Efecto de las micotoxinas sobre los parámetros productivos y hematológicos en pollos de engorde de la línea cobb 500

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(1)Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO. PE CU AR IA S. FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS. RO. ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE ZOOTECNIA. TESIS PARA OPTAR EL TITULO PROFESIONAL. AG. DE INGENIERO ZOOTECNISTA. DE. EFECTO DE LAS MICOTOXINAS SOBRE LOS PARÁMETROS PRODUCTIVOS Y HEMATOLÓGICOS. AUTOR. :. Br. Luján Revilla, César Orlando. IO. TE. CA. EN POLLOS DE ENGORDE DE LA LÍNEA COBB 500. :. Dr. Gilmar Mendoza Ordoñez. BI BL. ASESOR. Trujillo – Perú 2015. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(2) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. JURADO DICTAMINADOR. ____________________________. DE. AG. RO. PRESIDENTE. ____________________________. VOCAL. BI BL. IO. TE. CA. SECRETARIO. ____________________________. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(3) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. DEDICATORIA. PE CU AR IA S. A DIOS A mi padre celestial, porque sin él no sería posible que haya terminado este trabajo.. A MIS PADRES. Juan y Luz, por ser siempre mi apoyo para poder llegar a esta instancia de mis estudios, ya que ellos siempre han estado presentes para apoyarme moral y psicológicamente, así como su paciencia y ejemplos de superación.. RO. A MIS ABUELOS. Papá Juan y Mamá Dona, por darme ese aire de coraje frente a cualquier adversidad y sentir. AG. su apoyo así como sus buenos momentos de compañía. Y también a mis dos angelitos que tengo en el cielo, Juan y Lastenia, que sé que siempre me iluminan en todo momento para. DE. poder llevar adelante todo lo que me proponga.. CA. A MI LINDA HERMANITA. Carolina, por su especial apoyo, dándome alegría en cada momento con sus bromas y excelente compañía, haciéndome sentir su apoyo y comprensión en momentos difíciles. Te. IO. TE. quiero mucho.. BI BL. A TI. Mi Yeniree, por ser el pilar que me ha sostenido durante todo el tiempo que hemos pasado juntos, a base de sacrificio, comprensión y momentos inolvidables, sin ti nada hubiese sido posible, también esto es para ti, por ser todo mi mundo… Te Amo.. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(4) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. AGRADECIMIENTO. A DIOS:. Primeramente por ser nuestra guía y ser el ejemplo de amor más grande de este mundo.. A MI ASESOR:. Dr. Gilmar Mendoza Ordoñez, por sus consejos, apoyo y dedicación en mi trabajo. RO. de investigación.. AG. A LOS DOCENTES DE LA E.A.P. DE ZOOTECNIA:. Por sus sabios consejos, por apoyarnos a seguir adelante, siendo buenos ciudadanos. DE. y profesionales.. A LA EMPRESA AGROPECUARIA JERUSALEN EIRL.:. CA. Al Sr. Juan Orbegoso Ayala; por brindarme sus instalaciones y poder realizar las. BI BL. IO. TE. actividades que fueron necesarias para la realización de este trabajo de investigación.. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(5) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. INDICE GENERAL. PE CU AR IA S. Tabla de contenidos JURADO DICTAMINADOR. i. DEDICATORIA. ii. AGRADECIMIENTO I.. iii. INTRODUCCION. 1. II. MATERIAL Y METODOS. 8. 2.1 Lugar de la Investigación 2.2 Material de Estudio 2.2.1 Material Biológico. RO. 2.2.2 Material de Campo 2.2.3 Material de Oficina. 2.4 Diseño Experimental. AG. 2.3 Tamaño de Muestra. 2.5 Tratamientos Experimentales. DE. 2.5.1 Tratamiento 0 (T0). 8 8 8. 8 9 9. 10 10 10. 2.5.2 Tratamiento 1 (T1). 11. 2.5.3 Tratamiento 2 (T2). 11. CA. 2.6 Procedimiento. 12 12. 2.6.2 Implementación de la infraestructura y equipamientos utilizados. 12. 2.6.3 Obtención del alimento contaminado. 13. 2.6.4 Determinación de los parámetros hematológicos. 14. TE. 2.6.1 Criterio de inclusión de las aves. 14. 2.8 Datos registrados. 15. IO. 2.7 Alimentación. 15. 2.8.2 Parámetros productivos. 16. BI BL. 2.8.1 Variables de la investigación. a) Ganancia de peso vivo total. 16. b) Consumo de alimento. 16. c) Índice de conversión alimenticia (ICA). 16. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(6) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. d) Porcentaje de mortalidad. 16. e) Índice de eficiencia productiva (IEP). 16. 2.8.3 Parámetros hematológicos. 17 17. b) Leucograma. PE CU AR IA S. a) Eritrograma. 17. 2.9 Análisis estadístico. 17. III. RESULTADOS. 18. 3.1 Parámetros Productivos. 18. 3.1.1 Ganancia de Peso Vivo Total 3.1.2 Consumo de Alimento Total. 18 20. 3.1.3 Índice de Conversión Alimenticia (ICA). 22. 3.1.4 Porcentaje de Mortalidad. 24. 3.2 Parámetros Hematológicos. a) Hemoglobina b) Hematocrito. DE. c) Eritrocitos. AG. 3.2.1 Eritrograma. RO. 3.1.5 Índice de Eficiencia Productiva (IEP). 25 27 27 28 29 30 32. e) Promedio de Volumen Corpuscular (PVC). 33. f) Promedio de Concentración de la Hemoglobina (PCHC). 34. CA. d) Promedio de Hemoglobina Corpuscular (PHC). 3.2.2 Leucograma. 36 37. b) Linfocitos. 38. c) Heterófilos. 39. d) Monocitos. 40. IO. TE. a) Recuento de Leucocitos. BI BL. IV. DISCUSION 4.1 Parámetros productivos. 42 42. 4.1.1 Ganancia de peso total. 42. 4.1.2 Consumo de alimento total. 42. 4.1.3 Índice de conversión alimenticia (ICA). 43. 4.1.4 Porcentaje de mortalidad. 43. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(7) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. 4.1.5 Índice de eficiencia productiva (IEP). 43. 4.2 Parámetros hematológicos 4.2.1 Eritrograma. 44. 4.2.2 Leucograma. 45. CONCLUSIONES. PE CU AR IA S. V.. 44. 46. VI. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS. BI BL. IO. TE. CA. DE. AG. RO. ANEXOS. 47. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(8) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. ÍNDICE DE TABLAS 10. Tabla 2. Alimento por periodo de crecimiento del tratamiento 1. 11. PE CU AR IA S. Tabla 1. Alimento por periodo de crecimiento del tratamiento 0. 11. Tabla 4. Distribución de los pollos de engorde por tratamiento. 12. Tabla 5. Programa de iluminación y oscuridad según edad en días. 13. Tabla 6. Valores nutritivos en dietas de inicio y crecimiento para pollos de engorde. 15. Tabla 7. Ganancia de peso total de los pollos por tratamiento. 18. Tabla 8. Desviación estándar y promedio de la ganancia de peso total de los pollos. 19. Tabla 9. Análisis de varianza de la ganancia de peso total de los pollos. 19. Tabla 10. Prueba de Duncan de los promedios de la ganancia de peso por tratamiento. 20. Tabla 11. Consumo de alimento semanal y total por tratamiento. 20. Tabla 12. Análisis de varianza del consumo total de alimento. 21. Tabla 13. Conversión alimenticia total de pollos por tratamiento. 22. Tabla 14. Análisis de varianza de la conversión alimenticia total. 23 23. Tabla 16. Porcentaje de mortalidad de los pollos por tratamiento. 24. Tabla 17. Pruebas de Chi-cuadrado para el porcentaje de mortalidad. 25. Tabla 18. Índice de Eficiencia Productiva por tratamiento. 26. Tabla 19. Valores de Eritrograma de los pollos por tratamiento. 27. Tabla 20. Desviación estándar y promedio de los valores de hemoglobina de los pollos. 28. CA. Tabla 15. Prueba de Duncan de las medias de conversión alimenticia por tratamiento. DE. AG. RO. Tabla 3. Alimento por periodo de crecimiento del tratamiento 2. 28. Tabla 22. Prueba de Tukey para los valores de hemoglobina entre tratamientos. 29. Tabla 23. Desviación estándar y promedio para los valores de hematocrito. 29. Tabla 24. Análisis de varianza para los valores de hematocrito. 30. Tabla 25. Desviación estándar y promedio de los valores de eritrocitos. 30. Tabla 26. Análisis de varianza para los valores de eritrocitos. 