      Ácido Linolénico (C 18:3,9,12,15)

ω-3

Acido Araquidónico (C 20:4; 5,8,11,14)

ω-6

Cuadro 1. Estructura química de acido grasos. En esta tabla se observa la estructura química de ácidos grasos saturados como el oleico y ácidos grasos polinsaturados como el linoléico, linolénico y araquidónico, indicándose además el nombre de la familia omega al que pertenecen. Siendo los ácidos poliinsaturados escenciales para el ser humano.

EICOSANOIDES

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Como la diversidad de los eicosanoides es grande, 

estos compuestos se clasifican en función de las enzimas que intervienen en su síntesis:

 Si   son   productos   de   la   ruta   de   la   ciclooxigenasa: prostaglandinas y tromboxanos

 Si   son   productos   de   la   ruta   de   la   lipoxigenasa: leucotrienos      

       Tienen   una   amplia   gama   de   actividades   biológicas:   intervienen   en   procesos   alérgicos,

inflamatorios, provocan la contracción del músculo liso (en la menstruación y en el parto). Son el prototipo de mediadores locales, liberados in situ ante diversos estímulos. Aunque son compuestos que funcionan como señales químicas, difieren de las hormonas en dos aspectos:

 Se sintetizan prácticamente en todos los tejidos, no en una glándula endocrina. 

 Químicamente son muy inestables y, por tanto, sólo actúan a nivel local.  PROSTAGLANDINAS

Las prostaglandinas (PG) se consideran derivados de un hipotético ácido prostanoico (no existe como tal en la naturaleza), de 20 átomos de C, con un anillo pentagonal entre los carbonos 8 y 12.

Existen varias familias de PG, que se denominan con una letra adicional (PGA, PGB, PGC, PGD,   PGE,   PGF,   etc.),   en   función   de   los   sustituyentes   del   anillo   ciclo   pentano   de   su estructura. A menudo, la letra mayúscula va seguida de un subíndice que indica el número de dobles enlaces presentes en la molécula, sin incluir el anillo.

Se conocen unas 20 PG, cuya función es la de regular la acción hormonal. Las PGE y PGF provocan la contracción de la musculatura lisa, en especial en el aparato reproductivo, de ahí que sean utilizadas para inducir el aborto.

      Prostaglandina E1

       Prostaglandina E2

La PGI2 (también llamada prostaciclina) es un vasodilatador que actúa principalmente sobre las arterias coronarias y que impide la agregación plaquetaria. Las PGG y PGH son mediadores de la reacción inflamatoria. Compuestos como el ácido acetilsalicílico (aspirina) y los glucocorticoides (cortisol, dexametasona) inhiben la síntesis de estas PG, y de ahí sus efectos antiinflamatorios.

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LEUCOTRIENOS

Son   derivados   eicosanoides   que   deben   su   nombre   a   la   presencia   de   tres   dobles   enlaces conjugados. Se sintetizan a partir de la ruta de la lipoxigenasa, que es especialmente activa en los leucocitos.

Son   mediadores   locales   que   intervienen   en   reacciones   de   tipo   alérgico,   asmático   o   inflamatorio. Aparecen frecuentemente combinados con el tripéptido glutatión, como en el caso del leucotrieno C4 (LTC4).

CÉRIDOS

También llamados ceras, se forman por la unión de un ácido graso de cadena larga (de 14 a 36 átomos de carbono) con   un   mono   alcohol,   también   de cadena   larga   (de   16   a   30   átomos   de carbono), mediante un enlace éster.  Sólidos   a   temperatura   ambiente, poseen sus dos extremos hidrófobos, lo que   determina   su   función impermeabilizar y proteger. 

Los céridos, sirve de revestimiento de las hojas, frutos, flores o talos jóvenes,

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Entre las más conocidas se encuentran la de abeja (esteres del ácido palmítico con alcoholes de cadena larga), la lanolina (grasa de lana de oveja), el aceite de espermaceti (producido por el cachalote) y la cera de carnauba (extraído de una palmera de Brasil). 

En general en los animales se encuentran en la piel, recubriendo el pelo, plumas y exoesqueleto de insectos. En los vegetales forman películas que recubren hojas, flores y frutos. 

Las ceras se utilizan en cremas y lociones, para lustrar muebles y automóviles, en grasas para zapatos y velas y cosméticos. 

FOSFOLIPIDOS

Los fosfolípidos en general son aquellos lípidos que contienen ácido fosfórico. En el campo de la ciencia y la tecnología de los alimentos, la expresión suele limitarse a los derivados del ácido glicerofosfórico, que están formados por una molécula de glicerol esterificada en las posiciones 1 y 2 por dos ácidos grasos, con la posición 3 esterificada por un ácido fosfórico que lleva unidas además otras estructuras, dependiendo del fosfolípido de que se trate. De forma genérica se denominan   "lecitinas",   aunque   se   considera   que   la   lecitina   propiamente   dicha   es   la fosfatidilcolina.

