Identificación de los fitoconstituyentes en hojas y tallos de la especie eupathorium triplinerve “asmachilca”
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(2) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PRESENTACIÓN Señores miembros del jurado dictaminador:. A. Dando cumplimiento a lo establecido por el reglamento de grados y títulos. UI M. IC. de la Facultad de Farmacia y Bioquímica de la Universidad Nacional de Trujillo. Sometemos a vuestra consideración y elevado criterio profesional de. los. O. Q. el presente Informe de Investigación I: Identificación. BI. Fitoconstituyentes en Hojas y Tallos de la Especie Eupathorium. AC IA. Y. triplinerve “Asmachilca”. Es propicia esta oportunidad para manifestarle nuestro más sincero. FA RM. reconocimiento a nuestra alma mater y toda su plana docente, que con su capacidad y buena voluntad contribuyeron a nuestra formación profesional.. DE. Dejo a vuestro criterio señores miembros de jurado dictaminador la. BI. BL. IO. TE. CA. calificación del presente trabajo de investigación científica.. Carlos Torres Juan Eduardo. Rodríguez Carril Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(3) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. A. AGRADECIMIENTO ESPECIAL. UI M. IC. A ti Señor Todopoderoso que siempre nos guía e ilumina, te damos las gracias por darnos el valor, sabiduría,. O. Q. sinceridad y confianza en nuestros corazones. BI. para seguir adelante y superar diversos obstáculos. AC IA. Y. que se nos presenta en el duro camino de la vida.. FA RM. Y a nuestra Madre Santísima por brindarnos esperanza, amor, y la tranquilidad en nuestros corazones para perdonar a nuestros semejantes y seguir siempre. DE. con nuestra mentalidad de superarnos día a día,. CA. para ser buenos profesionales y brindar ayuda,. KARYN y JUAN. BI. BL. IO. TE. con responsabilidad, a los que más necesiten.. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(4) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. IC. A. MI ETERNA GRATITUD. Q. BI. O. ABEL Y ANGELA. UI M. A mis queridos Padres:. Y. Por su incondicionable esfuerzo, cariño, confianza que me brindan y. AC IA. por su ejemplo de coraje ante cualquier adversidad. Que sin su apoyo. FA RM. no podría terminar una de mis metas deseadas, de ser. DE. Químico Farmacéutico.. Ustedes siempre están a mi lado cuando más lo necesite,. CA. desde el fondo de mi corazón les doy mis mas sincero agradecimiento.. JUAN CARLOS. BI. BL. IO. TE. A ustedes les dedico este sueño alcanzado.. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(5) O. Q. A mis hermanos:. UI M. IC. A. Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Y. BI. LUIS, FERNANDO Y YESSICA. AC IA. Que gracias a sus valiosos consejos, su cariño. FA RM. y experiencia en la vida, me han ayudado a culminar el presente trabajo. a todos ustedes esta. JUAN CARLOS. BI. BL. IO. TE. CA. DE. dedicado este proyecto.. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(6) A. Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. UI M. IC. A ti Abuelito. O. Q. PEDRO TORRES YUPANQUI. Y. BI. Que estas en el cielo, me has enseñado al no rendirme. AC IA. ante cualquier adversidad que se presente, por mas oscuro que se ponga en el camino de la vida,. FA RM. siempre habrá una luz que te fortalezca y te guíe. Me has demostrado que con deseo, dedicación y. DE. las ganas de vivir, lo supera cualquier obstáculo,. CA. manteniendo la mirada fija al horizonte.. JUAN CARLOS. BI. BL. IO. TE. Eternamente gracias abuelito.. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(7) UI M. IC. A. Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. O. Q. AGRADECIMIENTO ESPECIAL:. Y. BI. A LA CATEDRA DE FARMACOGNOSIA. AC IA. Que nos brindaron su capacidad de formación profesional,. FA RM. sus consejos, apoyo y enseñanzas. Por ser tutores y amigos porque con su ejemplo nos enseñaron a. KARYN y JUAN. BI. BL. IO. TE. CA. DE. respetar y querer nuestra profesión.. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(8) UI M. IC. A. Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. O. Q. Con gratitud:. Y. BI. DRA. . MIRIAM GUTIÉRREZ RAMOS. AC IA. Que por su vocación profesional, compañerismo, paciencia. FA RM. y su gran consejeria; nos ayudó a culminar el presente trabajo. Muchas gracias por todo y siempre. KARYN y JUAN. BI. BL. IO. TE. CA. DE. les estaremos agradecidos.. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(9) IC. A. Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Y. BI. O. Q. UI M. JURADO DICTAMINADOR. AC IA. ELENA DE LOS RIOS MARTÍNEZ. (PRESIDENTE). (MIEMBRO). LUIS CHAVEZ ABANTO. (MIEMBRO). BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. SALOMON ALVA BAZAN. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(10) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. INDICE. Pag. i. IC. A. RESUMEN. Q. UI M. ABSTRACT. INTRODUCCION. II.. MATERIAL Y METODOS. III.. RESULTADOS. IV.. DISCUSION. V.. CONCLUSIONES. VI.. SUGERENCIA. 1. 7. 16. 19. 25. 27. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. AC IA. Y. BI. O. I.. ii. 29. BI. VII. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS. VIII. ANEXOS. 33. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(11) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. RESUMEN El presente trabajo de investigación de tipo descriptivo, se realizó en el laboratorio de Farmacognosia, en la facultad de Farmacia y Bioquímica de la. IC. A. Universidad Nacional de Trujillo – La Libertad, durante los meses de Diciembre. UI M. del 2006 – Marzo del 2007, con el propósito de identificar los fitoconstituyentes. Q. en las hojas y tallos de Eupathorium triplinerve “Asmachilca”.. O. La investigación se ha realizado con la marcha fitoquímica preliminar de la Dra.. BI. Olga Lock, empleándose una muestra seca y molida de la planta en estudio, el. Y. cual se utilizó solventes de polaridad creciente, efectuándose después la. AC IA. determinación cualitativa de los fitoconstituyentes por el medio de las reacciones de coloración y precipitación, obteniéndose así los siguientes fitoconstituyentes:. FA RM. Esteroides, taninos, flavonoides, leucoantocianidinas y saponinas.. El análisis y discusión de los resultados nos ha permitido establecer la siguiente. DE. conclusión:. CA. Las hojas y tallos de Eupathorium triplinerve “Asmachilca” contiene. TE. fitoconstituyentes de importancia, tales como: Esteroides, taninos,. BL. IO. flavonoides, leucoantocianidinas y saponinas.. BI. Palabras claves: Eupathorium triplinerve, Asmachilca, fitoconstituyentes, Olga