Su presencia puede detectarse en las larvas de la polilla gitana Lymantria dispar (Lepidoptera : Lymantriidae ) en estadios tardíos, las cuales mueren colgadas de las ramas cuando son infectadas. Los cadáveres caen paulatinamente en la base de las plantas. Se encuentran cuerpos hifales dentro del organismo de los insectos infecta- dos, así como un micelio productor de esporas que emerge de los cadáveres, el cual se descompone luego de que las conidias se han liberado de forma activa.
Las esporas de descanso poseen treinta micrómetros de diámetro y se encuen- tran dentro de los estadios tardíos de las larvas de la polilla L. dispar . E. maimaiga habita principalmente en árboles de hojas anchas y coníferas. Se encuentran grandes cantidades de esporas de descanso en la base de los árboles en los que han muerto larvas infectadas . Con base en estudios de laboratorio, parece que E. maimaiga es específico de la familia Lymantriidae , sin embargo, puede infectar en bajas propor- ciones a miembros de las familias Noctuidae y Lasiocampidae .
Las especies pertenecientes a los hongos Entomophthorales poseen varios ciclos de vida y las conidias tienen corto tiempo de duración. Las esporas se liberan activamente de los cadáveres y de inmediato pueden ocasionar una infección . Los cuerpos hifales se desarrollan dentro del cuerpo de su huésped; el micelio crece fuera del cadáver. Las esporas de descanso se producen en el interior del cuerpo del huésped durante etapas larvales tardías y es necesario que atraviesen por un periodo de dormancia . De las epizootias de E. maimaiga ocurridas en Norteamérica en poblaciones de L. dispar durante 1989 y 1990, se concluyó que este hongo es un agente importante de control biológico , en comparación con los virus de la poliedro- sis nuclear (VPN ), que requieren de altas poblaciones de la polilla para causar una epizootia, E. maimaiga puede ocasionar infecciones en poblaciones bajas. Estudios realizados demuestran que en 1996 la defoliación producida por L. dispar declinó en más de 85% en relación con los niveles de 1995 en once estados de Estados Unidos. El caso más dramático ocurrió en Virginia, donde ya no hubo defoliación durante 1996, en comparación con los 850.000 acres defoliados en 1995. Durante cada pri- mavera, E. maimaiga inicia la infección cuando las esporas de descanso germinan para producir conidias. Como se encuentra gran cantidad de conidias en la base de los árboles, no se recomienda remover el suelo ya que puede disminuir el número de esporas en la superficie de éste y, por tanto, el nivel de infección.
Subdivisión Mastigomycotina
base en su propagación asexual , cuya espora posee uno o dos flagelos y está adaptada para la locomoción en medio líquido. Las formas patógenas se encuentran en las clases Chytridiomycetes y Oomycetes .
Dentro de los Chytridiomycetes se destaca el género Coelomomyces. La especie C. stegomyi se aisló del mosquito Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) . Existen cerca de treinta especies ampliamente distribuidas en todo el mundo. Éstos son patógenos obli- gados de mosquitos y otros artrópodos que sirven como hospederos alternantes.
Coelomomyces
Para su desarrollo requiere de un hospedero alternante; las zoosporas presentes en larvas de mosquitos infectan otros artrópodos acuáticos , como los copépodos , y las zoosporas provenientes de copépodos infectan sólo larvas de mosquitos. En el copépodo se desarrollan tales gametofitos de color ámbar o naranja; los primeros producen gametos femeninos y los segundos, gametos masculinos. Colomomycetes ataca los diferentes instares larvales. Algunas especies infectan una sola especie de mosquito, mientras otras tienen un amplio rango de hospederos , por ejemplo C. indiana ataca diecisiete especies en tres géneros de mosquitos.
Dentro de los Oomycetes , el orden Lagenidiales incluye un grupo hetero- géneo, en el cual las especies patógenas de mosquitos se agrupan en el género Lagenidium .