Según   la   estructura   unida   al   ácido   fosfórico,   podremos   hablar   de   fosfatidiletanolamina, fosfatidilcolina, fosfatidilserina,y fosfatidilinositol, que son los fosfolípidos más frecuentes en los alimentos. 

Figura 4. Estructura de la molécula de fosfoglicerido

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Los fosfolípidos son los principales constituyentes lipídicos de las membranas biológicas, donde forman  estructuras en bicapa, con las zonas no polares de los constituyentes de cada capa orientados hacia el  interior. Consecuentemente, los fosfolípidos se van a encontrar presentes en la mayoría de los alimentos complejos, en los que exista material celular. Los fosfolípidos son también capaces de producir 

estructuras artificiales del tipo de bicapa (liposomas). 

Su interés en el campo de los alimentos radica en que al ser lípidos polares se orientan en las superficies  de contacto entre el agua y los materiales hidrófobos, y reducen la tensión superficial. Es decir, reducen  la energía necesaria para crear superficie de contacto y la tendencia minimizarla, facilitando la 

producción de emulsiones y estabilizándolas. 

Los fosfolípidos son un componente importante de los lípidos de la yema de huevo, lo que explica su  buena capacidad como emulsionante. También se encuentra en la membrana del glóbulo graso de la  leche (y consecuentemente, en la mantequilla). Los fosfolípidos utilizados como emulsionantes en la  industria (lecitinas) suelen proceder del refinado del aceite de soja. 

Los fosfolípidos también pueden reducir la energía de superficie en el contacto de interfaces con aire. En  una interface aire-agua, los fosfolípidos se sitúan con la región hidrofóbica hacia el aire, facilitando la  formación de espumas. Aunque la gran mayoría de espumas alimentarias se obtienen con proteínas, esta propiedad de los fosfolípidos se ha utilizado en "cocina creativa" para la formación de espumas muy  ligeras, los llamados "aires". 

En las interfaces aceite-aire, los fosfolípidos se orientan con la zona hidrófila hacia el aire, facilitando la  formación de espumas. Esto resulta extremadamente perjudicial, ya que aumenta muchísimo la  superficie de contacto entre el oxígeno del aire y la grasa, facilitando las reacciones de oxidación.  En el caso de los aceites que contienen proporciones significativas de fosfolípidos tras su extracción,  como el aceite de soja, éstos se eliminan en el refinado, en el proceso conocido como "desgomado"

GLUCOLÍPIDO

O   glucoesfingolípidos   son  esfingolípidos  compuestos   por   una  ceramida  (esfingosina  +  ácido graso) y un glúcido de cadena corta; carecen de grupo fosfato. Los glucolípidos forman parte de la bicapa lipídica de la membrana celular; la parte glucídica de la molécula está orientada hacia el exterior   de   la   membrana   plasmática   y  es   un  componente  fundamental   del  glicocálix,   donde actúa en el reconocimiento celular y como receptor antigénico. 

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Estructura química de un glucolipido

CEREBRÓSIDOS

Los cerebrósidos tienen un azúcar unido mediante enlace β-glucosídico al grupo hidroxilo de la ceramida; los que tienen galactosa se denominan  galactocerebrósidos  (como la frenosina) y se encuentran   de   manera   característica   en   las  membranas   plasmáticas  de   células   del  tejido nervioso; los que contienen glucosa (glucocerebrósidos) se hallan en las membranas plasmáticas de células de tejidos no nerviosos. Los sulfátidos poseen una galactosa esterificada con sulfato en el carbono 3.    β-D-Galactosilceramida, un  galactocerebrósido;  R  es la cadena  alquílica  del ácido graso.

GLOBÓSIDOS

Los globósidos son glucoesfingolípidos con oligosacáridos neutros unidos a la ceramida.

GANGLIÓSIDOS

Son   los   esfingolípidos   más   complejos   en   virtud   de   contener   cabezas   polares   muy   grandes formadas por unidades de  oligosacáridos  cargadas negativamente  ya que poseen una o más unidades de ácido N-acetilneuramínico o ácido siálico que tiene una carga negativa a pH 7. Los gangliósidos se diferencian de los anteriores por poseer este ácido. Están concentrados en gran

Estructura química de β-D-Galactosilceramida

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cantidad   en   las   células   ganglionares   del   sistema   nervioso   central,   especialmente   en   las terminaciones nerviosas. Los gangliósidos constituyen el 6% de los lípidos de membrana de la materia gris del cerebro humano y se hallan en menor cantidad en las membranas de la mayoría de los tejidos animales no nerviosos. Se presentan en la zona externa de la membrana y sirven para reconocer las células, por lo tanto se les considera receptores de membrana. Su nombre se debe  a  que  se  aislaron  por  primera  vez de  la   membrana   de   las  mitocondrias   de  las  células ganglionares.

b. LÍPIDOS NO SAPONIFICABLES

Los   lípidos   insaponificables   son   derivados   por   aposición   varias   unidades   isoprénicas,   y   se sintetizan a partir de una unidad básica de 5 átomos de carbono: el isoprenol.