31. Tabla 27. Prueba de Tukey para los valores de eritrocitos entre tratamientos. 31. Tabla 28. Desviación estándar y promedio de los valores de PHC. 32. Tabla 29. Análisis de varianza para PHC entre tratamientos. 32. Tabla 30. Prueba de Tukey para los valores de PHC entre tratamientos. 33. Tabla 31. Desviación estándar y promedio de los valores de PVC. 33. BI BL. IO. TE. Tabla 21. Análisis de varianza para los valores de hemoglobina. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(9) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. 34. Tabla 33. Prueba de Tukey para los valores de PVC entre tratamientos. 34. Tabla 34. Desviación estándar y promedio de los valores de PCHC. 35. Tabla 35. Análisis de varianza para PCHC entre tratamientos. 35. Tabla 36. Prueba de Tukey para los valores de PCHC entre tratamientos. 35. Tabla 37. Valores de Leucograma de los pollos por tratamiento. 36. Tabla 38. Desviación estándar y promedio para los valores de Recuento de leucocitos. 37. Tabla 39. Análisis de varianza para los valores de Recuento de leucocitos. 37. Tabla 40. Desviación estándar y promedio de los valores de linfocitos. 38. Tabla 41. Análisis de varianza para linfocitos entre tratamientos. 38. Tabla 42. Prueba de Tukey para los valores de linfocitos entre tratamientos. 39. Tabla 43. Desviación estándar y promedio de los valores de heterófilos. 39. Tabla 44. Análisis de varianza para heterófilos entre tratamientos. 40. RO. PE CU AR IA S. Tabla 32. Análisis de varianza para PVC entre tratamientos. 40. Tabla 46. Desviación estándar y promedio de los valores de monocitos. 41. Tabla 47. Análisis de varianza para monocitos entre tratamientos. 41. Tabla 48. Prueba de Tukey para los valores de monocitos entre tratamientos. 41. BI BL. IO. TE. CA. DE. AG. Tabla 45. Prueba de Tukey para los valores de heterófilos entre tratamientos. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(10) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. ÍNDICE DE FIGURAS 18. Figura 2. Consumo de alimento total de los pollos por tratamiento.. 21. Figura 3. Índice de conversión alimenticia de los pollos por tratamiento.. 22. Figura 4. Porcentaje de mortalidad de los pollos por tratamiento.. 24. Figura 5. Indice de eficiencia productiva de los pollos por tratamiento.. 26. Figura 6. Valores de eritrograma de los pollos por tratamiento.. 27. Figura 7. Valores de Leucograma de los pollos por tratamiento.. 36. BI BL. IO. TE. CA. DE. AG. RO. PE CU AR IA S. Figura 1. Ganancia de peso total de los pollos por tratamiento.. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(11) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. INDICE DE ANEXOS 51. Foto 2. Ambiente adecuado para la recepción de pollo BB.. 52. Foto 3. Pollos BB a los 12 días de edad.. 53. Foto 4. Crianza de pollos a los 28 días de edad.. PE CU AR IA S. Foto 1. Instalación de infraestructura para recepción de pollo BB.. 53 54. Foto 6. Sacos de pajilla de arroz utilizado para cama de los pollos BB.. 54. Foto 7. Alimento concentrado dividido con dos niveles de micotoxinas y un testigo.. 55. Foto 8. Extracción de sangre vía punción alar (28 días de edad).. 55. RO. Foto 5. Maíz en proceso de producción de micotoxinas.. 56. Foto 10. Hígado graso en tratamiento con 150 – 300 ug/kg de micotoxinas (T2).. 56. AG. Foto 9. Características patológicas en (T2) con presencia de micotoxinas en hígado.. 57. Foto 12. Hígado afectado con micotoxinas del tratamiento con 50 – 100 ug/kg (T1).. 57. BI BL. IO. TE. CA. DE. Foto 11. Molleja afectada con micotoxinas del tratamiento con 50 – 100 ug/kg (T1).. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(12) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. RESUMEN La presente investigación se realizó con el objetivo de evaluar los efectos de las micotoxinas. PE CU AR IA S. sobre los parámetros productivos y hematológicos de pollos de engorde línea Cobb 500. Se utilizaron 108 pollos distribuidos en tres tratamientos, bajo un diseño completamente al azar. Los tratamientos fueron: T0: concentrado de inicio y crecimiento sin micotoxinas, T1: concentrado de inicio y crecimiento con niveles de 50–100 ug/kg (ppb) de micotoxinas, y T2: concentrado de inicio y crecimiento con niveles de 150–300 ug/kg (ppb) de micotoxinas. Los parámetros productivos evaluados fueron: Ganancia de peso total, consumo de alimento total (CA), índice de conversión alimenticia (ICA), porcentaje de mortalidad (PM), índice de eficiencia productiva (IEP) y los parámetros hematológicos: Eritrograma y Leucograma. Se utilizaron ANVA y pruebas estadísticas. T0 obtuvo mayor ganancia de peso con 1,6 kg en comparación de T1 con 1,1 kg y T2 con 0,9 kg, (p<0,05). En el CA, el mayor valor lo obtuvo. RO. T0 con 2,8 kg seguido de T2 con 2,6 kg y T1 con 2,5 kg, (p>0,05); los valores del ICA fueron de 1,7 para T0; 2,1 para T1 y 2,4 para T2 (p<0,05). Para el porcentaje de mortalidad T2 obtuvo. AG. el mayor valor con 8,3 %, T1 con 5,6% y T0 con 0% (p>0,05); el IEP fue de -37,6% y de 57,2% para T1 y T2 respectivamente, menos que T0. En los parámetros hematológicos; los tratamientos con micotoxinas tuvieron una reducción altamente significativa de sus valores de. DE. hemoglobina, hematocrito y eritrocitos (p<0,01). El leucograma, los valores de linfocitos, heterófilos y monocitos tuvieron una reducción altamente significativa entre tratamientos T1 y T2 (p<0,01), y un aumento en el recuento de leucocitos para los tratamientos con. CA. micotoxinas. Se concluye, que la adición de niveles a partir de 50 ug/kg de micotoxinas en dietas para pollos de engorde, afecta significativamente en un 57% a los parámetros. TE. productivos y hematológicos, determinando efectos característicos de un cuadro de anemia.. IO. Palabras claves: Micotoxinas, parámetros productivos, parámetros hematológicos, pollos de. BI BL. engorde.. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(13) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. S. ABSTRACT This research was conducted with the objective of evaluating the effects of mycotoxins on. RI A. growth and haematological parameters Cobb broilers line 500 108 chickens divided into three. treatments, under a completely randomized design they were used. The treatments were: T0: Start concentrated and growth without mycotoxins, T1: concentrate starter and grower levels. PE CU A. of 50-100 ug / kg (ppb) of mycotoxins, and T2: Concentrated starter and grower levels 150300 ug / kg (ppb) mycotoxin. The production parameters evaluated were: total weight gain, total food consumption (CA), feed conversion ratio (ICA), mortality rate (PM), productive efficiency index (IEP) and haematological parameters: Erythrogram and Leucogram. The relevant design ANVA and statistics tests were used. T0 obtained greater weight gain 1.6 kg compared with 1.1 kg of T1 and T2 with 0.9 kg (p <0.05). In the CA, the largest value is. AG RO. obtained with 2.8 kg followed T0 T2 T1 2.6 kg and 2.5 kg (p> 0.05); ICA values were 1.7 for T0; 2.1 to 2.4 for T1 and T2 (p <0.05). For the mortality rate T2 obtained the highest value at 8.3%, 5.6% and T1 T0 to 0% (p> 0.05); IEP was -37.6% -57.2% and for T1 and T2 respectively, unless T0. In hematological parameters; mycotoxins treatments had a highly significant reduction of hemoglobin, hematocrit, and red blood cells (p <0.01). The. DE. leukogram, the values of lymphocytes, monocytes heterophils and had a highly significant reduction between T1 and T2 (p <0.01), treatment and increased leukocyte count for treatments with mycotoxins. It is concluded that the addition of levels from 50 ug / kg of. CA. mycotoxins in broiler diets, significantly affect in a 57% production parameters and hematological parameters, determining a characteristic effects of anemia.. BI. BL. IO. TE. Keywords: Mycotoxin, production parameters, hematological parameters, broilers.. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(14) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. INTRODUCCIÓN. S. I.. RI A. Las micotoxinas son metabolitos secundarios producidos por hongos superiores.. Los síndromes tóxicos causados por la ingestión de toxinas varían ampliamente dependiendo del tipo de los niveles de toxinas y de exposición, ya que la reducción. PE CU A. en la productividad hasta el aumento de mortalidad. En las aves, la Aflatoxina B1 perjudica el rendimiento y la producción, causa humoral y la deficiencia inmunitaria celular, afectando el mecanismo de la coagulación, son hepatotoxicos y hepatocarcinogenicas. La cosecha del maíz del 2009 de los condados localizados en la parte sur y central de Texas, en Estados Unidos, presentaron contaminación con aflatoxinas con niveles de 20 a 938 partes por billón (ppb) y de fumonisinas. AG RO. de 0.2 a 3.7 partes por millón (ppm) (Watkins, 2009). Un reporte más reciente indica que en otros estados diferentes a Texas, las cosechas de maíz y de granos en general vienen contaminadas con fumonisinas, vomitoxina y zearalenona, esto por las heladas, granizo, frío y lluvias durante el 2009 (Cima, G., 2010) Aspergillus es un moho que fundamentalmente pertenece a la flora de. DE. almacenamiento. En general, la temperatura mínima necesaria para desarrollarse y producir micotoxinas es de 10-12ºC. Aspergillus crece y puede producir micotoxinas de una forma óptima a 25ºC, se ha comprobado que concentraciones. CA. bajas de aflatoxinas en las dietas de ponedoras lesionan los riñones, tanto a la filtración glomerular como a la reabsorción de calcio, sodio y fósforo aumentando. TE. su excreción (Martínez-de-Anda et al, 2010). Se han identificado cientos de micotoxinas y de todas ellas la primera descubierta. IO. sigue siendo considerada como de las más importantes, las aflatoxinas, esto por ser carcinogénicas, inmunotóxicas, embriotóxicas, hepatotóxicas y mutagénicas.. BL. Las aflatoxinas además de inhibir la síntesis de proteína pueden aumentar el tiempo de coagulación por sus propiedades de compuesto difuranocumarínico. Es decir. BI. concentraciones bajas en el alimento suministradas de manera permanente y diaria tienen la propiedad de acumularse en el organismo animal resultando a veces más nociva que una sola dosis alta por vía oral (Whitlow, 2010). 1. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(15) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Los resultados de la Micotoxicosis en pollos alimentados con dietas que contenían. S. 450 y 525 mg / kg FB1 (Fumonisina) provoca el aumento de la mortalidad,. RI A. disminución del recuento de glóbulos, baja la producción de huevo, disminución del consumo de alimento, afecta la resistencia a las enfermedades infecciosas,. reduce la eficiencia de la vacunación e induce daño patológico para el hígado y. PE CU A. otros órganos (Kamalavenkatesh et al., 2011). Tanto dosis más bajas y más altas de micotoxinas afectan los parámetros hematológicos en pavos hembra, los efectos de la administración de 300 mg AFB1 (aflatoxina) / kg en dieta, ha notado un aumento en el número de células rojas de la sangre. Resultando en una inmunidad celular deprimida debido a la supresión. AG RO. de la actividad fagocítica de micrófagos y disminución de los linfocitos, (Celik et al. 2010). Niveles de 0, 50 y 200 ppb de aflatoxina en la dieta de pollos de engorde ha demostrado que desempeñan un efecto inmunosupresor directo sobre el inmune mediada por células (CMI) mediante una disminución en el número de células blancas de la sangre, y la disminución de recuentos de linfocitos T en pollos de engorde (Oguz et al., 2010). DE. Generalmente se sospecha de los efectos negativos de las aflatoxinas cuando se observa un incremento en la mortalidad asociado, además a una disminución de la. CA. ganancia de peso, aumento de la conversión de alimento y fallas vacunales no explicables por el procedimiento ni por el producto en sí mismo. La palidez de las aves es algo que puede llamar la atención durante la necropsia. Esa palidez es. TE. consecuencia de la alteración del flujo biliar por el daño hepático con la dilatación de la vesícula biliar y retención de la bilis. La carencia de las sales biliares en el. IO. duodeno del pollo afectará la emulsión de grasas y sumado a ello se reporta una disminución de la lipasa pancreática lo cual conllevará a una disminución de la. BL. absorción de los pigmentos y de sustancias liposolubles (Osuna, 2011).. BI. Las enfermedades producidas por estas toxinas (aflatoxinas, fumonisinas, ocratoxinas) se denominan micotoxicosis. Se reconocen cientos de micotoxinas; sin embargo, la toxicidad y la afinidad en órganos blancos es diferente entre las toxicosis que se presentan de manera natural (Denli, 2009). 2. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(16) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Los hongos son ubicuos y la formación de micotoxinas puede ocurrir en todos los. S. productos agrícolas en condiciones de campo o de almacenamiento adecuados en. RI A. toda la cadena de suministro de la alimentación animal. En esta zona cada vez más complejo, las características más destacadas de un crecimiento y producción de micotoxinas por hongos se esbozan las estrategias para mitigar su acumulación.. PE CU A. En general, hay una serie de enfoques que se pueden tomar para reducir al mínimo la contaminación por micotoxinas en los alimentos de origen animal y éstos implican la prevención del crecimiento de hongos y la formación de micotoxinas por lo tanto, estrategias para reducir o eliminar las micotoxinas de productos contaminados (Bryden, 2012).. Con 500 ppb y a las 3 semanas se observaron también problemas de hígado graso. AG RO. y aumento de su tamaño Con 308 y 610 ppb las mortalidades fueron de 8 y 11%, respectivamente, entre las 0 y 9 semanas. Sin embargo, cuando dietas contaminadas con 2500 y 5000 ppb de AFB1 fueron dadas a pollos de 23 días de edad durante 32 días, no se observaron mayores problemas que los de un hígado ligeramente friable y una reducción de la concentración de calcio en el suero, las. DE. lesiones histológicas fueron una vacuolización de los hepatocitos y una infiltración grasa (Carvajal y De León 2010). Estos resultados coinciden con los obtenidos por otros autores (Cuca et al. 2009). Con la edad los pollos son más resistentes a la. CA. acción tóxica de las aflatoxinas. Pollitos de 1 día de vida al consumir durante 3 semanas un alimento compuesto con 20% de proteína bruta y con 5000 ppb de AFB1, sufrieron una reducción de peso del orden de 20% comparado con el. TE. control. Sin embargo, cuando la proteína bruta fue aumentada para 30% con el mismo nivel de contaminación, la reducción de peso fue solo de un 5,4% (Bryden,. IO. 2012).. BL. Dosis inferiores a 50 ppm de micotoxinas impactan negativamente el peso de pollos de engorde de hasta 21 días, representando pérdidas del 4%. Niveles de 100. BI. ppm determinaron pérdidas del 12% al 21% en la ganancia de peso a los 21 días. Estas pérdidas a nivel de campo pueden ser aún mayores, una vez que en condiciones experimentales el efecto de las micotoxinas es generalmente atenuado 3. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(17) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. por la eliminación de factores estresantes (Cuca et al. 2009). Por otro lado, machos. S. White Leghorn, expuestos a 20 μg/g de micotoxinas por 5 semanas, con alimento. RI A. y agua a voluntad (ad libitum) y un programa de 14 horas de luz y 10 horas de. oscuridad, presentaron una disminución del consumo de alimento (Rodríguez,. PE CU A. 2012).. Estudios con pollos alimentados con alimento balanceado contaminado con aflatoxina, ocratoxinas y con ambas, demostraron el efecto sinérgico de las mismas, observándose que el peso corporal fue significativamente inferior en las aves alimentadas con ambas micotoxinas entre las 2 y 3 semanas de edad. Las micotoxinas individualmente redujeron la ganancia de peso en el 12% cada una,. AG RO. mientras que su combinación disminuyó en el 40% la ganancia de peso (Bryden, 2012).. Se determinaron pruebas hematológicas para el efecto inmunosupresor de micotoxinas sobre inmunidad mediada por células, la cual disminuyó en la proporción de recuento de leucocitos y linfocitos (Tuzcu et al., 2010). Se. DE. demostraron que niveles superiores de micotoxinas deprimen las funciones celulares además de disminución de los linfocitos en los tejidos linfoides. Disminuciones se observaron en los pollos alimentados con (1 mg / kg de dieta),. CA. en la sangre los recuentos de linfocitos en comparación con el grupo de control (Pholo et al., 2009).. TE. Se ha reportado que las micotoxinas (aflatoxinas) causaron cambios notables en la fórmula de leucocitos, habiendo un aumento significativo en los neutrófilos y. IO. población mixta (de basófilos, eosinófilos y monocitos). Este resultado está en línea con el informe de que los porcentajes de neutrófilos se incrementaron. BI. BL. gradualmente mientras que el linfocito se redujo (Tuzcu et al., 2010).. 4 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(18) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. La aflatoxicosis altera la digestión de las proteínas y la absorción de los. S. aminoácidos, la retención hepática de éstos aumenta y se reduce la síntesis de. RI A. ADN, ARN y proteínas en el ribosoma. Todo esto provoca un aumento de las necesidades proteicas de las aves y conduce a un retraso en el crecimiento. Parece ser que un aumento de la proteína un 30%, ayudo a reducir esos efectos. La capa. PE CU A. de moco sobre el epitelio intestinal constituye una barrera física de defensa contra daños físicos y químicos originarios de los ingredientes de la dieta o de la acción de la microbiota y sus productos, por lo que la cantidad de células caliciformes puede aumentar con la presencia de bacterias en el intestino, sobre todo en infecciones agudas (Kim et al., 2010).. AG RO. Contaminaciones con micotoxinas inferior a 150 ppb en alimento compuesto, suministrados a pollitos de 1 día de vida durante 3 semanas, no afectaron el consumo de alimento, sin embargo, contaminaciones de 200 ppb durante 29 días provocaron un aumento de susceptibilidad a la coccidiosis por Eimeria tenella y fallos en el coccidiostático utilizado. Por otro lado, en niveles altos en ocratoxinas y fumonisinas obtuvieron índices inferiores de eficiencia productiva para pollos de. al., 2011). DE. engorde usando 300 ppb de micotoxinas (ocratoxinas y fumonisinas) (Santin et.. CA. Algunos de los efectos que pueden observarse en aves por la presencia de micotoxinas en el alimento son: a) reducción del consumo y peso de aves, b) alteración en el contenido de nutrientes del alimento, absorción y metabolismo de. TE. los nutrientes, c) efectos en los sistemas endocrinos y exócrinos, d) supresión de. IO. las funciones del sistema inmune y e) muerte celular (Cuca et al. 2009).. Los efectos negativos de las micotoxinas sobre la performance del pollo han sido. BL. demostrados en numerosos estudios (Mohamed, 2011). Por ejemplo, el consumo. BI. de altos niveles de una mezcla de micotoxinas, dentro del concentrado para aves de engorda, produciendo un deterioro de la conversión alimenticia y un aumento de susceptibilidad a las enfermedades (Mohamed, 2011).. 5 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(19) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. La interferencia de la AFB1 con la función hepática normal, reduce posiblemente. S. la síntesis de las sero-inmunoglobulinas, lo cual tiene una gran influencia en la. RI A. patogénesis y morbosidad Estudios recientes demostraron que existen grados de. susceptibilidad individual entre animales de la misma especie y del mismo sexo. PE CU A. frente a la intoxicación por aflatoxinas (Che et al., 2011).. La anemia puede causar un recuento alto de neutrófilos. La Anemia hemolítica es una condición en la que el recuento de glóbulos rojos se destruye antes de lo que deberían ser. Porcentaje alto de basófilos es considerado como resultado de anemia hemolítica crónica y la infección por hongos. Sin embargo, la alta recuento de neutrófilos puede conducir a la leucocitosis que está asociada con la infección. AG RO. bacteriana y leucemia. Bajo porcentaje de linfocitos (linfocitopenia) está asociado con la mononucleosis y anemia utilizando los niveles de 5 y 10 ppb de aflatoxina en la dieta de pollos de engorde observando bajos niveles de hemoglobina y glóbulos rojos (eritrocitos) (An et al., 2009).. En avicultura, como en otras cadenas agro alimenticias, se han propuestos diversas. DE. estrategias para lograr contrarrestar los efectos de estos indeseados metabolitos. Entre estas destacan el uso de inhibidores de hongos, incremento de los niveles de proteínas, vitaminas y energía de las dietas; la selección genética, los tratamientos. CA. físicos, químicos y biológicos de las materias primas, los cuales en condiciones experimentales han mostrado resultados prometedores sin embargo su aplicación a nivel de granjas de explotación comercial todavía necesitan ser validados. TE. (Whitlow, 2010).. IO. Últimamente se está cobrando mucha difusión la utilización de sustancias descontaminantes naturales o sintéticas conocidas como secuestrantes, las cuales. BL. son capaces de inhibir dichos metabolitos, contrarrestando de este modo la toxicidad de los mismos. Entre estas se encuentran algunas arcillas, y zeolitas de. BI. origen volcánico, bentonitas, carbón activado, aluminosilicatos y productos de la pared celular de levaduras (Ezekiel, 2011).. 6 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(20) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. En la actualidad la producción avícola se constituye en la actividad más importante. S. dado que ha experimentado un incremento del valor de la producción en el. RI A. subsector pecuario, la importancia de la actividad avícola y a diferencia de otros productos pecuarios es su alto nivel de desarrollo tecnológico, con continuos. avances y mejoras en los indicadores productivos (genética, equipos y. PE CU A. alimentación) mostrando un crecimiento sostenido en los últimos 10 años.. En el Perú, la avicultura es una de las actividades económicas más importantes, genera el 2.5% del PBI nacional y constituye el 70% de proteína de origen animal consumida por la población. La importancia de la actividad avícola y a diferencia de otros productos pecuarios, es su alto nivel de desarrollo tecnológico, con continuos avances y mejoras en los indicadores productivos (genética, equipos y. AG RO. alimentación) mostrando un crecimiento sostenido en los últimos 10 años, llegando en el caso de la carne de pollo pasar de 556,076 toneladas en el 2002 a 1, 084,815 toneladas en el año 2011 (APA, 2014; MINAG, 2013). En la región La Libertad, no se han realizado investigaciones sobre este tema de mucha importancia para la avicultura, por lo que el motivo del presente trabajo es. DE. determinar el efecto de las micotoxinas sobre los parámetros productivos y. BI. BL. IO. TE. CA. hematológicos de los pollos de engorde.. 