Lock. i Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(12) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. ABSTRACT The present work of investigation of descriptive type, was made in the laboratory of Farmacognosia, the faculty of Pharmacy and Biochemistry of the National. IC. A. University of Trujillo – La Libertad, during the months of December to 2006 -. UI M. March of 2007, in order to identify the fitoconstituyentes in the leaves and stems. Q. of Eupathorium triplinerve "Asmachilca".. O. The investigation has been made with the preliminary fitoquímica march of the. BI. Dra. Olga Lock, being used a dry and ground sample of the plant in study, which. Y. was used reliable of increasing polarity, taking place later the qualitative. AC IA. determination of the fitoconstituyentes by means of the coloration reactions and precipitation, obtaining itself therefore the following fitoconstituyentes: Steroids,. FA RM. tannins, flavonoides, leucoantocianidinas and saponinas.. The analysis and discussion of the results have allowed us to establish the. DE. following conclusion:. CA. The leaves and stems of Eupathorium triplinerve "Asmachilca" contains. TE. fitoconstituyentes of importance, such as: Steroids, tannins, flavonoides,. BL. IO. leucoantocianidinas and saponinas. BI. Key words:. Eupathorium triplinerve, Asmachilca, fitoconstituyentes, Olga Lock. ii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(13) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Facultad de Farmacia y Bioquímica. AC IA. Y. BI. O. Q. UI M. IC. A. Universidad Nacional de Trujillo. BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. I. INTRODUCCIÓN. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(14) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Durante, o incluso milenios, nuestros antepasados recurrieron a las plantas para calmar sus dolores y curar sus males. Transmitieron de generación en generación sus observaciones y experiencias con éstas, intentando, cuando era posible, conseguirlas por escrito. Se atribuyó un poder sobrenatural a las plantas. A. medicinales, cuyas virtudes terapéuticas suscitaban toda clase de creencias y. UI M. IC. supersticiones (1, 21, 23, 26).. O. Q. Las plantas medicinales han revelado secretos a través de un largo proceso en el. BI. transcurso del cual, el hombre, en su íntimo contacto con la naturaleza, ha. Y. mantenido una lucha incesante para sobrevivir, ejerciendo la necesidad de adquirir. AC IA. conocimientos de identificación sobre lo que alimenta, cura y mata; lo importante. FA RM. es que la medicina moderna descubre remedios antiguos en las plantas y ciertos compuestos químicos que ejercen una especial influencia sobre la fisiología humana; precisando, comparando y clasificando las diversas propiedades, no con. DE. el fin de disminuir esta confianza en la naturaleza, sino, agrupando a las plantas de. TE. CA. efectos similares y también para establecer parámetros de comparación (2, 3, 5,17,25).. IO. Las plantas medicinales son vegetales que elaboran productos denominados. BL. fitoconstituyentes, que ejercen acción beneficiosa y/o perjudicial, en el organismo. BI. vivo. Su utilidad primordial, es aliviar la enfermedad o restablecer la salud; es decir, que tienden a disminuir o neutralizar el desequilibrio orgánico en el organismo enfermo (14, 20).. Carlos Torres, Juan Eduardo. 2. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(15) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Los fitoconstituyentes son productos de la biosíntesis a partir de un metabolito primario (proteínas, ácidos grasos, polisacáridos, carbohidratos, lípidos, triglicéridos, etcétera), tienen distribución restringida en ciertas plantas, a veces es característico de un género o una especie, se le atribuye propiedades terapéuticas,. A. son sumamente complejos y en algunos casos aún se desconoce su naturaleza. UI M. IC. química; otros son aislados y purificados e incluso sintetizados (17, 25).. O. Q. Dentro de los principales fitoconstituyentes podemos encontrar: Los flavonoides. BI. (también conocidos como antoxantinas), son compuestos fenólicos que suelen. Y. encontrarse bajo la forma de glicósidos con una o tres unidades de azúcar; bien. AC IA. conocidos por sus actividades contra la fragilidad capilar, diurética, espasmolítica,. FA RM. antioxidante y actividad antimicrobiana.. Las cumarinas, se presentan a menudo en forma: libre, mezclas o glicósidos; tienen amplio rango de actividad biológica como: anticoagulante, antibacteriana,. DE. insecticida, también se usan como saborizante y en perfumería.. CA. Los esteroides, se encuentran como glicósidos formando las llamadas saponinas. TE. triterpenoidales y esferoidales; estos compuestos tienen como principal actividad. IO. ser antiinflamatorios .. BI. BL. Los alcaloides, constituyen el grupo más grande de metabolitos secundarios que pueden encontrarse al estado libre, como glicósidos o formando sales con ácidos. Su acción fisiológica es variada: antiespasmódica, analgésica, estimulante, expectorante, etcétera (9).. Carlos Torres, Juan Eduardo. 3. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(16) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Para conocer los fitoconstituyentes responsables de la acción fisiológica, se les debe extraer con métodos adecuados, aislar, determinar su estructura química, así como también diseñar métodos de síntesis, proponer modificaciones y disminuir su toxicidad; dando a conocer a la humanidad sobre estos resultados beneficiosos (25). IC. A. .. UI M. Probablemente más del 90 por ciento de los principios activos que si bien es. Q. cierto, actualmente son sintetizados por las industrias farmacéuticas; su naturaleza. BI. O. química fue descubierta en diferentes especies vegetales. Esto hace ver la urgencia. Y. de nuevas e intensas investigaciones de nuestra flora, para buscar principios. FA RM. cobran más víctimas (15, 22).. AC IA. activos que nos permitan hacer frente a las múltiples enfermedades que día a día. El Perú presenta una gran riqueza en su flora, de la cual hay miles de especies. DE. conocidas y cientos por descubrir, con menos del 10 % estudiadas; nuestro país. CA. se caracteriza por su variedad geográfica y diversidad de climas que favorecen la. TE. existencia de numerosas plantas medicinales, sin embargo uno de los mayores. IO. problemas es el poco conocimiento de su verdadera actividad terapéutica. Es. BL. indudable que existen muchas especies de plantas que contienen sustancias de. BI. valor medicinal, pero poco o nada se ha hecho por comprobar su eficacia en la terapia convencional y utilizarlas como recursos naturales orientadas a solucionar problemas de salud (1, 12, 18,28).. Carlos Torres, Juan Eduardo. 4. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(17) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Muchas de estas plantas son usadas como remedios no oficiales y circulan solo por la reputación que el uso popular le ha conferido; tal es el caso del Eupathorium triplinerve. que se conoce en nuestros medios andinos como. “Asmachilca” (hierba oriunda de la sierra peruana), actualmente es usada en. A. nuestro medio, por su actividad antiasmática, como propiedad principal, además. IC. de otras como: antioxidante, sudorífica, cicatrizante, antinflamatoria y. UI M. antidiarreica; es de suponer que todas estas virtudes curativas se debe a la. O. Q. presencia en los tejidos de la planta de fitoconstituyentes con algún principio. (15, 26). .. AC IA. Y. para determinar sus componentes químicos. BI. activo que produce el efecto fisiológico, lo cual nos motiva realizar este estudio. A nivel popular basta muchas veces con extraer los fitoconstituyentes de la. FA RM. manera mas sencilla, como puede ser por medio de una infusión o decocción. En cambio, para analizar las propiedades de una planta medicinal, en muchos casos. DE. se recurre a métodos de extracción más complejos que permiten obtener métodos. TE. CA. reproducibles, con cuantificación de los mismos (1).. IO. Para alcanzar el nivel de cuantificación de fitoconstituyentes debe asegurarse la. BL. presencia de éstos a través de métodos de extracción específicos (secuencia lógica. BI. de extracción con solventes apropiados, aplicación de pruebas de coloración y precipitación). Una de las técnicas que se emplea es la marcha fitoquímica preliminar de Olga Lock (10, 17).. Carlos Torres, Juan Eduardo. 5. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(18) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. El propósito del presente trabajo es contribuir con el conocimiento y proporcionar información de la composición fitoquímica de la especie Eupathorium triplinerve “Asmachilca”, así como incentivar al estudio e investigación de otras plantas medicinales de nuestra flora, con el fin de promover la utilización adecuada de las. IC. A. plantas medicinales.. O. Q. UI M. Según lo expuesto anteriormente nos planteamos el siguiente problema:. BI. ¿Qué fitoconstituyentes se identificarán en las hojas y tallos de la especie. FA RM. preliminar de Olga Lock?. AC IA. Y. Eupathorium triplinerve “Asmachilca” a través de la marcha fitoquímica. Para el desarrollo de esta investigación planteamos el siguiente objetivo:. Identificación de los fitoconstituyentes de la especie Eupathorium. DE. . CA. triplinerve “Asmachilca” mediante la marcha fitoquímica preliminar de. BI. BL. IO. TE. Olga Lock.. Carlos Torres, Juan Eduardo. 6. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(19) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Facultad de Farmacia y Bioquímica. AC IA. Y. BI. O. Q. UI M. IC. A. Universidad Nacional de Trujillo. BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. II. MATERIAL Y MÉTODO. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(20) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. A.. Facultad de Farmacia y Bioquímica. MATERIAL:. 1. MATERIAL BIOLÓGICO: Hojas y tallos de Eupathorium triplinerve “Asmachilca” (donadas por el Instituto Peruano de Investigación Fitoterapéutica Andina); obtenidas en el. UI M. 2. MATERIAL Y EQUIPOS DE LABORATORIO:. IC. A. Departamento de Puno – Perú.. Q. 2.1. MATERIAL DE VIDRIO:. BI. O. Se utilizó el de uso común en el laboratorio.. Y. 2.2. REACTIVOS: Ácido Acético.. . Ácido Clorhídrico q.p. y 1 %.. . Ácido Nítrico.. . Ácido Sulfúrico q.p.. . Amoniaco q.p.. . Cloruro de Mercurio.. FA RM. DE. CA. Solución de Gelatina 1%.. TE. . AC IA. . IO. . . Limaduras de Magnesio.. . Ninhidrina 2%.. . Nitrato de Bismuto.. . Sulfato de Sodio.. . Tricloruro Férrico al 5%.. . Yoduro de Potasio.. BL BI. Solución de Hidróxido de Sodio al 5%.. Carlos Torres, Juan Eduardo. 8. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(21) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. . Agua destilada.. . Metanol. . Cloroformo. . Etanol.. A. 2.3. SOLVENTES:. . Baño María “Memmert”.. . Cocina Eléctrica “Geovana”.. . Estufa “Memmert”.. . Molino Eléctrico.. UI M. Balanza Analítica “Ohaus – GA 200”.. AC IA. Y. BI. O. Q. . IC. 2.4. EQUIPOS DE LABORATORIO:. FA RM. 2.5. OTROS MATERIALES: Espátulas.. . Gradilla.. . Mortero.. . Papel filtro.. CA. Papel tornasol.. TE. . DE. . Tamices: 1.2 mm. y 2 mm.. . Termómetro.. BI. BL. IO. . Carlos Torres, Juan Eduardo. 9. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(22) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. B.. Facultad de Farmacia y Bioquímica. MÉTODO:. 1. TRATAMIENTO DE LAS HOJAS Y TALLOS DE Eupathorium triplinerve “ASMACHILCA”: 1.1. RECOLECCIÓN E IDENTIFICACIÓN:. A. La especie Eupathorium triplinerve “Asmachilca” fue recolectada en. IC. el Departamento de Puno a 3600 – 4000 m.s.n.m., en el mes de Enero. UI M. del 2007 e identificada por el Instituto Peruano de Investigación. Y. BI. superiores de la planta (tallos y hojas).. O. Q. Fitoterapéutica Andina (IPIFA). Fueron recolectadas las partes. AC IA. 1.2. SECADO, PULVERIZACIÓN Y TAMIZADO: a. SECADO A LA ESTUFA:. FA RM. Se pesaron 50g de muestra, las cuales fueron colocadas en bolsas hechas a base de papel Kraft con orificios, se llevaron a la estufa a 40. DE. °C, hasta obtener un peso constante. Se almacenaron en cajas de. CA. cartón forradas internamente con papel aluminio, a temperatura. TE. ambiente (16).. IO. b. PULVERIZACIÓN:. BI. BL. Se colocaron las hojas y tallos secos en un molino eléctrico y se procedió a la molienda, este proceso se repitió por dos veces (20).. c. TAMIZADO: La muestra pulverizada se pasó por dos tamices de diferente calibre: 2 mm y 1,2 mm; envasándola en recipientes de vidrio color ámbar de. Carlos Torres, Juan Eduardo. 10. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(23) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. acuerdo al tamaño de la partícula, para luego proseguir con la extracción de fitoconstituyentes según el método elegido (13).. 