TERPENOS

Se denomina así a un grupo de compuestos isoprenoides, pertenecientes al grupo de los lípidos prenoles  de   Fahy   y   col.   Se   biosintetizan   por   conjugación   de   moléculas   de  isopreno,   y   su estructura, que puede ser lineal o cíclica, así lo refleja.

Los terpenos se clasifican según el número de  dímeros de isopreno  que forman su estructura, considerando que la unidad terpénica consta de dos isoprenos. Se habla así de:

Hemiterpenos (Media Unidad Terpénica, C5 )

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Mono terpenos (Una, C10)

Sesquiterpenos (Una Y Media, C15)

Diterpenos (Dos, C20)

Sesterterpenos (Dos Y Media, C25)

Triterpenos (tres, C30)

Tetraterpenos (cuatro, C40)

y si hay más de cuatro unidades terpénicas (8 isoprenos) se habla de politerpenos.  En ocasiones, los terpenos se pueden denominar también en función del número de unidades de 

isopreno que constituyen la molécula; en este caso se hablará de monoprenoides (hemiterpenos),  diprenoides (monoterpenos), triprenoides (sesquiterpenos), tetraprenoides (diterpenos), etc. 

ESTEROIDES

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ESTEROLES 

De todos ellos, el colesterol es el de mayor interés biológico (Cuadro 2). Forma parte de las  membranas biológicas a las que confiere resistencia, por otra parte es el precursor de casi todos  los demás esteroides. 

Otros esteroles constituyen el grupo de la vitamina D o calciferol, imprescindible en la absorción  intestinal del calcio y su metabolización. 

 

ÁCIDOS BILIARES

Derivan de los ácidos cólico, desoxicólico y quenodesoxicólico, cuyas sales emulsionan las grasas  por lo que favorecen su digestión y absorción intestinal.

HORMONAS ESTEROIDEAS

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Incluyen las de la corteza suprarrenal, que estimulan la síntesis del glucógeno y la degradación de grasas y proteínas (cortisol) y las que regulan la excreción de agua y sales minerales por las nefronas del riñón (aldosterona). También son de la misma naturaleza las hormonas sexuales masculinas   y   femeninas   (andrógenos   como   la   testosterona,   estrógenos   y   progesterona)   que controla la maduración sexual, comportamiento y capacidad reproductora. 

5. DIGESTION

El proceso de digestión de los lípidos comienza en la boca, en primera instancia, a través de un proceso mecánico: la masticación. Las glándulas de von ebner, alojadas en la parte posterior de la lengua, por debajo de las papilas, segregan una lipasa conocida como lipasa lingual, que tiene un pH optimo de acción de 4,5. La lipasa lingual actúa como todas las lipasas hidrolizando los ácidos grasos en las posiciones 1 y 3 de los triacilgliceridos, teniendo especifidad sobre los ácidos grasos de cadena corta y media. Su actividad se da en el estomago, donde continua siendo activa hasta un pH de 2. La liberación de algunos ácidos grasos en el estomago sirve para estabilizar la superficie   de   emulsión   de   los   triglicéridos   y   ayuda   a   la   liberación   de   colecistoquinina-pancreocimina (CCk-PZ) desde la mucosa duodenal. Alrededor de un 10 a 20% del total ingerido de ácidos grasos puede encontrarse como ácidos grasos libres en el estomago veinte minutos después de la ingestión de grasas.la mayor parte de la hidrólisis de los triglicéridos se produce en el duodeno, donde se mezclan con las secreciones pancreáticas, especialmente bicarbonato y agua, que aumentan el pH duodenal a 6 o 6,5. La principal acción hidrolitica es llevada a cabo por la lipasa pancreática, que digiere por lo menos el 90% de las grasas consumidas, tiene un pH optimo de acción que varía entre 7 y 9 y se secreta en forma activa. Hidroliza los enlaces esteres externos en las posiciones 1 y 3 dando como producto final 2 monogliceridos, digliceridos y ácidos grasos libres.