7 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(21) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. S. II. MATERIAL Y MÉTODOS. RI A. 2.1 Lugar de Investigación. El presente trabajo de investigación se realizó en la empresa Agropecuaria Jerusalén EIRL, ubicada en el Distrito de Moche, Provincia de Trujillo; Región. 2014 hasta febrero del 2015. 2.2 Material de Estudio 2.2.1 Material Biológico. PE CU A. La Libertad; durante el período comprendido entre los meses de Noviembre del. Pollos BB machos de la línea Cobb 500.. -. Cámara de Neubauer (Parámetros hematológicos). -. Solución de Natt & Herrick (Parámetros hematológicos). -. Kits ELISA (Micotoxinas). AG RO. -. 2.2.2 Material de Campo. DE. - Balanza digital. - Bebederos.. - Cámara Fotográfica.. CA. - Comederos tipo tolva. - Desinfectantes.. TE. - Láminas cubreobjetos y portaobjetos. - Nordex. - Pajilla de Arroz.. IO. - Termohigrometro Digital.. BI. BL. - Vacunas.. 8 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(22) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. S. 2.2.3 Materiales de Oficina - Calculadora.. RI A. - CD’s en blanco. - Impresora.. PE CU A. - Lapiceros. - Laptop. - Libreta de Apuntes. - Memoria USB. - Papel Bond.. 2.3 Tamaño de muestra. AG RO. - Registros.. Para estimar el tamaño de la muestra, se utilizará el porcentaje de mortalidad, aplicando la siguiente fórmula:. Dónde:. p∗q∗(Z)2 (e)2. DE. n=. CA. n= número de aves requeridos (tamaño de muestra) p= porcentaje de mortalidad (0.03). TE. q= porcentaje de viabilidad (0.97). IO. Z2= nivel de confiabilidad al 95%. BI. BL. e2= nivel de exactitud (0.05) n=. (0,03)(0,97)(1,86)2 (0,05)2. = 2,5-0,3. n= 107,7 n≅ 108. 9. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(23) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. 2.4 Diseño experimental. RI A. tres repeticiones de 12 pollos por tratamiento.. S. Se utilizó el diseño completamente al azar (DCA), con tres tratamientos y. El modelo estadístico lineal correspondiente al diseño es el siguiente:. Donde: i=1……n. PE CU A. Yij = µ + Ti + eij. j=1……n. AG RO. Yij = Variable de respuesta (ganancia diaria de peso) obtenida en la ij-ésima unidad experimental µ = Media. Ti = Efecto del i-ésimo nivel de micotoxinas.. eij = Error experimental asociado a la ij-ésima unidad experimental. DE. 2.5 Tratamientos experimentales. Se emplearon tres tratamientos experimentales. CA. 2.5.1 Tratamiento 0 (T0). TE. Este grupo de aves fueron alimentadas con una ración ajustada al requerimiento. BI. BL. IO. de su línea genética según su edad. (Tabla 1).. 10 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(24) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. S. Tabla 1. Valor nutritivo de dietas inicio y crecimiento del tratamiento 0 (T0) Semanas. Valor Nutritivo. Inicio. 1–2. Crecimiento. 3–4. Inicio (PC. 25,0%; EM. 3050 kcal/kg; Grasa 3,0%; Fibra 4,0%; Ca. 0,53%; P 0,50%) sin micotoxinas. Crecimiento (PC. 20,0%; EM. 3108 kcal/kg; Grasa 5,0%; Fibra 6,0%; Ca. 0,84%; P 0,42%) sin micotoxinas.. 2.5.2 Tratamiento 1 (T1). PE CU A. RI A. Periodo. Este grupo de aves fueron alimentadas con el tipo de alimento correspondiente a la edad del ave al que se le incluyó de 50 - 100ug/kg de micotoxinas en el alimento (Tabla 2).. AG RO. Tabla 2. Valor nutritivo de dietas inicio y crecimiento del tratamiento 1 (T1) Semanas. Inicio. 1–2. Crecimiento. 3–4. DE. Periodo. Valor Nutritivo. Inicio (PC. 25,0%; EM. 3050 kcal/kg; Grasa 3,0%; Fibra 4,0%; Ca. 0,53%; P 0,50%) + 50 100ug/kg de micotoxinas en el alimento. Crecimiento (PC. 20,0%; EM. 3108 kcal/kg; Grasa 5,0%; Fibra 6,0%; Ca. 0,84%; P 0,42% + 50 - 100ug/kg de micotoxinas en el alimento.. CA. 2.5.3 Tratamiento 2 (T2). Las aves fueron alimentadas con el tipo de alimento correspondiente a la edad. TE. del ave al que se le incluyó 150 –300 ug / kg de micotoxinas en el alimento (Tabla 3).. IO. Tabla 3. Valor nutritivo de dietas inicio y crecimiento del tratamiento 2 (T2). BI. BL. Periodo. Semanas. Inicio. 1–2. Crecimiento. 3–4. Valor Nutritivo Inicio (PC. 25,0%; EM. 3050 kcal/kg; Grasa 3,0%; Fibra 4,0%; Ca. 0,53%; P 0,50%) + 150 – 300 ug / kg de micotoxinas en el alimento. Crecimiento (PC. 20,0%; EM. 3108 kcal/kg; Grasa 5,0%; Fibra 6,0%; Ca. 0,84%; P 0,42% + 150 –300 ug / kg de micotoxinas en el alimento. 11. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(25) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. T0 (Testigo sin Micotoxinas) T1 (50 - 100 ug / kg. A. B. 12. 12. 12. de micotoxinas.) T2 (150 -300 ug / kg. 2.6 Procedimiento. C. 12. 12. 12. 12. 12. AG RO. 12. de micotoxinas). PE CU A. Tratam.. RI A. Tabla 4. Distribución de los pollos de engorde por tratamiento. S. La distribución de las aves por tratamiento se observan en la siguiente tabla.. 2.6.1 Criterios de inclusión de las aves. - Se emplearon pollos de la línea Cobb 500, de un día de edad, machos, con un peso promedio de 46 gramos. Fueron incluidas las aves que. DE. manifestaron sentidos de alerta, activos y con el ombligo sano. - Los pollos fueron criados hasta los 28 días de edad, de 1 a 7 días de edad, recibieron agua y alimento comercial ad libitum.. CA. - Al octavo día de edad, las aves fueron distribuidas aleatoriamente en tres tratamientos.. TE. - Cada grupo contó con 36 aves, con 3 repeticiones de 12 aves cada uno.. o alguna lesión tal como: patas torcidas, cuellos doblados, etc.. BI. BL. IO. - Se excluyeron las aves que manifestaron signos de enfermedad, defectos. 12 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(26) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. S. 2.6.2 Distribución e implementación del manejo de las aves - Las aves se distribuyeron aleatoriamente en 3 corrales de 70 cm x 602 cm. RI A. x 50 cm.. - La temperatura del primer día durante la recepción fué de 32°C, la cual. ambiente a los 21 días. - La. iluminación. (programa. PE CU A. se le fue disminuyendo 1°C cada 2 días, hasta llegar a la temperatura. de. luz). fué. manejado. según. las. especificaciones de la línea Cobb 500, como se indica en la tabla 5. Tabla 5. Programa de iluminación, oscuridad y temperatura según edad de los. AG RO. pollos de engorde. Edad en días. Horas de Oscuridad. 0 1. 0 1 9. 22 – 42. 6. DE. 8 – 21. Temperatura °C. 1–2 3-4. 32 31. 5-6 10- 12 21 28 35 42. 30 28. BI. BL. IO. TE. CA. Edad en días. Tº ambiente. La limpieza de los corrales se realizó principalmente con volteo de cama. Se efectuó el reemplazo con pajilla limpia cuando había humedad en cama evitando así la acumulación de amoniaco.. 13 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(27) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. S. 2.6.3 Obtención del alimento contaminado El alimento se obtuvo de una planta que produce alimento comercial, el cual,. RI A. previo al almacenaje del maíz se le dio condiciones apropiadas para el. desarrollo de las micotoxinas. Posteriormente se analizó para la. PE CU A. determinación de los niveles de micotoxinas en el laboratorio Microclin S.R.L. y fue preparado en molino donde según los resultados se clasificó para cada tratamiento.. 2.6.4 Determinación de los parámetros hematológicos. Se tomaron muestras de sangre de 1 ml a 8 aves por tratamiento a los 28 días. AG RO. de edad, vía punción alar y luego estas fueron llevadas al laboratorio Microclin S.R.L. para la determinación de los parámetros hematológicos. 2.7 Alimentación. Las aves fueron alimentadas ad libitum de 1 a 7 días de edad, la ración diaria fue suministrada en dos turnos para evitar una merma del alimento. Diariamente. DE. fueron pesados los alimentos en una balanza digital para obtener la cantidad de consumo del alimento balanceado, el suministro de agua fue ad libitum.. CA. Los valores nutritivos de la dieta fueron calculados según los requerimientos. BI. BL. IO. TE. nutritivos de pollos de engorde de la tabla Cobb 500. (Ver tabla 6).. 