2. MARCHA FITOQUÍMICA:. A. 2.1. MÉTODO:. IC. Se siguió con la Marcha Fitoquímica Preliminar de Olga Lock. (Figura. UI M. Nº 1).. O. Q. 2.2. FUNDAMENTO:. BI. Se basa en la extracción de los fitoconstituyentes, sometiendo a la. Y. muestra a la acción extractiva de solventes de polaridad creciente:. AC IA. cloroformo, etanol, metanol y agua; además de la aplicación de. FA RM. pruebas de identificación por coloración y precipitación (10, 17). 2.3. PROCEDIMIENTO:. Se maceraron 20 g de muestra seca y molida en 200 ml de metanol,. DE. durante 20 horas a temperatura ambiente. Se llevó a reflujo por 5 horas. CA. y se filtró en caliente. El residuo fue lavado con metanol hasta obtener. TE. 200 ml del filtrado. Luego se tomaron 8 ml, que correspondió a la. IO. fracción “a”, a la cual se determinó la presencia de taninos; y otros. BI. BL. 10 ml correspondientes a la fracción “b” en donde se determinaron. aminoácidos y flavonoides, mediante la prueba de coloración y precipitación. Al resto del filtrado metanólico se añadió 30 ml Àcido Clorhídrico al 1% a 50 °C, filtramos y repetimos la extracción con 30 ml mas del. Carlos Torres, Juan Eduardo. 11. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(24) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. mismo reactivo, luego se juntaron los filtrados (solución ácida). La parte insoluble fue lavada con agua y se agregó 50 ml de cloroformo, se calentó, filtró y se añadió sulfato de sodio, esto constituyó la fracción “c”, que sirvió para determinar la presencia de esteroides y. A. quinonas con las respectivas pruebas de coloración y precipitación.. IC. De nuestra solución ácida se filtró y alcalinizó con amoniaco. UI M. controlando con papel tornasol (reacción ácida a base). Se extrajo con. O. Q. 200 ml de cloroformo por dos veces consecutivas, formándose 2 fases:. BI. clorofórmica y acuosa.. Y. La fase clorofórmica fue lavada con agua y se unió a la fase acuosa. El. AC IA. resto de la fase clorofórmica se deshidrató con sulfato de sodio y se. FA RM. filtró; se separó 4 ml de dicho filtrado y se llevó a evaporación, agregándose después 0.2 ml de cloroformo, la cual correspondió a la fracción “d” en donde se determinó la presencia de esteroides. El. DE. resto del filtrado clorofórmico se llevó a evaporar y añadimos 2 ml de. CA. ácido clorhídrico 1 %, procediendo luego a filtrar, esto constituyó la. TE. fracción “e”, el cual se determinó la presencia de alcaloides.. IO. La fase acuosa fue saturada con sulfato de sodio (0.1 g de sal anhidra. BI. BL. por ml. de solución) y se extrajo con cloroformo:etanol (3:2) en dos. porciones de 25 ml cada una, formando 2 fases: clorofórmica – etanólica y la acuosa remanente. La fase clorofórmica – etanólica fue lavada con agua que se unió a la fase acuosa remanente; al resto del filtrado se añadió sulfato de sodio,. Carlos Torres, Juan Eduardo. 12. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(25) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. filtró y se evaporó, esto constituyó la fracción “g”, para determinar la presencia de flavonoides, leucoantocianidina, esteroides (previa adición de cloroformo) y alcaloides (previa adición de solución ácido clorhñidrico 1%). Mientras que la fase acuosa remanente constituyó la. A. fracción “f”, el cual se determinó la presencia de flavonoides y. UI M. IC. leucoantocianidinas.. O. Q. a. REACCIONES DE IDENTIFICACIÓN EN LA MARCHA. BI. FITOQUÍMICA PRELIMINAR:. Y. Fracción “a”: . AC IA. Identificación: Taninos. FA RM. Reacción de Gelatina al 1% Reacción de FeCl3 Fracción “b”: . DE. Identificación: Aminoácidos. Identificación: Flavonoides. IO. TE. . CA. Reacción de Ninhidrina. Reacción de Shinoda.. BI. BL. Fracción “c”: . Identificación: Esteroides Reacción de Liebermann – Bouchard. . Identificación: Quinonas Reacción de Borntrager. Carlos Torres, Juan Eduardo. 13. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(26) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Fracción “d”: . Identificación: Esteroides Reacción de Liebermann – Bouchard. Fracción “e”: . A. Identificación: Alcaloides. IC. Reacción de Dragendorff.. UI M. Reacción de Mayer.. Q. Reacción de Hager.. Y. Identificación: Flavonoides. BI. . O. Fracción “f”:. AC IA. Reacción de Shinoda . FA RM. Identificación: Leucoantocianidinas Reacción de Rosenheim. Reacción de Hager.. Identificación: Flavonoides. CA. . DE. Fracción “g”:. TE. Reacción de Shinoda.. BI. BL. IO. . . Identificación: Leucoantocianidinas Reacción de Rosenheim. Identificación: Esteroides Reacción de Liebermann – Bouchard. . Identificación: Alcaloides Reacción de Dragendorff.. Carlos Torres, Juan Eduardo. 14. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(27) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Reacción de Mayer.. 3. ANÁLISIS FITOQUÍMICO: A parte de la marcha fitoquímica se puede realizar ensayos directos sobre el. SAPONINAS: PRUEBA DE ESPUMA.. UI M. 3.1. IC. A. material vegetal, entre ellos tenemos:. Q. Con el material pulverizado se preparó un extracto acuoso al 1 %, se. BI. O. filtró y dicho filtrado se agitó vigorosamente por 30 segundos. La. AC IA. BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. de la saponina.. Y. formación de espuma persistente por 30 minutos indicará la presencia. Carlos Torres, Juan Eduardo. 15. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(28) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Facultad de Farmacia y Bioquímica. AC IA. Y. BI. O. Q. UI M. IC. A. Universidad Nacional de Trujillo. BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. III. RESULTADOS. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(29) IO. BL. Carlos Torres, Juan Eduardo. CA. FLAVONOIDES. 17. ALCALOIDES. X X. Reacción de Dragendorff Reacción de Hager. Tamalño de partícula: 1.2 mm Leyenda: ++: Abundante precipitado o color intenso + : Mínimo precipitado o color. X. X. Reacción de Mayer. Reacción de Roseihm. LEUCOANTOCIANIDINAS. Reacción de Bortranger. X. -. X. +. FA RM. ++. +. O. BI. -. -. -. -. UI M. Q. X. X. -. -. X. IC. A. X. X. X. ++. X. X. X. ++. ++. X. Remanente. Metanólico X. Acuoso. Cloroformo –. - : No hay cambio x : No se desarrollo la reacción. -. -. -. X. X. X. Y. -. X. X. X. Clorofórmico. AC IA. Metanólico. EXTRACTOS. X. X. X. X. -. X. ++. X. X. X. Insoluble. Fracción. Universidad Nacional de Trujillo. QUINONA. Reacción de Ninhidrina. AMINOACIDOS. Reacción Lieberman - Bouchard. ESTEROIDES. DE. Reacción de Tricloruro Férrico. Reacción de Shinoda. TANINOS. Reacción de Gelatina. TE. PRECIPITACION. REACCIONES DE COLORACION Y. BI. Hojas y Tallos de Eupathorium triplinerve "Asmachilca". Cuadro 1: Identificación de Fitoconstituyentes según la Marcha Fitoquímica Preliminar de Olga Lock en. Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/. Rodríguez Carril, Karyn Janet.