El proceso de digestión de los lípidos requiere además sustancias de características antipáticas: las sales biliares. Las mismas son necesarias para la actividad óptima de la lipasa y para producir la solubilizacion de los productos lipidicos a través de la formación de micelas. Las sales biliares están formadas por ácidos biliares que se combinan con glicina o taurina. La molécula de sal biliar, formada por partes hidrofobica e hidrofilica, interactúa con los lípidos en un ambiente acuoso y los solubiliza, formando micelas. La micela es una estructura molecular que se codifica a gran velocidad. Alrededor de ella se encuentran los di y triglicéridos, siendo la afinidad por el interior de la micela proporcional a la insolubilidad. Este proceso de formación de micelas facilita la digestión química de los lípidos al proporcionar una mayor superficie de contacto entre las moléculas  de  grasa.   Cada   día  el  hígado  sintetiza  aproximadamente   600  a  800  mg  de  ácidos biliares,   cantidad   igual   a   la   que   se   pierde   en   las   deposiciones.   Mediante   la   circulación enterohepatica, las sales biliares  se absorben activamente  en el íleon terminal  y retornan al hígado por el sistema venoso portal. Con el fin de satisfacer las necesidades de absorción de lípidos, la reserva de ácidos biliares puede ser reciclada varias veces en el curso de una sola comida.   La   mínima   cantidad   de   sales   biliares   necesarias   para   la   formación   de   micelas   se denomina concentración micelar crítica. Otras enzimas que completan la digestión de los lípidos son la colesterolesterasa, que actúa sobre los esteres del colesterol hidrolizando las uniones con los ácidos grasos, dando colesterol libre y un acido graso. En forma similar hidroliza los esteres de   las   vitaminas   liposolubles.   Las   fosfolipasas   son   producidas   por   el   páncreas   como profosfolipasas y son activadas por la tripsina. 

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DEGRADACIÓN DE LOS TRIGLICÉRIDOS. Se produce fundamentalmente en el tejido adiposo, y comienza con la acción de la lipasa hormona sensible (LHS). Esta hormona produce la hidrolisis de los triglicéridos dando como productos ácidos grasos libres y glicerol. El glicerol no tiene actividad en el tejido adiposo, por lo que pasa a la circulación, metabolizándose en el hígado, donde puede oxidarse para producir energía. Los ácidos grasos libres son transportados en el plasma por la albúmina. La LHS se encuentra inicialmente inactiva, y debe ser activada por una proteína quinasa, la cual a su vez es estimulada por el AMP cíclico, como los glucocorticoides, adrenalina, somatotrofina y glucagón, favorecen la degradación de los triglicéridos.

SÍNTESIS DE TRIGLICÉRIDOS. Los triglicéridos se sintetizan a partir del glicerol, que debe ser activado a glicerol P. en el hígado existe una gliceroquinasa que activa directamente al glicerol P. en el tejido no se encuentra esta quinasa, por lo que el glicerol que se utiliza para la síntesis de los triglicéridos proviene de la dihidroxiacetona P, producto intermedio de la glucolisis. El origen de   los   ácidos   grasos   también   es   doble,   por   un   lado   provienen   de   la   degradación     de   los quilomicrones y las VLDL, o bien pueden obtenerse de la síntesis endógena a partir del acetil-CoA. Para la síntesis de los triglicéridos los ácidos grasos deben ser activados a acil-CoA.

SÍNTESIS DE ÁCIDOS GRASOS. La síntesis endógena de ácidos grasos se realiza en el citoplasma a partir del acetil -CoA.

El acetil-CoA que proviene del metabolismo de los carbohidratos, los aminoácidos o los ácidos grasos se encuentra en la mitocondria, y debe salir al citoplasma; como la mitocondria no es permeable  a su  pasaje, forma  ácido  cítrico  junto  con  el  oxalecetato.  El ácido  cítrico  pasa  al citoplasma y origina nuevamente acetil-CoA. Este acetil-CoA se une al malonil-CoA, primer paso de   la   síntesis   que   está   regulada   por   un   sistema   multienzimático   denominado   “ácido   graso sintetasa”.   El  proceso   de   síntesis   produce   principalmente   palmitato   (C16:0);   posteriormente, mediante   sistemas   de   elongación,   se   adicionan   carbonos   para   obtener   ácidos   de   18   y   20 carbonos.

DEGRADACIÓN DE LOS ÁCIDOS GRASOS O BETA-OXIDACIÓN. Cerca del 50% de las necesidades energéticas   del   hígado,  riñón,   musculo   cardiaco   y  esquelético   en  reposo   es   aportado   por  la oxidación de las grasas. Este porcentaje aumenta a casi el 100% en situaciones de ayuno. A diferencia   de   estos   tejidos,   las   células   cerebrales   no   utilizan   los   lípidos   y   dependen   casi exclusivamente   de   la   glucosa.   Los   ácidos   para   degradarse   deben   ser   activados,  para   lo   cual requieren   energía.   En   presencia  de   ATP   y  CoA,  el  ácido   graso  se   activa   a  acil-CoA.   Una   vez activado debe entrar en la mitocondria, proceso que es facilitado por la carnitina, compuesto derivado   del   aminoácido   lisina.   Dentro   de   la   mitocondria,   se   oxida   liberando   sucesivamente acetil-CoA y un ácido graso en dos carbonos menos, que reanuda el ciclo. El acetil-CoA se oxida en   el   ciclo   de   Krebs.   Este   proceso   se   denomina   beta-oxidación,   debido   a   que   la   misma   se produce en el carbono beta, el segundo a partir del grupo carboxilo terminal del ácido graso. METABOLISMO DE LOS CUERPOS CETÓGENOS.   Los   cuerpos   cetógenos   (aceto-acetato,   beta-hidroxibutirato   y   acetona)   se   forman   en   el   hígado   y   se   oxidan   en   los   tejidos   periféricos, principalmente el musculo cardiaco, esquelético y riñón. La cetogénesis es un proceso fisiológico, por lo que se considera normal la presencia de cuerpos cetógenos en sangre (hasta 1mg%) y en orina (hasta 20mg en diuresis de 24 horas). La beta-oxidación de los ácidos grasos en el hígado, si es completa finaliza con la producción de acetil-CoA, origina acetoacetato, parte del mismo se convierte en acido beta-hidroxibutirico y en acetona.

