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UNIVERSIDAD AGRARIA DEL ECUADOR
SISTEMA DE POSTGRADO UNIVERSIDAD AGRARIA
DEL ECUADOR
PORTADA
PROGRAMA DE MAESTRÍA EN SANIDAD VEGETAL
TRABAJO DE TITULACIÓN COMO REQUISITO PREVIO PARA
LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE
MAGÍSTER EN SANIDAD VEGETAL
USO DE DIFERENTES BIOCONTROLADORES PARA EL
MANEJO DE Radopholus similis EN BANANO (Musa
paradisiaca AAA), CANTÓN SIMÓN BOLÍVAR,
PROVINCIA DEL GUAYAS
AUTOR
ING. HELEN MARIZOL RODRÍGUEZ SALTOS
DIRECTOR
ING. ARNALDO OTÓN BARRETO MACÍAS, M.Sc.
GUAYAQUIL, ECUADOR
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UNIVERSIDAD AGRARIA DEL ECUADOR
SISTEMA DE POSTGRADO UNIVERSIDAD AGRARIA DEL
ECUADOR
PROGRAMA DE MAESTRÍA EN SANIDAD VEGETAL
CERTIFICACIÓN DE TUTOR
El suscrito docente de la Universidad Agraria del Ecuador. En mi calidad de director CERTIFICO QUE he revisado el trabajo de titulación denominada: USO DE DIFERENTES BIOCONTROLADORES PARA EL MANEJO DE Radopholus similis EN BANANO (Musa paradisiaca AAA), CANTÓN SIMÓN BOLÍVAR, PROVINCIA DEL GUAYAS, El mismo que ha sido elaborado y presentado por la Ing. Helen Marizol Rodríguez Saltos, quien cumple con los requisitos técnicos y legales exigidos por la Universidad Agraria del Ecuador para este tipo de estudios.
Atentamente;
_______________________________________
Ing. Agr. Arnaldo Otón Barreto Macías, M Sc.
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UNIVERSIDAD AGRARIA DEL ECUADOR
SISTEMA DE POSTGRADO UNIVERSIDAD AGRARIA
DEL ECUADOR
TEMA
USO DE DIFERENTES BIOCONTROLADORES PARA EL
MANEJO DE Radopholus similis EN BANANO (Musa
paradisiaca AAA), CANTÓN SIMÓN BOLÍVAR, PROVINCIA DEL
GUAYAS
APROBADA Y PRESENTADA AL CONSEJO DE
POSTGRADO COMO REQUISITO PREVIO A LA OBTENCIÓN
DEL TÍTULO DE: MAGISTER EN SANIDAD VEGETAL
TRIBUNAL DE SUSTENTACIÓN
Ing. Colon Cruz Romero, MSc. PRESIDENTE
Ing. Daniel Mancero Castillo, PhD. Ing. Pedro Andrade Alvarado, MSc. EXAMINADOR PRINCIPAL EXAMINADOR PRINCIPAL
Ing. Arnaldo Barreto Macías, MSc. EXAMINADOR SUPLENTE
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AGRADECIMIENTO
La autora deja constancia de su más sincero agradecimiento a todas las personas e instituciones públicas que de una otra forma prestó directamente su colaboración para la ejecución de la presente tesis.
Mi agradecimiento en primer lugar a Dios por mi meta alcanzada
Instituto Nacional Autónomo de Investigaciones Agropecuarias, Estación Experimental Boliche
Departamento Nacional de Protección Vegetal, Sección Hematología de la Estación Experimental Boliche.
Universidad Agraria del Ecuador por la oportunidad de abrir ofertas académicas en post grados relacionados al AGRO.
Dr. Jacobo Bucaram Ortiz Rector Fundador de la Universidad Agraria del Ecuador.
PHD., Martha Bucaram Leverone De Jorgge. Rectora de la Universidad Agraria del Ecuador
Ing. Elkotb Khairat Elsalous Ahmed, M.Sc. Director del SIPUAE, Sistema De Postgrado Universidad Agraria Del Ecuador.
Ing. Winston Carlos Espinoza Morán, M.Sc. Coordinador de la Maestría de Sanidad Vegetal.
Ing. Arnaldo Otón Barreto Macías, M.Sc. Tutor de tesis de la Maestría de Sanidad Vegetal.
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Ing. Antonio Chávez; Proveedor de ingredientes activos
Ing. Alex Delgado por brindarme su apoyo, colaboración y todos sus conocimientos en laboratorio de Nematologia.