(30) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Cuadro 2: Fitoconstituyentes determinados en las Hojas y Tallos de Eupathorium triplinerve “Asmachilca” según la Marcha Fitoquímica Preliminar de Olga Lock RESULTADOS. TANINOS. +. FLAVONOIDES. +. ESTEROIDES. +. AMINOÁCIDOS. -. IC. A. FITOCONSTITUYENTES. -. UI M. QUINONAS LEUCOANTOCIANIDINAS. +. O. Q. ALCALOIDES. +. BI. SAPONINAS. -. Y. Leyenda: + : Positivo. BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. AC IA. - : Negativo. Carlos Torres, Juan Eduardo. 18. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(31) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Facultad de Farmacia y Bioquímica. AC IA. Y. BI. O. Q. UI M. IC. A. Universidad Nacional de Trujillo. BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. IV. DISCUSIÓN. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(32) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. En las extracciones que intervienen un material sólido y un solvente, conocido como extracción liquido - sólido, el producto sólido se divide finamente con la finalidad que la superficie de contacto con el solvente a extraer sea la mayor posible. Es así que el solvente orgánico producirá una reducción de las. A. interacciones moleculares que ejercen los grupos funcionales presentes en los. UI M. IC. metabolitos secundarios existentes en la planta (4, 10, 17).. Q. La temperatura es otro factor que va a favorecer la extracción y según la marcha. BI. O. fitoquímica descrita, después de la maceración se procede a realizar reflujo por. Y. 5 horas, con la finalidad de destruir todas las interacciones moleculares que se. AC IA. producen entre los componentes químicos de la planta, de esta manera el solvente tendrá mayor facilidad de extraer todos los metabolitos y producir una mayor. FA RM. extracción. En esta primera etapa deberíamos esperar que el extracto obtenido solo tenga sustancias polares pero la temperatura favorece la extracción de las. DE. sustancias semipolares y no polares puesto que los vapores del solvente arrastran. TE. CA. los principios activos más densos (10).. IO. El primer extracto que se obtiene es un extracto total, donde se ha forzado la. BL. solubilidad de los principios activos en el solvente con la intervención de la. BI. temperatura. Es de suponer aquí que al enfriar la solución, se observará la no solubilidad completa de los metabolitos. Esto porque hay sustancias que no son totalmente solubles en metanol. Carlos Torres, Juan Eduardo. (10). .. 20. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(33) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Luego al agregar el ácido clorhídrico (HCl) 1 % se va a conseguir modificar la solubilidad de algunos metabolitos en el metanol sobre todo aquellos que tiene por lo menos un par de electrones disponibles para donar como lo son los compuestos que contienen nitrógeno, ya que tiene carácter básico (por la facilidad. A. de donar electrones) formándose las sales correspondientes que por ello. IC. aumentarán su polaridad y esto facilitará su solubilidad en metanol o solvente. UI M. polar pero al mismo tiempo aparecerán sustancias que se harán más insolubles en. O. Q. el metanol puesto que se aumentará la polaridad de la solución, por lo tanto se. BI. hará más fácil separar dos fracciones, una que sea la insoluble y la otra soluble. Y. (solución ácida). Estamos ahora frente a sustancias solubles totalmente y otras que. AC IA. son solubles pero gracias a la presencia de del HCl, por lo tanto volvemos a. FA RM. modificar el medio agregando amoniaco (NH3) con lo cual lograremos disminuir la solubilidad de los principios activos frente al solvente regenerando por un lado, los compuestos que tienen carácter básico y al mismo tiempo disminuir su. CA. DE. solubilidad en el metanol, por lo que pasan a ser insolubles o poco solubles (10).. TE. Si ahora tenemos dos fracciones en un solvente polar, uno de mayor solubilidad. IO. que otro, entonces se agregará otro solvente de menor polaridad para conseguir. BL. que éstas dos fracciones de principios activos se separen, los más polares se. BI. solubilizarán en el metanol y los otros se solubilizarán en el cloroformo que es un solvente de baja polaridad (10).. Con ello conseguimos dos fracciones bien definidas, una fracción metanólica y la otra clorofórmica.. Carlos Torres, Juan Eduardo. 21. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(34) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Para purificar la fase orgánica puesto que puede haber arrastrado algunas sustancias polares, se lava con agua y luego se seca o deshidrata con sulfato de amonio anhidro y de esta manera tenemos la fracción con sustancias insolubles en metanol. En la fase polar (metanol o agua) debemos suponer que puede contener. A. sustancias no polares que fueron arrastradas o atrapadas por los otros principios. IC. activos, por lo tanto a esta fase polar (acuosa) le agregamos nuevamente una. UI M. mezcla de solvente con menos polaridad como el etanol - cloroformo para extraer. Q. todo lo insoluble, y de esta manera tenemos la fase acuosa remante o totalmente. AC IA. Del cuadro Nº 1, podemos decir:. Y. BI. O. libre de sustancias no polares o poco polares (10).. La reacción con tricloruro férrico dió positiva, lo que significa que existe la. FA RM. presencia de taninos y metabolitos fenolados, esta reacción señala el carácter fenólico, siendo soluble en agua, álcalis diluidos, alcohol, acetona y glicerina. En. DE. nuestro caso dio una coloración azul negruzca lo que significa que son taninos. TE. CA. hidrolizables (gálico) (10, 17).. IO. La reacción mas usual para la detección de flavonoides es la reacción de Shinoda,. BL. la cual dio positiva, observándose un color rojo. En dicha reacción, el magnesio. BI. metálico es oxidado por el ácido clorhídrico concentrado, dando como productos el H2, que es eliminado en forma de gas y el MgCl2, que es el que forma complejos con los flavonoides dando coloraciones características. El magnesio divalente, actúa sobre el grupo carbonilo de la flavona, produciendo una coloración roja, este aumento de intensidad se debe a que el magnesio divalente. Carlos Torres, Juan Eduardo. 22. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(35) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. intensifica la coloración por estar doblemente coordinado. En los flavonoles el magnesio divalente presenta dos enlaces de coordinación fuertes y dos débiles; los primeros son formados por los oxígenos de los grupos carbonilos y los segundos por los hidroxilos de la posición 3, de esta manera la intensidad aumenta dando. IC. A. como resultado una coloración que va desde el rojo hasta el crimson (7, 8, 12).. UI M. La reacción de Liebermann – Burchard es típica de los esteroides que contienen. O. Q. dos dobles enlaces conjugados en un mismo anillo, en dos anillos adyacentes o un. BI. doble enlace de un anillo adyacente con un grupo hidroxilo. El resultado positivo. Y. en nuestra identificación, se evidenció por la aparición de un color azul verdoso,. AC IA. lo cual indica la presencia de esteroides; la reacción debe realizarse en medio. FA RM. absolutamente anhidro, ya que al existir moléculas de agua presente, éstas reaccionan con el anhídrido acético, anulando de esta manera la reacción con el núcleo esteroidal. El cloroformo, solubiliza a la muestra favoreciendo la captación. DE. de algunas moléculas de agua presentes, y el ácido sulfúrico, favorece la. CA. deficiencia electrónica del anhídrido acético, el cual es estabilizado por los. TE. electrones de los dobles enlaces (dieno) conjugados, dando de esta manera la. BL. IO. coloración respectiva (4, 12, 13, 19).. reacción. BI. La. de. Rosenheim,. específica. para. la. determinación. de. leucoantocianidinas, el resultado fue positivo. En dicha reacción el ácido clorhidrico produce una deshidratación del grupo hidroxilo de la posición 3 de la catequina, que es favorecida por la temperatura, además se produce la ruptura del. Carlos Torres, Juan Eduardo. 23. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(36) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. anillo heterocíclico. El alcohol amílico, es el solvente que extrae la parte deshidratada observándose la coloración respectiva en dicha fase orgánica (12, 19).. En la identificación de saponinas mediante la prueba de espuma, nuestro resultado. A. dio positivo el cual se evidencio mediante la formación de espuma persistentes en. IC. un tiempo mínimo de 30 minutos, dando un resultado positivo en la muestra. Las. UI M. saponinas son un grupo de glicósidos que se disuelven en agua y disminuyen la. Q. tensión superficial de ésta, por lo tanto al agitar sus soluciones se forma una. BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. AC IA. Y. BI. O. espuma abundante y relativamente estable, por ser tensioactivos (11, 16, 17).. Carlos Torres, Juan Eduardo. 24. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(37) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Y. BI. O. Q. UI M. IC. A. Universidad Nacional de Trujillo. AC IA. CONCLUSIONES. BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. V.. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(38) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Del presente trabajo se concluye: 1.. Los fitoconstituyentes determinados en las hojas y tallos de Euphatorium triplinerve “Asmachilca” son: Taninos.. . Flavonoides.. . Esteroides.. . Leucoantocianidinas.. . Saponinas.. Que los efectos terapéuticos de las hojas y tallos de Eupathoirium triplinerve. Y. 2.. BI. O. Q. UI M. IC. A. . AC IA. “Asmachilca” pueden deberse a la presencia de los metabolitos secundarios. BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. identificados por tamizaje fitoquimico preliminar de Olga Lock.. Carlos Torres, Juan Eduardo. 26. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(39) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Facultad de Farmacia y Bioquímica. AC IA. Y. BI. O. Q. UI M. IC. A. Universidad Nacional de Trujillo. BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. VI. SUGERENCIAS. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(40) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. En base a los resultados del presente trabajo de investigación científica, sugerimos:. . Que futuras investigaciones determinen la cantidad de principio activo. A. presente por gramo de peso seco de hojas y tallos de esta planta, para así. La determinación de las estructuras químicas de los metabolitos. O. Q. . UI M. IC. dosificar y utilizar científicamente esta especie de la medicina tradicional.. BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. AC IA. Y. BI. encontrados.. Carlos Torres, Juan Eduardo. 28. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(41) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Facultad de Farmacia y Bioquímica. AC IA. Y. BI. O. Q. UI M. IC. A. Universidad Nacional de Trujillo. BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. VII. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(42) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. 1.. Facultad de Farmacia y Bioquímica. ANGULO, H.: “La Medicina Tradicional en el Desarrollo de Fitomedicamentos”. 1ra ed. Ed. De Mar. Perú. 1997 pp: 3 – 4.. 2.. ANGULO, P. y CASTILLO Z.:. “Método. Farmacológicos. en. la. Investigación de Productos Vegetales”. 1ra ed. Ed. CONCYTEC. 1990.. ARIANSEN, J.: “Industrialización de Plantas Medicinales”. Tomo I.. IC. 3.. A. Perú. pp: 11 – 13.. UI M. Universidad de Lima – Facultad de Ingeniería Industrial. Perú. 1993.. Q. pp: 238 y 239.. “Introducción a la Química Farmacéutica” 2da ed.. O. AVENDAÑO, C.:. BI. 4.. Y. Ed. Mc Graw Hill. España. 2001. pp: 850. BENNINSON, J.:. “Remedios Caseros Naturales”. 1ra ed. Ed. Ramos -. AC IA. 5.. 6.. BRUNENTON, J.: “Elementos de Fitoquímica y Farmacognosia” 1ra ed.. Ed. Acribia S.A. España. 1991. pp: 157 – 420.. BURN, R.: “Fundamentos de Química”. 1° ed. Ed. Prentice – Hall. DE. 7.. FA RM. Majos. España. 1981. pp: 13.. CA. Hispanoamericana. México. 1996. pp: 80 – 92. CHANG, R.: “Química”. 6ta ed. Ed. Mc Graw – Hill. 1999. pp: 340.. 9.. CLAUS, E.: “Farmacognosia”. 6° ed. Ed. El Ateneo. pp: 135, 136, 238,. IO. TE. 8.. BL. 241.. DOMÍNGUEZ, A.: “Método en Investigación Fitoquímica”. 1ra ed.. BI 10.. Ed. Limusa. México. 1979. pp: 11, 257, 258. 11.. DOMÍNGUEZ, A.: “Experimento de Química Orgánica”. 1ra ed. Ed. Limusa. México. 1984. pp: 41 - 57.. Carlos Torres, Juan Eduardo. 30. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(43) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. 12.. Facultad de Farmacia y Bioquímica. GANOZA, M.: “Fundamentación química de las reacciones de coloración y precipitación en la identificación de metabolitos secundarios de plantas medicinales”. Tesis. Perú. 2001. pp: 8 – 10.. 13.. GENARO, A.: “Farmacia Práctica de Rémington”. 