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déficit de glucosa en los tejidos. La glucosa provee glicerol P, que en el tejido adiposo es utilizado para la síntesis de triglicéridos y en el hígado provee piruvato que se transforma en oxalecetato permitiendo consumir el acetil-CoA. La falta de glucosa en el tejido adiposo impide la síntesis de triglicéridos, por lo que los ácidos grasos llegan al hígado, donde se oxidan acumulándose acetil-CoA. La falta de glucosa en el hígado origina un déficit de piruvato y oxalacetato, situación que impide la oxidación del acetil-CoA   que se produce en exceso. Esta producción aumentada de acetil-CoA permite la formación de aceto-acetil-CoA (dos moléculas de acetil-CoA). Sobre este compuesto se une otra molécula de acetil-CoA, formándose el beta-hidroximiel glutaril-CoA. Esta sustancia   es   intermediaria   en   la  cetogénesis   y  la   síntesis   de   colesterol,   y   a  partir  de   ella   se sintetizan el beta-hidroxibutirato y la acetona.

CETÓLISIS.  Se lleva a cabo en el musculo cardiaco, esquelético y riñón. El acetoacetato debe activarse a acetato acetil-CoA, el cual se tioliza dando dos moléculas de acetil-CoA, que se oxidan en el ciclo de Krebs. Cuando la producción es exagerada y se supera la capacidad de oxidación por los tejidos periféricos, los cuerpos cetónicos se acumulan en sangre y se eliminan en mayor cantidad por orina o por vía respiratoria. Esta situación   se denomina cetosis, que lleva a una disminución del pH, pudiendo desarrollar como consecuencia una alteración del equilibrio acido-base del medio interno a través de una acidosis metabólica.

COLESTEROL. La mayor `parte del colesterol corporal se sintetiza endógenamente, y una menor cantidad   es   aportada   por   la   alimentación,   en   promedio   300   a   500   mg/día.   Los   principales órganos de síntesis son el hígado, intestino, piel y glándulas suprarrenales. 

La   síntesis   e   realiza   a   partir   del   acetil-CoA   en   varias   etapas:   tras   varios   pasos   se   forman mevalonato, el cual origina unidades isoprenoides, de la condensación de seis de las mismas se forma el escualeno, que se transforma en lanosterol y luego en colesterol. La enzima clave de la síntesis en la BOH metilglutaril-CoA reductasa, que es inhibida por el colesterol sintetizado a modo   de   autorregulación   endógena.  La   insulina  y  la  hormona  tiroidea  estimulan  su  síntesis, mientras que el glucagón, las catecolaminas y los glucocorticoides la inhiben.

7. ABSORCION

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El  grado   de  saturación   afecta   la   absorción,  de   manera   que   los   ácidos   grasos   insaturados   se absorben mejor que los saturados.

8. TRANSPORTE DE LÍPIDOS

Debido a la insolubilidad de los lípidos en el   medio   acuoso   de   la   sangre,   las proteínas   proporcionan   el   mecanismo para su transporte mediante la formación de   lipoproteínas.   Las   mismas   están conformadas   por   una   fracción   proteica denominada   apoproteína   y   una   fracción lipídica   con   contenidos   variables   de colesterol, triglicéridos y fosfolípidos. Las apoproteínas   tienen   tres   funciones principales:   solubilizar   a   los   compuestos lipídicos   de   las   lipoproteínas,   regular   la acción   de   estos   lípidos   con   las   enzimas relacionadas   con   el   metabolismo   de   las lipoproteínas y unirse a los receptores de las   membranas   celulares   determinando los sitios y grados de degradación de las lipoproteínas.   Las   principales apoproteinas son la AI, AII, B48, B100, CII y E.

Existen 5 clases de lipoproteínas: 

- quilomicrones,  VLDL  (very low-density lipoproteins: lipoproteínas de muy baja densidad),  IDL (intermédiate-density lipoproteins: lipoproteínas de baja densidad)y  HDL  (lipoproteínas de alta densidad.