14 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(28) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Tabla 6. Valores nutritivos en dietas de inicio y crecimiento para pollos de. RI A. S. engorde. (Inicio). Insumos. (Crecimiento). Maíz. 64,50. Maíz. 56,00. Torta de Soya. 22,94. Torta de Soya. 16,60. H. De pescado. 8,00. H. De pescado. 8,00. Afrecho. 0,42. Afrecho. 8,00. Polvillo. 1,00. Polvillo. 8,00. Aceite de Soya. 0,50. Aceite de Soya. 1,38. Calcio. 0,61. Phosbic. 1,14. Lisina. 0,14. Treonina. 0,05. Premix. 0,20. Metionina. AG RO. 0,70. Phosbic. 0,70. Lisina. 0,16. Treonina. 0,10. Premix. 0,10. 0,30. Bicarbonato. 0,25. 0,09. Metionina. 0,05. 100,00. TOTAL. 100,00. CA. TOTAL. Calcio. DE. Bicarbonato. PE CU A. Insumos. TE. 2.8 Datos registrados. 2.8.1 Variables de la investigación. IO.  Peso inicial.. BI. BL.  Peso final.  Frecuencia cardiaca.  Síntomas de enfermedad.  Número de animales enfermos.  Número de animales muertos.  Valores hematológicos. 15. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(29) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. 2.8.2 Parámetros productivos evaluados. S. a) Ganancia de Peso de Vivo Total (ΔΡ). RI A. Se obtuvo la diferencia entre el peso final a los 28 días (Pf) y el peso inicial. a los 0 días (Pi), donde se controló de manera individual el peso de las. utilizando la siguiente fórmula:. PE CU A. aves para determinar la ganancia de peso vivo promedio por tratamiento. ΔP = Pf - Pi b) Consumo de Alimento. Se determinó el consumo diario (kg) y el consumo promedio por ave (g),. AG RO. de cada tratamiento.. Así mismo se determinó el consumo promedio semanal y el consumo promedio total (acumulado) por ave, de cada tratamiento. c) Índice de Conversión Alimenticia (ICA) Se determinó en base a cálculos de los datos referentes al consumo de. DE. alimento total (kg) y ganancia de peso vivo (ΔP) (kg). ICA =. Consumo de alimento ΔP. CA. d) Porcentaje de Mortalidad Se anotó el número diario de aves muertas por tratamiento durante la. % 𝐦𝐨𝐫𝐭𝐚𝐥𝐢𝐝𝐚𝐝 =. aves muertas × 100 aves vivas. IO. TE. ejecución del proyecto y fueron calculados a porcentaje.. BI. BL. e) Índice de Eficiencia Productiva Se evaluó el rendimiento integral de los pollos de engorde, tomando en consideración la supervivencia, el peso vivo promedio, la edad y el índice de conversión alimenticia.. 16 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(30) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Peso vivo (kg)x Supervivencia (%) Edad (días ) x Conversion Alimenticia. x 100. S. I.E.P. =. RI A. 2.8.3 Parámetros Hematológicos. Para la evaluación de los parámetros hematológicos, las muestras de sangre. PE CU A. tomadas de las aves se llevaron al laboratorio Microclin S.R.L. Donde se utilizó la cámara de Neubauer y la solución de Natt y Herrick para el recuento de las células de la sangre (Eritrograma y Leucograma). Los cuales se describen en los siguientes: a) Eritrograma Hemoglobina. -. Hematocrito. -. Eritrocitos. -. Promedio de hemoglobina corpuscular (PHC). -. Promedio de volumen corpuscular (PVC). -. Promedio de concentración de la hemoglobina (PCHC). AG RO. -. DE. b) Leucograma. - Recuento de leucocitos.. CA. - Linfocitos.. - Heterófilos.. TE. - Monocitos.. IO. 2.9 Análisis estadístico Se utilizaron hojas Excel y el software SPSS-20. Se empleó la prueba de Levenne. BL. para determinar la homogeneidad de varianzas de los pesos iniciales de los tratamientos, prueba de normalidad para las variables analizadas, análisis de. BI. varianza (ANVA) para los parámetros productivos; al encontrarse diferencias estadísticas entre los tratamientos se realizó la prueba de Tukey al 0.5% de significancia, para el porcentaje de mortalidad se empleó la prueba de Fisher. 17. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(31) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. S. III. RESULTADOS. RI A. 3.1 Parámetros Productivos 3.1.1 Ganancia de Peso Total. La ganancia de peso total por tratamiento hasta los 28 días de edad del pollo,. PE CU A. se observan en la tabla 7 y figura 1. La mayor ganancia de peso fue lograda por el tratamiento testigo (T0) con 1,6 kg. La ganancia de peso de los tratamientos con 50 – 100 ug/kg de micotoxinas (T1) y el tratamiento con 150 – 300 ug / kg de micotoxinas (T2) fueron de 1,1 y 0,9 kg respectivamente.. AG RO. Tabla 7. Ganancia de peso total de los pollos por tratamiento. Ganancia De Peso Semanal Por Tratamiento (kg) Semanas. T0. T1. T2. 0,043. 0,043. 0,043. 0,179. 0,123. 0,101. 0,465. 0,316. 0,288. 4. 0,864. 0,662. 0,517. Ganancia De Peso Total (kg). 1,6. 1,1. 0,9. 1 2. CA. DE. 3. 1.4. BI. BL. IO. TE. Ganancia de Peso Toal. 1.6. 1.2 1. 0.8 0.6 0.4 0.2 0. T0. T1. T2. Tratamientos Figura 1. Ganancia de peso total de los pollos por tratamiento. 18. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(32) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Desviación. N. Promedio. Máximo. T0. 3. 1,6. ,017. 1,5. T1. 3. 1,1. ,286. ,7. T2. 3. ,9. ,303. ,5. 1,0. Total. 9. 1,2. ,392. ,5. 1,6. RI A. Tratamientos. 1,6 1,3. PE CU A. estándar. Mínimo. S. Tabla 8. Desviación estándar y promedio de la ganancia de peso total de los pollos. La tabla 9 muestra el análisis de varianza para la ganancia de peso total. Se. AG RO. determinó un valor de p de 0,023, que indica que existen diferencias estadísticas significativas entre los tratamientos (p<0,05). Tabla 9. Análisis de varianza de la ganancia de peso total de los pollos Suma de cuadrados. GL. Media cuadrática. F. Sig.. Tratamientos. ,883. 2. ,441. 7,571. ,023. ,350. 6. ,058. 1,233. 8. Error. CA. Total. DE. Fuentes de variación. TE. Al realizar la prueba de Duncan de la ganancia de peso total de los pollos, la prueba indica que la media del tratamiento testigo (T0) difiere estadísticamente del T1 y este a su vez difiere estadísticamente del T2. Pero T1. BI. BL. IO. y T2 son estadísticamente iguales (Tabla 10).. 19 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(33) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Tabla 10. Prueba de Duncan de los promedios de la ganancia de peso por. Subconjunto para alfa = 0,05. N. T2. 3. T1. 3. T0. 3. 1 0,9. 2. PE CU A. TRATAMIENTOS. RI A. S. tratamiento. 1,1. 1,6. 3.1.2 Consumo de alimento total. AG RO. En la tabla 11 y figura 2, se muestran el consumo de alimento semanal y total por tratamiento, donde el mayor consumo de alimento acumulado lo obtuvo el tratamiento testigo (T0).. El tratamiento con 50 - 100ug/kg de micotoxinas (T1) y el tratamiento con 150 –300 ug / kg de micotoxinas (T2) consumieron menos alimento y fueron. DE. de 2,5 y 2,6 kg respectivamente.. Tabla 11. Consumo de alimento semanal y total por tratamiento. TE. CA. Consumo de Alimento Semanal por Tratamiento Semanas T0 T1 T2 0,35 0,34 0,35 1 2. IO. 3 4. 0,46. 0,47. 0,79. 0,66. 0,8. 1,19. 1,05. 0,99. 2,8. 2,5. 2,6. BI. BL. Consumo de Alimento Total. 0,47. 20 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(34) RI A. Consumo acumulado total (kg). S. Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. 2.8 2.75 2.7. 2.6. 2.55 2.5 2.45 2.4 2.35 T0. T1. PE CU A. 2.65. T2. AG RO. Tratamientos. Figura 2. Consumo de alimento total de los pollos por tratamiento. El análisis de varianza para el consumo de alimento total de los pollos de carne, puede observarse en la tabla 12. El valor calculado de p fue 0,179, que indica, que no existen diferencias estadísticas entre los promedios de los. DE. tratamientos (p>0,05).. Tabla 12. Análisis de varianza del consumo total de alimento Suma de cuadrados. GL. Media cuadrática. F. Sig.. Tratamientos. ,081. 