19ava. ed. Ed. Media. IC. IZCO, J.: “Botánica”. 1ra ed. Ed. Mc Graw – Hill nteramericana. España. 1998. pp: 97 – 99. INSTITUTO. PERUANO. DE. INVESTIGACIÓN. Q. 15.. UI M. 14.. A. Panamericana. Argentina. 1998. pp: 779, 795 y 811.. O. “Uso. Plantas. Perú. 1991. pp: 7, 8 y 83.. Y. Medicinales en Asma Bronquial”.. de. BI. FITOTERAPÉUTICA ANDINA (IPIFA):. KUKLINSKI, C.: “Farmacognosia”. 1ra. ed. Ed. Omega. España. 2000.. AC IA. 16.. 17.. FA RM. pp: 3, 14, 33, 39.. LOCK, O.: “Investigación Fitoquímica”. 2da ed. Ed. Pontificia Universidad Católica del Perú. 1994. Perú. pp: 1 – 3, 21, 58 – 69, 90 –. DE. 103.. MIRANDA, I.: “Taxonomia Vegetal”. 1ra. ed. Trujillo. pp: 33.. 19.. MORRINSON, R.: “Química Orgánica”. 5ta ed. Ed. Addison Wesley. TE. CA. 18.. MUÑOZ, F.: “Plantas Medicinales y Aromáticas”. 1ra ed. Ed. Mundi. BL. 20.. IO. Iberoamericana. Estados Unidos. 1990.. BI. Prensa. España. 2000. pp: 15 – 21.. 21.. PRIHODA, A.: “Plantas y Salud” 1ra ed. Ed. Susaeta. España. 1990 pp: 7 y 8.. Carlos Torres, Juan Eduardo. 31. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(44) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. 22.. Facultad de Farmacia y Bioquímica. SAGRERA, J.: “Plantas Medicinales”. 1ra ed. Ed. Lerner. Colombia. 1991. pp: 7 – 10.. 23.. THOMSON, W.: “Las Plantas Medicinales”. 1ra ed. Ed. Blume. España. 1981. pp: 7, 11, 46, 165.. Ed. Continental. México, 1986. pp: 3, 4, 88, 401, 402.. VILLAR, A.: “Farmacognosia General”. 1ra ed. Ed. Síntesis. España.. UI M. 25.. A. TREASE G. y EVANS W.: “Tratado de Farmacognosia”. 12da ed.. IC. 24.. Q. 1999. pp: 251.. O. VILLAR, A. y VILLAVICENCIO, O.: “Manual de Fitoterapia”. 1ra ed.. BI. 26.. Y. Perú. 2001. pp: 125, 126. REVISTA. FARMACÉUTICA: “Catálogo de Plantas Medicinales”.. AC IA. 27.. 28.. FA RM. Marzo. 2005. URL. http://portalfarma.com/pfarma/taxonomia/general REVISTA FITOCIENCIA: “Plantas Medicinales”. Febrero. 2004. <http://www.plantasmedicinales.org/farmacognosia/tecnicas.htm>. BI. BL. IO. TE. CA. DE. [consultado: Febrero del 2007]. Carlos Torres, Juan Eduardo. 32. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(45) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Facultad de Farmacia y Bioquímica. BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. AC IA. Y. BI. O. Q. UI M. IC. A. Universidad Nacional de Trujillo. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(46) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. ANEXO Nº 1 1.. ESTUDIO BOTÁNICO DE LA ESPECIE 1.1.. Clasificación sistémica: Eupathorium triplinerve :. Angiosperma. Clase. :. Dicotiledónea. Orden. :. Campanulales. Familia. :. Asteraceae (compositae). Género. :. Eupathorium. Especie. :. E. triplinerve. Sinonimia vulgar:. FA RM. 1.2.. AC IA. Y. BI. O. Q. UI M. IC. A. División. “Asmachilca”. Características Morfológicas:. DE. 1.3.. CA. Esta planta es una compuesta de la subfamilia Tubiliflora. Las. TE. compuestas de esta subfamilia tienen corolas regulares, con cinco. BI. BL. IO. dientes o lóbulos, o bien son tubulosas y regulares las del centro o del llamado botón central, y en forma de lengüesitas de tres dientes en la periferie. Carecen de látex pero a menudo tiene esencias.. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(47) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. 1.4.. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Distribución Geográfica: Se ubica en la vertiente occidental de los andes y valles interandinas entre los 3600 – 4000 m.s.n.m. en los departamentos Cuzco, Puno,. Usos:. UI M. 1.5.. IC. A. Apurímac y Ayacucho.. O. Q. Se conoce como estimulante de la función hepática y diurética.. BI. Eupathorium se recomienda en problemas dérmicos, cuadros de. BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. AC IA. Y. asma bronquial, broncodilatador, expectorante y antioxidante.. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(48) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. ANEXO Nº 2 1.. DETERMINACION DE PARAMETROS DE CALIDAD DE HOJAS Y TALLOS DE LA ESPECIE Eupathorium triplinerve “Asmachilca”, METODO FÌSICO – QUIMICO DE ANALISIS:. A. Se determinó los parámetros de control de calidad que son: materias. IC. extrañas, humedad, cenizas totales, cenizas ácido – insolubles, cenizas. UI M. solubles en agua, sustancias extraíbles en etanol al 70 %, determinación. O. Q. microbiológica.. DETERMINACION DE MATERIAS EXTRAÑAS:. BI. 1.1.. Y. Para esta determinación se utilizó 100 g, los cuales se esparcieron. AC IA. sobre el papel y se separaron las materias extrañas manualmente. Se. FA RM. pesó el material separado en balanza técnica y se determinó su porcentaje en base al peso de la muestra ensayo.. DETERMINACIÓN MICROBIOLÓGICA: Disolución de la muestra:. CA. A.. DE. 1.2.. BI. BL. IO. TE. A 100 g de hoja, se trituró con el mortero. Luego se tomó 10 g de este triturado y se diluyó en un matraz con 90 ml de solución salina peptonada, obteniéndose una dilución 10-1 y de. esta dilución se tomó 1 ml y se le agregó a otro tubo que contenga también 9 ml de solución salina peptonada, obteniéndose una dilución 10-2.. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(49) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. B.. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Microorganismos Aerobios Mesófilos viables: Las diluciones 10-1 y 10-2, se sembraron en agar nutritivo y luego se llevaron a incubación durante 24 horas a 37 ºC y luego contamos el número de colonias crecidas. Recuento de E. coli:. A. C.. IC. Las diluciones 10-1 y 10-2, se sembraron en Agar Mc Conkey,. UI M. luego se llevaron a incubación durante 24 a 48 horas a 37 ºC,. O. Q. contamos el número de colonias crecidas. Luego se procedió a. BI. realizar la diferenciación bioquímica e identificación de E. coli,. Y. para ello se repicó a partir de las colonias crecidas en: agar. D.. FA RM. Simmons.. AC IA. SIM, agar TSI, agar LIA, agar urea, agar citrato según. Diferenciación Bioquímica: Sembramos por puntura y estrías en los agares utilizados en el. Determinación de hongos.. CA. E.. DE. paso anterior y luego se incubó a 37 ºC por 24 horas.. BI. BL. IO. TE. Las diluciones 10-1 y 10-2, se sembraron en agar Sabouraud a. F.. temperatura ambiente por 7 días y luego contamos el número de colonias crecidas. Cálculos de la cantidad de microorganismos: Se procedió a contar el número de colonias formadas en el medio de dilución de 10-2, luego a ese número se le multiplicó. por 100 y se le representó en ufc/g.. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(50) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. 