Los quilomicrones son las lipoproteínas de mayor tamaño, están constituidas especialmente por triglicéridos de origen exógeno. Los quilomicrones nacientes contienen apolipoproteinas. Nacen en las vellosidades intestinales y son transportados por la circulación hacia el conducto torácico. En la circulación adquieren apolipoproteínas C y E que provienen de las HDL. La apoproteina CII es el cofactor necesario para la actividad de la lipoproteína lipasa, enzima que se encuentra en los capilares del endotelio y que hidroliza los triglicéridos de los quilomicrones. La apoproteína E es reconocida por un receptor  hepático permitiendo la internalización  del  quilomicrón  en  el hígado, donde sus remanentes lipídicos y proteicos son catalizados. 

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del 70 % de la LDL es removida del plasma por este mecanismo, principalmente por el hígado. El resto es modificado en el plasma y removido por otros receptores que se encuentran en los macrófagos y células endoteliales. La cantidad de LDL en plasma esta en directa relación con el numero de receptores de LDL, el que a su vez esta regulado por las necesidades de colesterol. Cuando   esta   necesidades   son   bajas,   las   células   sintetizan   pocos   receptores,   reduciéndola remoción de las LDL. A su vez existen otros factores que afectan el número y la actividad de estos receptores de LDL, el principal es un determinante genético para la síntesis de los mismos. Entre los factores externos, el consumo elevado de grasas saturadas y colesterol disminuye la actividad de estos receptores. Una cantidad elevada de LDL en plasma condiciona  un mayor riesgo de aterogénesis

La HDL son las lipoproteínas encargadas del transporte reverso del colesterol, mecanismo por el cual el colesterol de los tejidos periféricos puede ser excretado. Las HDL naciente se sintetizan en el hígado e intestino y recogen el colesterol libre de las células. Este colesterol es esterificado por la enzima LCAT que utiliza a la lipoproteína A-I como cofactor. Las HDL maduras se forman con la adicción de los foslípidos y triglicéridos derivados del catabolismo de los quilomicrones y las VLDL a su vez el colesterol esterificado de las HDL puede ser transferido a las VLDL y LDL. En el hígado las HDL son degradas totalmente.

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Tabla 3. Contenido de lípidos en alimentos

Tabla 4.

Contenido Porcentual En Ácidos Grasos Sobre El Total De Grasas CONTENIDO EN ALIMENTOS

(g/100 g DE ALIMENTO)

ALIMENTOS

>90

Aceites

Grasa de cerdo o vacuna

89 – 50

Manteca

Margarinas Mayonesa Fiambres Almendras

49 – 10

Quesos

Vísceras Carnes Huevo

Crema de leche Chocolates Aceituna Coco

<10

Leche

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ALIMENTO GRASAS SATURADAS GRASAS MONOINSTURADAS GRASAS POLIINSATURADAS Carne de vaca Carne de pollo Pescados (merluza) Huevo Leche entera Aceite de maíz Aceite de girasol Aceite de oliva Manteca Frutas secas Palta 53 40 19 35 65 10 11 15 64 10 17 44 44 27 50 31 36 19 73 33 25 70 3 14 54 15 4 54 70 13 3 65 13

Tabla 5. Contenido de colesterol en algunos alimentos CONTENIDO EN COLESTEROL

(mg/100g DE ALIMENTO)

ALIMENTOS

500 – 300  Hígado

 Riñón

 Caviar

 Huevo de gallina y codorniz  290 – 100  Manteca 

 Piel de pollo  Calamar  Camarón  Menudos  Sardinas  Quesos con más del 30% de grasas 90 – 60  Carne de cerdo

 Carne vacuna

 Carne de pollo

 Salchichas tipo Viena

 Fiambres

 Quesos con 20 al 30% de grasas

<60  Leche

 Merluza

 Salmon

 Quesos con menos del 20% de grasas

TIPO DE ÁCIDO GRASO EFECTO

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MONOINSATURADOS

Anteriormente   se   consideraba   que   poseían   un efecto neutro sobre la concentración del colesterol sérico; en la actualidad se postula que disminuye la fracción LDL y no afectan la fracción HDL. POLIINSATURADOS Disminuyen el colesterol LDL cuando reemplazan a las grasas saturadas en la dieta. Recientemente se ha   demostrado   que   también     disminuyen   el colesterol HDL. Por otro lado,   se ha sugerido que ingestas elevadas de AGPI pueden asociarse a un mayor   riesgo     de   cáncer   probablemente   por   su elevada susceptibilidad a la peroxidacion.

OMEGA-3

Disminuyen los niveles de triglicéridos y colesterol LDL   sin   afectar   al   colesterol   HDL.   Otros   efectos beneficiosos   que se le atribuyen son la reducción en   el   riesgo   de   trombosis   para   disminuir   la inflamación y la tendencia a la coagulación. 

ISÓMEROS TRANS

Con   respecto   a   sus   efectos     sobre   los   lípidos sanguíneos se ha sugerido que serían equivalentes a   los   de   los   AGS,   elevan   el   colesterol   LDL   y disminuyendo el HDL.

Experimentalmente   se   ha   demostrado   que compiten con el metabolismo de los ácidos grasos esenciales disminuyendo la conversión de estos a sus respectivos eicosanoides. 