2. ,041. 2,321. ,179. Error. ,105. 6. ,018. Total. ,187. 8. BI. BL. IO. TE. CA. Fuentes de variación. 21 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(35) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. S. 3.1.3 Índice de conversión alimenticia (ICA) El índice de conversión alimenticia total por tratamiento se observan en la. RI A. tabla 13 y figura 3. El tratamiento testigo (T0) tuvo la mejor conversión alimenticia de 1,7 con respecto a los demás tratamientos, los tratamientos. con 50 - 100ug/kg de micotoxinas (T1) y con 150 –300 ug / kg de. PE CU A. micotoxinas (T2) tuvieron la peor conversión alimenticia, en niveles de 2,1 y 2,4 respectivamente.. Tabla 13. Conversión alimenticia total de pollos por tratamiento. T0. 3. T1. 3. T2. 3. Total. 9. Media. Desviación estándar. AG RO. N. Mínimo. Máximo. 1,7. ,106. 1,4. 2,0. 2,1. ,219. 1,5. 2,6. 2,4. ,204. 1,9. 2,9. 2,1. ,344. 1,8. 2,3. DE. Tratamientos. CA 3. 2.5. TE. Conversión Alimenticia. 3.5. 2. BI. BL. IO. 1.5. 1. 0.5 0 T0. T1. T2. Tratamientos. Figura 3. Índice de conversión alimenticia de los pollos por tratamiento. 22. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(36) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. El análisis de varianza para la conversión alimenticia se muestra en la tabla. S. 14. Se determinó que existen diferencias estadísticas significativas entre. RI A. tratamientos (p<0,05). Tabla 14. Análisis de varianza de la conversión alimenticia total Suma de cuadrados. GL. Media cuadrática. F. Sig.. Tratamientos. ,749. 2. ,375. 11,108. ,010. Error. ,202. 6. Total. ,952. 8. PE CU A. Fuentes de variación. AG RO. ,034. Al realizar la prueba de Duncan de la conversión alimenticia de los pollos, la prueba indica que la media del tratamiento testigo (T0) es estadísticamente inferior a las medias del T1 y del T2 (Tabla 15).. DE. Tabla 15. Prueba de Duncan de las medias de la conversión alimenticia por tratamiento. N. T0 T1 T2. 3 3 3. BI. BL. IO. TE. CA. TRATAMIENTOS. Subconjunto para alfa = 0.05 1 2 1,7 2,1 2,4. 23 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(37) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. S. 3.1.4 Porcentaje de mortalidad La cantidad de pollos muertos y el porcentaje de mortalidad se puede. RI A. observar en la tabla 16 y figura 4, donde se muestran, que el tratamiento con. 150 – 300 ug / kg de micotoxinas (T2) durante toda la crianza tuvo tres aves muertas, por lo que el porcentaje de mortalidad fue 8,3 %; mientras que en. PE CU A. el tratamiento con 50 –100 ug / kg de micotoxinas (T1) durante la crianza tuvo dos aves muertas, por lo que porcentaje de mortalidad fue 5,6%; finalmente el tratamiento T0 no presentó ningún pollo muerto.. Tabla 16. Porcentaje de mortalidad de los pollos por tratamiento. T0 0 36 36 0. 5. TE. % Mortalidad. 6. CA. 9 7. T2 3 33 36 8.3. DE. Muertos Vivos Total %. 8. Mortalidad T1 2 34 36 5.6. AG RO. Características. 4 3. IO. 2 1. BI. BL. 0. T0. T1. T2. Tratamientos Figura 4. Porcentaje de mortalidad de los pollos por tratamiento.. 24 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(38) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Los resultados de la prueba de Chi Cuadrado (tabla 17) del porcentaje de. S. mortalidad en los pollos de carne, indica que no existen diferencias. RI A. estadísticas significativas entre los tratamientos (p>0,05). Tabla 17. Pruebas de Chi-cuadrado para el porcentaje de mortalidad. Prueba Chicuadrado. Valor. 2,936 108. Sig. asintótica (bilateral). 2. ,230. AG RO. N de casos válidos. Gl. PE CU A. Prueba. 3.1.5 Índice de eficiencia productiva (IEP). El índice de eficiencia productiva a los 28 días de edad de los pollos de engorde por tratamiento se muestra en la tabla 18 y figura 5. El tratamiento testigo (T0) obtuvo el mejor índice de eficiencia productiva con 315,1;. DE. seguido por el tratamiento con 50 –100 ug / kg de micotoxinas (T1) con 196,6 y finalmente el tratamiento con 150 –300 ug / kg de micotoxinas (T2) con 134,8. Para determinar que tratamiento fue el mejor en relación al índice de. CA. eficiencia productiva se comparó los tratamientos con el tratamiento testigo como base, asignándole el valor de 100%. Se calculó una disminución del. BI. BL. IO. TE. T1 de – 37,6 % y del T2 de - 57,21 % con respecto al T0.. 25 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(39) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. INDICADORES. 350.0. 300.0. PE CU A - 37,6. - 57.21. -. 200.0. CA. DE. I.E.P. 250.0. 100.0. --. AG RO. COMPARACIÓN CON T0 (%). Sig. ,023 ,230 ,010 -. RI A. T0 28 1,5 100 1,7 315.1. Edad (días) Peso final (kg) Viabilidad (%) C.A. I.E.P.. 150.0. TRATAMIENTOS T1 T2 28 28 1,4 1,4 94,4 91,7 2,1 2,4 224,7 196,6. S. Tabla 18. Índice de Eficiencia Productiva por tratamiento. 50.0 0.0. T1. T2. TE. T0. BI. BL. IO. Figura 5. Índice de Eficiencia Productiva de los pollos por tratamiento.. 26 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(40) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. S. 3.2 Parámetros Hematológicos. RI A. 3.2.1 Eritrograma. Tabla 19. Valores hematológicos en la toma de muestras de sangre de los pollos por tratamiento. PE CU A. ERITROCITARIA TRATAMIENTOS Hb (gr/dl). Ht (%). GR (M/ul) PHC (pg) PVC (fl) PCHC (g/dl). T0 (Testigo). 5.7b. 28.5a. 2.4b. 27.2b. 125.5b. 18.41b. T1 (50-100 ug/kg). 5.3b. 28.5a. 2.1b. 28.3b. 150b. 15.32b. T2 (150-300 ug/kg). 4.3b. 27a. 1.4b. 32.5b. 204.4b. 13.78b. AG RO. Letras distintas indican diferencias significativas p < 0,01.. DE. 250. 200. TE. 100. CA. 150. IO. 50. 0. Ht (%) 28.5. GR (M/ul) 2.4. PHC (pg) 27.2. PVC (fl) 125.5. PCHC (g/dl) 18.41. T1 (50-100 ug/kg). 5.3. 28.5. 2.1. 28.3. 150. 15.32. T2 (150-300 ug/kg). 4.3. 27. 1.4. 32.5. 204.4. 13.78. BL. Hb (gr/dl) 5.7. BI. T0 (Testigo). Figura 6. Valores hematológicos en la toma de muestras de sangre de los pollos por tratamiento. 27. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(41) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. S. a) Hemoglobina Los valores de hemoglobina por tratamiento se observan en la tabla 20 y. RI A. figura 6. El tratamiento testigo (T0) obtuvo mayor cantidad de hemoglobina. 5,7 g/dl (gramos por decilitro de sangre), en relación al tratamiento con 50 100ug/kg de micotoxinas (T1), que obtuvo una cantidad de 5,3 g/dl y al. cantidad de hemoglobina 4,3 g/dl.. PE CU A. tratamiento con 150 –300 ug / kg de micotoxinas (T2) que obtuvo la mínima. Tabla 20. Desviación estándar y promedio de los valores de hemoglobina de los pollos por tratamiento. Desviación estándar. Límite inferior. Límite superior. 5,7. ,057. 5,7. 5,8. 3. 5,3. ,100. 5,2. 5,4. T2. 3. 4,3. ,057. 4,3. 4,4. Total. 9. 5,1. ,624. 4,3. 5,8. N. Promedio. T0. 3. T1. DE. AG RO. Tratamientos. CA. Se calculó un valor para p de 0,00 (tabla 21) del análisis de varianza de Hemoglobina, lo que significa que existen diferencias altamente. TE. significativas entre los tratamientos. Tabla 21. Análisis de varianza para los valores de hemoglobina. Fuentes de variación. GL. Media cuadrática. F. Sig.. Tratamientos. 3,082. 2. 1,541. 277,400. ,000. Error. ,033. 6. ,006. Total. 3,116. 8. BI. BL. IO. Suma de cuadrados. 28 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(42) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Al realizar la prueba de Tukey de los valores de hemoglobina, se puede. S. observar que se encontraron diferencias estadísticas entre las medias de los. RI A. tratamientos, siendo menor la cantidad de hemoglobina 4,3 g/dl para el. tratamiento con 150 –300 ug / kg de micotoxinas (T2). El T1 fue estadísticamente superior al T2; y ambos fueron inferiores a la media del. PE CU A. tratamiento testigo T0 (tabla 22).. Tabla 22. Prueba de Tukey para los valores de hemoglobina entre tratamientos. N. T2 T1 T0. 