A toda mi familia y en especial a mi hermano Wilmer Rodríguez por todo su apoyo y colaboración para llevar a cabo mi trabajo experimental
A mis amigos. compañeros de estudios de la Maestría y a todas las personas que me dieron todo su apoyo para la realización de mi proyecto de investigación
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DEDICATORIA
Dedico esta tesis en primer lugar Dios por haberme dado la salud, las fuerzas, la confianza y todo el carácter que necesite para lograr mi objetivo
A mi mama, a mis hermanas y hermanos, a mis primos y primas por todo su apoyo y colaboración incondicional.
Por todas las palabras de aliento que me permitieron enfrentar obstáculos en el camino impidiéndome desistir en el alcance de mi meta, hoy puedo decir lo logre gracias a Dios y gracias a todos.
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RESPONSABILIDAD
La responsabilidad de la investigación, resultados y conclusiones, presentadas en este Trabajo de Titulación pertenecen exclusivamente al Autor y los derechos académicos a la Universidad Agraria del Ecuador
Ing. Helen Marizol Rodríguez Saltos C.I 0917926180
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RESUMEN
El presente trabajo de investigación está enfocado en el uso de biocontroladores con el objetivo de reducir poblaciones de R. similis en el cultivo de banano el estudio conto con dos ensayos uno de campo y otro de invernadero del subgrupo Cavendish clon Valery y Williams respectivamente en ambos ensayos se instalaron 5 tratamientos donde se utilizaron Paecilomyces spp, Trichoderma spp, Paecilomyces spp +Trichoderma spp, Complejo revitalizador (Bio- Root). Se inocularon 500 especímenes por cada unidad experimental y en campo se realizó un muestreo y análisis nematológico para determinar la población inicial posteriormente se aplicaron los tratamientos antes mencionados y se evaluó a los 90 días después de la inoculación (tratamientos) se obtuvo como resultado que Paecilomyces spp. + Trichoderma spp. expresaron una menor población de nematodos con 15.375 especímenes a diferencia de los tratamientos Bio- Root con 26.000 y testigo con 22.250 individuos demostrando además un mayor peso de raíces totales de 226,25 g. en relación al testigo con un peso de 177.5 g. y tratamiento Bio-Root con 178.5.
Palabras claves: Control, Nematodos, Paecilomyces, Trichoderma, Raíces sanas
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SUMMARY
The present research work is focused on the use of biocontrollers with the objective of reducing populations of R. similis in banana cultivation. The study had two trials, one in the field and the other in the greenhouse, of the Cavendish subgroup clone Valery and Williams respectively in both trials were installed 5 treatments where Paecilomyces spp, Trichoderma spp, Paecilomyces spp + Trichoderma spp, Revitalizing Complex (Bio-Root) were used. 500 specimens were inoculated for each experimental unit and in the field a sampling and nematological analysis was carried out to determine the population Initially, the aforementioned treatments were applied and it was evaluated 90 days after inoculation (treatments), it was obtained as a result that Paecilomyces sp. + Trichoderma sp expressed a lower population of nematodes with 15,375 specimens in contrast to the Bio-Root treatment with 26,000 and control 22,250 individuals, also demonstrating a higher total root weight of 226.25 g. in relation to the control with a weight of 177.5 g. and bio root treatment with 178.5.
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ÌNDICE DE CONTENIDO
PORTADA ... i
CERTIFICACIÓN DE TUTOR ... ii
TRIBUNAL DE SUSTENTACIÓN ... iii
AGRADECIMIENTO ... iv DEDICATORIA ... vi RESPONSABILIDAD ... vii RESUMEN ... viii SUMMARY ... ix ÌNDICE DE CONTENIDO ... x INTRODUCCIÓN ... 1
Caracterización del tema ... 1
Planteamiento de la Situación Problemática ... 2
Delimitación del problema ... 2
Formulación del problema ... 2
Objetivos ... 3
Objetivo General ... 3
Objetivos Específicos ... 3
Hipótesis... 3
Aporte Teórico o Conceptual ... 3
Aplicación práctica ... 3
CAPITULO 1. ... 4
MARCO TEÓRICO ... 4
1.1 Estado del Arte ... 4
xi
1.2.1 Cultivo de Banano ... 6
1.2.2 Taxonomía ... 6
1.2.3 Taxonomía de Radopholus similis ... 8