Tabla 6. Efecto De Los Diferentes Ácidos Grasos En Las Fracciones Del Colesterol Sérico

9. INGESTAS RECOMENDADAS DE LÍPIDOS

Según recientes reuniones de expertos sobre grasas y aceites en la alimentación humana; la FAO ha establecido las siguientes recomendaciones acerca del consumo de lípidos en la alimentación. Ingestas Mínimas deseables

 Las grasas dietéticas deben aportar en las personas adultas un mínimo del 15% del consumo energético diario.

 En las mujeres en edad reproductiva, el mínimo aconsejado es el 20% del consumo energético. Ingestas límites para el consumo de grasas

 Los   individuos   activos   que   se   encuentran   en   un   balance   energético   en   equilibrio   pueden consumir hasta un 35% de su aporte diario en forma de grasas, si su ingesta de ácidos grasosa esenciales y demás nutrientes es adecuada y si el nivel de ácidos grasos saturados no excede el 10% del consumo calórico diario.

 Las personas con vida sedentaria no deben consumir más del 30% del aporte energético diario en forma de grasa.

Consumos recomendados de grasa saturados, insaturadas y colesterol

 La ingesta de ácidos grasos saturados no debe proporcionar un porcentaje mayor al 10% del consumo energético.

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 Se considera apropiada una reducción en la ingesta de colesterol, con un valor menor a 300mg diarios.

Consumo de ácidos grasos esenciales

 La relación ácido linoleico-linoleico en la dieta debe mantenerse entre 5:1 a 10:1.

 Las personas que consuman dietas con una relación superior a 10:1, deben ser estimuladas a aumentar el consumo de alimentos ricos en ácidos omega-3.

10. PRUEBAS DE LABORATORIO PARA IDENTIFICAR LIPIDOS

a. MÉTODOS DE EXTRACCIÓN DIRECTA DE LOS LÍPIDOS

MÉTODO DE SOXHLET

El  método   consiste   en  una   extracción  de  lípidos   semi-continua  con   el solvente  o   mezcla  de  solventes orgánicos adecuado según el tipo de grasa a extraer.

PREPARACIÓN DE LA MUESTRA Y EXTRACCIÓN DE LOS LÍPIDOS

En un cartucho de papel de filtro  colocar la muestra seca y pesada (conviene utilizar lo proveniente de la determinación de humedad por el método indirecto), y ponerla en el tubo extractor. Tarar el balón del aparato y conectarlo al mismo. Por la parte superior del tubo extractor agregar el solvente adecuado (éter etílico, éter de petróleo, mezcla de ambos, etc.) hasta que descargue el sifón, agregando además alrededor de la mitad del contenido del tubo extractor. Calentar para que se produzcan al menos 7 ciclos de llenado y sifonado del tubo extractor (durante 2 horas aproximadamente). 

RECUPERACIÓN Y ELIMINACIÓN DEL SOLVENTE

Quitar el cartucho del tubo extractor con el resto de la muestra. Volver a armar el equipo y recuperar el solvente limpio que se va acumulando en el tubo extractor.  Una vez que queda un pequeño volumen en el balón separar el solvente de los lípidos por evaporación a baño María o en baño de arena caliente. Colocar el balón con los lípidos unos 10 minutos en estufa y pesar. 

Cálculos: una vez conocida la masa de lípidos libre de solvente orgánico, calcular el porcentaje de grasa en la muestra teniendo en cuanta la masa inicial de muestra colocada en el cartucho de extracción. 

Nota: Esta determinación suele denominarse extracto etéreo (si se utiliza éter), pues además de los lípidos 

se extraen otros compuestos solubles en el solvente.

b. Métodos de extracción de los lípidos previa liberación de la fase grasa

MÉTODO DE SCHMID-BONDZYNSKI-RATZLAFF

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MÉTODO DE GERBER

MATERIA GRASA EN LECHE FLUIDA

Se utilizará un butirómetro para leche y ácido sulfúrico Gerber

El H2SO4 Gerber   = 1,82 g/ml, se prepara con 94,2 ml de ácido sulfúrico concentrado (d = 1,84) y 5,8 ml de agua destilada (no agregar NUNCA agua sobre ácido sino ácido sobre agua).

Medir con pipeta 10 ml de H2SO4 Gerber e introducirlos en un butirómetro para leche, cuidando no mojar las paredes internas del cuello.

 Agregar con rapidez 11 ml de leche medidos con pipeta de doble aforo, de manera que forme una capa sobre el ácido sin mezclarse con éste. Agregar inmediatamente 1 ml de alcohol amílico y tapar con el tapón correspondiente. 

Tomar el butirómetro con un paño seco sujetando el tapón y agitar por inversión suave pero efectiva. Verificar que esté bien tapado y colocarlo en un baño de agua a 65-70 °C durante 5 a 10 minutos con el tapón hacia abajo.