3 3 3. b) Hematocrito. Subconjunto para alfa = 0.05 1 2 3 4,33 5,30 5,73. AG RO. TRATAMIENTOS. Los valores de hematocrito por tratamiento se observan en la tabla 23 y figura 6. El tratamiento testigo (T0) y el tratamiento con 50 – 100 ug/kg de. DE. micotoxinas (T1) obtuvieron mayor porcentaje 28,5 % de hematocrito, en relación al tratamiento con 150 –300 ug / kg de micotoxinas (T2) que obtuvo. CA. un porcentaje menor de hematocrito 27% respectivamente.. N. Promedio. Desviación estándar. Límite inferior. Límite superior. T0. 3. 28,5. ,500. 28,0. 29,0. T1. 3. 28,5. ,500. 28,0. 29,0. T2. 3. 27,0. 1,000. 26,0. 28,0. Total. 9. 28,0. ,968. 26,0. 29,0. BI. BL. TE. Tratamientos. IO. Tabla 23. Desviación estándar y promedio para los valores de hematocrito. 29 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(43) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. La Tabla 24 muestra el análisis de varianza del Hematocrito, donde se puede. S. observar el valor de p>0,05, lo que significa; que no existen diferencias. RI A. estadísticas significativas entre las medias de los tratamientos. Tabla 24. Análisis de varianza para los valores de hematocrito Suma de cuadrados. GL. Media cuadrática. F. Sig.. Tratamientos. 4,500. 2. 2,250. 4,500. ,064. Error. 3,000. 6. ,500. Total. 7,500. 8. AG RO. PE CU A. Fuentes de variación. c) Eritrocitos. Los valores de eritrocitos por tratamiento se puede observar que, el tratamiento testigo (T0) obtuvo mayor cantidad de eritrocitos 2,4 M/ul (millones por microlitro), en relación al tratamiento con 50 – 100 ug/kg de. DE. micotoxinas (T1), que obtuvo una cantidad de 2,1 M/ul y el tratamiento con 150 –300 ug / kg de micotoxinas (T2) obtuvo la menor cantidad de eritrocitos 1,4 M/ul en relación a los tratamientos (T0) y (T1) respectivamente (tabla. CA. 25).. N. Promedio. Desviación estándar. Límite inferior. Límite superior. T0. 3. 2,4. ,095. 2,3. 2,5. T1. 3. 2,1. ,025. 2,1. 2,2. T2. 3. 1,4. ,026. 1,4. 1,5. Total. 9. 2,0. ,427. 1,4. 2,5. BI. BL. Tratamientos. IO. TE. Tabla 25. Desviación estándar y promedio de los valores de eritrocitos. 30 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(44) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Al realizar el análisis de varianza de eritrocitos, donde se puede observar el. S. valor de p<0,01, lo que significa; que existen diferencias estadísticas. RI A. altamente significativas entre los tratamientos (tabla 26). Tabla 26. Análisis de varianza para los valores de eritrocitos Suma de cuadrados. GL. Media cuadrática. F. Sig.. Tratamientos. 1,441. 2. ,720. 207,109. ,000. Error. ,021. 6. Total. 1,461. 8. PE CU A. Fuentes de variación. AG RO. ,003. Al realizar la prueba de Tukey de los valores de eritrocitos, se puede observar que se encontraron diferencias estadísticas entre las medias de los tratamientos. Siendo significativamente menor la cantidad de eritrocitos 1,49 M/ul para el tratamiento con 150 –300 ug / kg de micotoxinas (T2), y. DE. teniendo menor diferencia con los demás tratamientos. El T1 con un valor de 2,17 M/ul de eritrocitos, fue significativamente menor que T0 (tabla 27).. CA. Tabla 27. Prueba de Tukey para los valores de eritrocitos entre tratamientos. N. T2 T1 T0. 3 3 3. Subconjunto para alfa = 0.05 1 2 3 1,49 2,17 2,44. BI. BL. IO. TE. TRATAMIENTOS. 31 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(45) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. d) Promedio de hemoglobina corpuscular (PHC). S. Los valores de PHC (promedio de hemoglobina corpuscular) por tratamiento. RI A. se observan en la tabla 28. El tratamiento testigo (T0) obtuvo un promedio menor de PHC 27,2 pg (picogramos), en relación al tratamiento con 50 – 100 ug/kg de micotoxinas (T1), que obtuvo un promedio de 28,3 pg y al. promedio de PHC con 32,5 pg.. PE CU A. tratamiento con 150 –300 ug / kg de micotoxinas (T2) que obtuvo un mayor. Tabla 28. Desviación estándar y promedio de los valores de PHC. N. Promedio. Desviación estándar. Límite inferior. Límite superior. T0. 3. 27,2. ,100. 27,1. 27,3. T1. 3. 28,3. ,100. 28,2. 28,4. T2. 3. 32,5. ,500. 32,0. 33,0. Total. 9. 29,3. 2,436. 27,1. 33,0. DE. AG RO. Tratamientos. La Tabla 29 muestra el análisis de varianza, del PHC donde se puede. CA. observar el valor de p<0,01, lo que significa; que existen diferencias estadísticas altamente significativas entre los tratamientos.. TE. Tabla 29. Análisis de varianza para PHC entre tratamientos Fuentes de variación. GL. Media cuadrática. F. Sig.. 46,940. 2. 23,470. 260,778. ,000. Error. ,540. 6. ,090. Total. 47,480. 8. IO. Suma de cuadrados. BI. BL. Tratamientos. 32 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(46) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. La prueba de Tukey de PHC se puede observar en la tabla 30, donde se. S. encontraron diferencias estadísticas significativas entre las medias de los. RI A. tratamientos. Siendo el menor promedio de PHC 27,2 pg para el tratamiento. con 150 –300 ug / kg de micotoxinas (T2), y teniendo menor diferencia con los demás tratamientos. T1 con 28,30 pg fue estadísticamente inferior a T0.. TRATAMIENTOS. N. T2 T1 T0. 3 3 3. PE CU A. Tabla 30. Prueba de Tukey para los valores de PHC entre tratamientos Subconjunto para alfa = 0.05 1 27,20. 2. 3. 28,30. AG RO. 32,50. e) Promedio de volumen corpuscular (PVC) Los valores de PVC (promedio de volumen corpuscular) por tratamiento se observan en la tabla 31. El tratamiento testigo (T0) obtuvo el menor promedio de PVC 125,5 fl (fentolitros), en relación al tratamiento con 50 – 100 ug/kg. DE. de micotoxinas (T1), que fue de PVC 150,0 fl y al tratamiento con 150 –300 ug / kg de micotoxinas (T2) que obtuvo el mayor promedio de PVC 204,4 fl.. CA. Tabla 31. Desviación estándar y promedio de los valores de PVC. N. Promedio. Desviación estándar. Límite inferior. Límite superior. T0. 3. 125,5. ,818. 124,8. 126,4. T1. 3. 150,0. 1,985. 147,8. 151,5. IO. TE. Tratamientos. 3. 204,4. 4,497. 201,4. 209,6. Total. 9. 160,0. 35,070. 124,8. 209,6. BI. BL. T2. 33 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(47) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Se calculó un valor para p de 0,00 (tabla 32) del análisis de varianza del. S. PVC; lo que nos indica que existen diferencias estadísticas altamente. Tabla 32. Análisis de varianza para PVC entre tratamientos. RI A. significativas entre los tratamientos.. Suma de cuadrados. GL. Media cuadrática. F. Sig.. Tratamientos. 9789,727. 2. 4894,863. 591,246. ,000. Error. 49,673. 6. 8,279. Total. 9839,400. 8. AG RO. PE CU A. Fuentes de variación. La prueba de Tukey de PVC, nos indica, que el menor promedio de PVC con 125,5 fl fue para el tratamiento testigo (T0), que tuvo menor diferencia con los demás tratamientos, El T1 con 150,6 fl fue estadísticamente inferior a la media del T2 con 204,4 fl (tabla 33).. N 3 3 3. Subconjunto para alfa = 0.05 1 2 3 125,50 150,06 204,43. TE. T0 T1 T2. CA. TRATAMIENTOS. DE. Tabla 33. Prueba de Tukey para los valores de PVC entre tratamientos. IO. f) Promedio de concentración de la hemoglobina (PCHC). BI. BL. Los valores de PCHC (promedio de concentración de la hemoglobina) por tratamiento se observan en la tabla 34. El tratamiento testigo (T0) obtuvo un promedio mayor de PCHC 18,41 g/dl (gramos por decilitro), en relación al tratamiento con 50 - 100ug/kg de micotoxinas (T1), que obtuvo un promedio de PCHC 15,32 g/dl y al tratamiento con 150 –300 ug / kg de micotoxinas (T2) con 13,78 g/dl. 34. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.