Lagenidium
Las zoosporas de este hongo infectan por vía oral o por medio del tegumento. Este hongo es un patógeno facultativo capaz de crecer saprofíticamente . L. giganteum uti- liza la trehalosa del mosquito infectado, lo que resulta en la reducción de las reservas de la larva que alteran la fisiología del mosquito. L. giganteum infecta varias especies de mosquitos de los géneros Aedes , Culex , Anopheles , Culiseta (Diptera: Culicidae ). La infección ocurre en dos o tres días, según el estado de desarrollo del huésped, las larvas jóvenes (primer y segundo instar ) mueren rápidamente, las larvas maduras mueren a los tres o cuatro días. Después de formarse los cuerpos hifales ocurre una septación y se originan los esporangios . Éstos forman tubos de salida a través de la cutícula por medio de una vesícula en la cual se forman las zoosporas.
Virus
El reconocimiento de los virus como agentes patógenos de insectos parece remontarse al año 1909, cuando B. Wahl mostró que el agente causante de la enfermedad de Lymatria monacha (Lepidoptera : Lymantriidae ) pasaba a través de filtros. Cornalia y Maestri , quienes trabajaban por separado, asociaron en 1856 la enfermedad del gusano de seda Bombyxpo mori (Lepidoptera: Bombycidae) con la presencia de cuer- pos poliédricos, pero la demostración formal de su asociación con la enfermedad del gusano de seda la proporcionó Bolle en 1894. Después de casi cuarenta años,
E. Steinhaus publicó su trabajo sobre microbiología de insectos (1946), donde men- ciona 47 insectos asociados a enfermedades virales. En contraste, en la actualidad existen más de 1.270 asociaciones de insecto-virus reconocidas , y más del 70% in- volucran Lepidoptera como hospederos , 14% en Diptera, 7% en Hymenoptera , 5% en Coleoptera y el restante 4% en Orthoptera , Isoptera, Hemiptera y Neuroptera (Martignoni e Iwai, 1981).
Todos los virus son parásitos intracelulares obligado s y, por tanto, deben culti- varse en hospederos vivos . Los virus patogénicos de artrópodos pueden clasificarse según la naturaleza de la forma molecular (ADN o RNA simple o doble ). Cada uno de estos grupos se subdivide en virus cuya partícula o virión está embebida en una matriz proteica (virus ocluido) y virus en los que el virión se encuentra libre en la célula infectada. Cada uno de estos grupos se subdivide con base en su morfología (varilla, ovoide, icosaédrico, forma de bala, etc.), en su fisiología y características químicas. La presencia de cuerpos de inclusión constituye un medio fácil y rápido para reconocerlos bajo el microscopio compuesto.
Por ejemplo, entre las familias más conocidas por tener formas de doble ADN se encuentran: Baculoviridae , Polydnaviridae , Poxviridae , Ascoviridae , Iridoviridae . La familia Parvoviridae contiene formas de ADN simples. Las familias Reoviridae , Nodaviridae , Picornaviridae , Tetraviridae , Birnaviridae , Rhabdoviridae , Calciviridae , Togaviridae , Bunyaviridae y Flaviviridae son RNA virus , todos con formas simples, excepto Reoviridae y Birnaviridae (Tanada y Kaya, 1993).
Baculoviridae
Estos virus constituyen el 71% de los virus que presentan inclusiones virales ; este grupo se asocia sólo a artrópodos e insectos; característica que ha hecho que la Organización Mundial de la Salud recomiende los baculovirus como el grupo más seguro para uti- lizarse en programas de control , ya que sólo atacan a los insectos y otros artrópodos. Como algunos virus humanos, son usualmente pequeños en extremo (menos de la millonésima de un milímetro), y se componen principalmente de ADN , en el cual se encuentra la información para su establecimiento y reproducción . Debido a que este material genético lo destruyen con facilidad los rayos ultravioleta o las condiciones del intestino de su huésped, una partícula infecciosa de baculovirus (virión ) está protegida por una capa proteica llamada polihedrón . La mayoría de los baculovirus deben ser ingeridos por su hospedero para producir una infección (véase figura 4.70).