1.3.. Facultad de Farmacia y Bioquímica. DETERMINACION DE LA HUMEDAD RESIDUAL: Para esta determinación se empleó el método por desecación partiendo de 2 g de droga, se transfiere a una cápsula previamente tarada y desecada a 105 ºC durante 3 horas. La cápsula se colocó en. A. una desecadora, donde se dejó enfriar a temperatura ambiente y se. O. Q. UI M. volviéndose a pesar hasta alcanzar peso constante.. IC. pesó, colocándose nuevamente en la estufa durante una hora,. DETERMINACIÓN DE SUSTANCIAS SOLUBLES:. BI. 1.4.. Y. Se basa en la extracción de las sustancias solubles en etanol 70 º, en. AC IA. la cual se utilizó 5 g de muestra ensayo previamente pulverizada y. FA RM. tamizada, la cual se transfirió a un matraz de 250 ml; se añadió 100 ml de menstruo, se tapó durante 6 h, se dejó en reposo hasta el día siguiente: se agitó por 30 min.; se dejó en reposo media hora más y. DE. se filtró en papel. Se tomó una alícuota de 20 ml que se transfirió a. CA. una cápsula tarada. Se evaporó sobre baño de agua, se desecó en. TE. estufa a 105 ºC durante 3h, se enfrió y se pesó. Se realiza los cálculos. BI. BL. IO. expresados en porcentaje.. 1.5.. DETERMINACIÑON DE CENIZAS TOTALES: Se utilizó un horno mufla “FURNACE 1300” y una balanza analítica “OHAUS – GA 200”. Se empleó 2.5 g de droga triturada, exactamente pesada, en un crisol de porcelana previamente. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(51) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. calibrado. Se calibró suavemente la porción de ensayo aumentando la temperatura hasta que se carbonizó en una cocina y posteriormente se incineró en un horno mufla a una temperatura de 750 ºC durante 2 horas y media. Se enfrió en una desecadora y se pesó, repitiéndose el. A. proceso hasta que en dos pesadas sucesivas no defirió en mas de 0.5. IC. mg. Para obtener la masa constante los intervalos entre calentamiento. DETERMINACIÑON. DE. CENIZAS. SOLUBLES. EN. BI. 1.6.. O. Q. UI M. y pesado fueron de 30 min. Al enfriar el residuo fue de color blanco.. Y. AGUA:. AC IA. A las cenizas totales obtenidas, se le añadieron 15 a 20 ml de agua.. FA RM. El crisol se tapó y se hirvió suavemente a la llama de una cocina durante 5 minutos. La solución se filtró a través de papel filtro libre de cenizas. El filtro con el residuo se transfirieron al crisol inicial, se. DE. carbonizó en una cocina y luego se incineró en un horno mufla de. CA. 700 – 750 ºC durante 2 horas. Posteriormente se colocó en un. TE. desecador y al alcanzar la temperatura ambiente se pesó. Se repitió el. BI. BL. IO. procedimiento hasta alcanzar el peso constante.. 1.7.. DETERMINACIÑON. DE. CENIZAS. INSOLUBLES. EN. ÁCIDO CLORHÍDRICO: A las cenizas totales obtenida, se le añadieron 2 – 3 ml de ácido clorhídrico al 10 %. El crisol se tapó con un vidrio reloj y se calentó. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(52) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. sobre baño de agua hirviendo durante 10 minutos. Se lavó el vidrio de reloj con 5 ml de agua caliente y se vertió al contenido del crisol. La solución se filtró a través de papel filtro libre de cenizas, se lavó el residuo con agua caliente hasta que el filtrado acidulado con ácido. A. nítrico p.a; la cual se le añadiò I o II gotas de solución de nitrato de. IC. plata a 0.1 mol/L, no muestre presencia de cloruros. El filtro con el. UI M. residuo se desecó en estufa 100 – 105 ºC, el cual se transfirió al. O. Q. crisol inicial y se incineró en un horno mufla de 700 – 750 ºC. BI. durante 2 horas. Posteriormente se colocó en un desecador y cuando. Y. alcanzó la temperatura ambiente se pesó. Se repitió el procedimiento. BI. BL. IO. TE. CA. DE. FA RM. AC IA. hasta alcanzar el peso constante.. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(53) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. ANEXO Nº 3 CALCULOS 1.. DETERMINACION DEL SECADO: 1.1.. PERDIDA DE PESO: ESTUFA:. A. A.. IC. Se tomaron 4 muestras de 50 g cada una y se le sometió al análisis. UI M. de secado en una estufa a 40 ºC.. O. Q. Nº de Muestra. BI. 1. 19.5 19.9. Y. 2. Peso. Entonces:. 20.1. FA RM. 4. 20.4. AC IA. 3. DE. M1 = 50 g – 19.5 g = 30.5 g = 61.0 %. CA. M2 = 50 g – 19.9 g = 30.1 g = 60.2 %. M4 = 50 g – 20.1 g = 29.9 g = 59.8 %. BI. BL. IO. TE. M3 = 50 g – 20.4 g = 29.6 g = 59.2 %. Calculando el promedio: X = (61 + 60.2 + 59.2 + 59.8) / 4 X = 60.05 %. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(54) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Determinar la desviación estándar:. n x i n i 1 2 xi N i 1 N. IC. A. σ=. 2. Q. Calculando la desviación estándar:. UI M. σ = 0.4123. SOMBRA:. AC IA. B.. Y. BI. O. CV = 0.69 %. Se tomaron 4 muestras de 50 g cada una y se le sometió al análisis. FA RM. de secado a la sombra.. Peso. 1. 22.1. 2. 20.5. 3. 23.7. 4. 22.5. BI. BL. IO. TE. CA. DE. Nº de Muestra. Entonces: M1 = 50 g – 22.1 g = 27.9 g = 55.8 % M2 = 50 g – 20.5 g = 29.5 g = 59.0 % M3 = 50 g – 23.7 g = 26.3 g = 52.6 % M4 = 50 g – 22.5 g = 27.5 g = 55.0 %. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(55) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Calculando el promedio: X = (55.8 + 59 + 52.6 + 55) / 4. A. X = 55.6 %. UI M Q. O. 2. BI. σ=. n x i n i 1 x i2 N i 1 N. IC. Determinar la desviación estándar:. AC IA. Y. σ = 0.71 Calculando la desviación estándar:. DETERMINACIÓN DE HUMEDAD RESIDUAL: Hg . CA. DE. 2.. FA RM. CV = 0.013 %. (M 2 M1 ) x100 M2 M. TE. Leyenda:. BL. IO. Hg = Pérdida de peso por desecación (%). BI. M2 = Masa de la cápsula con la muestra de ensayo (g) M1 = Masa de la cápsula con la muestra de ensayo desecada (g) M = masa de la cápsula vacía (g) 100 = factor matemático. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
(56) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Reemplazando en fórmula: Hg . (19.1 18.7) x100 19.1 16.3. P. IC. DETERMINACION DE MATERIAS EXTRAÑAS: X (100) M. UI M. 3.. A. Hg = 14.29 %. O. Q. Leyenda:. BI. P = porcentaje de materia extraña según su clasificación. AC IA. Y. X = Peso de la materia extraña. M = Peso inicial de la droga.. Determinación de materia extraña inorgánica: Donde:. DE. X = 0.9 g. FA RM. 3.1.. M = 100 g. BL. IO. TE. CA. Reemplazando en fórmula:. BI. 3.2.. P. 0.9(100) 100. P = 0.9 % Determinación de materia extraña orgánica: Donde: X = 0.002 g M = 100 g. Carlos Torres, Juan Eduardo. Rodríguez Carril, Karyn Janet. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.
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