  Retirar del baño, secarlo y centrifugarlo en la centrífuga especial con los tapones hacia afuera. Llevar nuevamente a baño de agua durante aproximadamente 5 minutos hasta que alcance la temperatura del agua (65-70 °C) y leer de inmediato el volumen de fase grasa separada en la parte superior graduada del butirómetro. El volumen leído corresponde directamente al porcentaje de grasa en la leche. 

MATERIA GRASA EN CREMA O MANTECA

Se utiliza un butirómetro similar al utilizado para leche, pero abierto en sus dos extremos y con una copita de vidrio en el tapón que obtura la base, en la que se pesa la muestra. La graduación del vástago es de 0 a 70.

Se pesan en la copita 4 a 5 g de muestra (algo menos en el caso de la manteca), se la coloca en el butirómetro, se ajusta bien el tapón y por la otra boca se agregan 10 ml de agua destilada, 10 ml de H2SO4 Gerber (  = 1,82) y 1 ml de alcohol amílico, se tapa, se toma con un repasador y sujetando el tapón se agita hasta disolución total. 

Se coloca luego durante 5 min en baño María a 60-70 °C con el bulbo hacia abajo. Conviene atar los tapones, pues sino se corre el riesgo de que salten y se pierda la determinación. Una vez cumplido el tiempo de calentamiento, se centrifuga 5 min en la centrífuga Gerber con el ápice hacia adentro. 

Cálculo: Se aplica la fórmula siguiente: 

        L x 5

materia grasa = --- - 0,5 = g%         p

  L: lectura en el butirómetro 

  5: porque el butirómetro está graduado para 5 gr de muestra   p: gramos de muestra pesados.

  0, 5: factor de corrección

MÉTODO DE ROSE GOTTLIEB

REACTIVOS :

 NH4OHconcentrado  Etanol

 Eter etílico  Eter de petróleo

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agua destilada y agitar hasta que se la muestra se disperse totalmente, calentando  si es necesario a 60 °C en baño de agua. Enfriar y agregar 1 ml de NH4OH concentrado. Agitar y agregar 5 ml de etanol. Agitar y agregar con pipeta aforada 10 ml de éter etílico. Agitar durante 30 s y agregar con pipeta aforada 10 ml de éter de petróleo. Volver a agitar y leer bien el volumen total de la mezcla. 

Dejar reposar entre 4 y 24 horas en lugar fresco de modo de evitar la evaporación de solventes. Con pipeta aforada tomar 10 ml de la fase superior etérea y evaporarlos en un pequeño cristalizador tarado. Dejar enfriar en desecador, pesar y expresar como porcentaje de grasa en la muestra.

a. MÉTODOS DE EXTRACCIÓN DE LÍPIDOS TOTALES EN FRÍO

EXTRACCIÓN DE FOLCH.

Pesar la masa deseada de muestra. Agregar 20 partes de una mezcla de metanol: cloroformo (2:1) por cada parte de muestra. Agregar 20 % del volumen de agua. Dejar overnight para lograr la separación de fases. Separar la fase acuosa de la orgánica

EXTRACCIÓN DE BLIGH AND DYER (aplicada a la extracción de lípidos de músculos)

Pesar 5 g de músculo. Agregar 10,0 ml de metanol (agitar) y 5,0 ml de cloroformo (relación metanol: Cl3CH:H2O = 2:1:0.8, incluyendo el agua contenida en la muestra). Agitar durante 30 min (4°C). Agregar 5,0 ml de Cl3CH y agitar. Agregar 5 ml de agua (relación metanol: Cl3CH:H2O = 2:2:1.8). Centrifugar a 5000 rpm, 10 min. Separar la fase acuosa de la orgánica. Pasar la fase orgánica a través de papel de filtro.

A   partir   de   la   fase   clorofórmica   de   cualquiera   de   estas   extracciones   se   podrán   realizar   las   siguientes determinaciones:

 Lípidos totales (por pesada luego de la evaporación del solvente) 

 Cromatografía en capa fina (TLC) para evaluar las distintas fracciones lipídicas presentes.  Cuantificación de colesterol y triglicéridos.

 Perfil de ácidos grasos

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

BIOQUÍMICA DE HARPER, BIOQUÍMICA ILUSTRADA - MURRAY ROBERT K Ed. 28ª, Editorial Mcgraw-Hill, 2010.

QUÍMICA - CHANG R. ED. MCGRAW-HILL 1998.

BIOQUÍMICA - HORTON, H. ROBERT; MORAN, LAURENCE A; OCHS RAYMOND S; RAWN, J. DAVID; SCRIMGEOUR K. GRAY. México, D.F: Prentice-Hall Hispanoamericana, 1995.

QUÍMICA - SIENKO, MICHELL J; PLANE, ROBERT A. Madrid: Aguilar, 1967.

FUNDAMENTOS DE LA NUTRICIÓN NORMAL - LAURA B LÓPEZ; MARTHA MARÍA SUAREZ Edición 3ra, Reimpresión 2008.  

“Las Biomoléculas de la Vida “

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