1.2.4 Taxonomía de Paecilomyces sp. ... 9 1.2.5 Taxonomía de Trichoderma spp. ... 9 1.2.6 Trichoderma spp. ... 9 1.3 Fundamentación Legal ... 11 III CAPITULO 2 ... 12 ASPECTOS METODOLÓGICOS ... 12 2.1 Métodos ... 12 2.1.1 Tratamientos en estudio ... 12 2.2 Diseño experimental ... 13
2.3 Estadística descriptiva e inferencial ... 14
2.4 Variables ... 15
2.5 Población y muestra. ... 17
2.6 Técnicas de Recolección de datos ... 17
RESULTADOS ... 18
DISCUSIÓN ... 26
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ... 28
BIBLIOGRAFÍA ... 30
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ÌNDICE DE ANEXOS
Anexo N° 1: Imagen satelital de la zona en estudio ... 36
Anexo N° 2: Imagen satelital del Cantón en estudio ... 36
Anexo N° 3: Croquis del área en estudio ... 37
Anexo N° 4: Ficha técnica Agribionen ... 38
Anexo N° 5: Ficha técnica Thichobio ... 45
Anexo N° 6: Ficha técnica Bio- Root ... 53
Anexo N° 7: IMÁGENES DE ENSAYO 1 ... 55
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ÌNDICE DE APPÈNDICES
APÉNDICE N° 1: Esquema de ANOVA Peso de raíces Sanas (Ensayo 1) ... 59
APÉNDICE N° 2: Esquema de ANOVA Peso de raíces dañadas afectadas por nematodos (Ensayo 1) ... 60
APÉNDICE N° 3: Esquema de ANOVA Peso total de raíces extraídas por planta (Ensayo 1) ... 61
APÉNDICE N° 4: Esquema de ANOVA Porcentaje de raíces sanas (Ensayo 2) ... 62
APÉNDICE N° 5: Esquema de ANOVA Densidad poblacional de Radopholus similis (Ensayo 2) ... 63
APÉNDICE N° 6: Esquema de ANOVA Peso de raíces Sanas (Ensayo 2) ... 64
APÉNDICE N° 7: Esquema de ANOVA Peso de raíces dañadas por nematodos (Ensayo 2) ... 65
APÉNDICE N° 8: Esquema de ANOVA Peso de total raíces extraídas por planta (Ensayo 2) ... 66
APÉNDICE N° 9: Esquema de ANOVA Porcentaje de raíces sanas (Ensayo 2) ... 67
APÉNDICE N° 10: Esquema de ANOVA Densidad poblacional de Radopholus similis (Ensayo 2) ... 68
APÉNDICE N° 11: ANALISIS NEMATOLÓGICO INICIAL (Ensayo 1) ... 69
APÉNDICE N° 12: ANALISIS NEMATOLÓGICO FINAL (Ensayo 1) ... 70
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INTRODUCCIÓN
Caracterización del tema
El presente trabajo de investigación está enfocado en la implementación de alternativas de manejo del nematodo Radopholus similis que causan daños en las raíces de las plantaciones de banano.
Radopholus similis es considerado una de las plagas de mayor incidencia en los rendimientos del cultivo, los síntomas y daños del endoparásito los cuales penetran las células del sistema radical los síntomas de enfermedad se presentan en distintos órganos por la poca disponibilidad de absorción de nutrientes razón por la cual se hace necesario realizar nuevos estudios para contrarrestar las pérdidas económicas del cultivo. (Seenivasan, 2017).
En nuestro país el cultivo de banano es uno de los productos más exportados a nivel mundial, El Oro, los Ríos y Guayas son las provincias más grandes e importantes que exportan la musácea, los nematodos son las principales limitantes en el crecimiento y desarrollo, los daños que producidos por Radopholus similis pueden afectar aproximadamente el 22 % en el rendimiento de las plantaciones comerciales de banano (Jaramillo Aguilar, 2017).
El daño económico que producen los nematodos en los cultivos en todo el mundo, es por ello la importancia del correcto uso de nematicidas en el manejo de los fitopatógenos que mediante la comparación de ensayos ha sido posible la identificación de problemas o daños causados por nematodos en los cultivos y que estos no sean atribuidos a otros factores limitantes en la producción según lo señala (Almendariz et al, 2015).
El control químico ha sido por años una opción en el control de nematodos sin embargo estos no resultan los más adecuados debido al efecto residual que producen en los cultivos provocando que la actividad microbiana sea profundamente afectada según lo expresa. (Rendon, 2020).
2 Planteamiento de la Situación Problemática
La presencia de los nematodos en las raíces de las plantas de banano ocasiones pérdidas económicas al disminuir los rendimientos. Las plantas no logran absorber los nutrientes de manera eficiente, perjudicando por tanto al sistema fisiológico de la planta. La afectación por nematodos también ocasiona el volcamiento de la planta y la pudrición de las raíces.
El uso continuo de productos convencionales probablemente ha generado resistencia de este fitoparásito ocasionado por el uso excesivo o dosis inadecuadas de plaguicidas sin lograr un resultado favorable a la problemática.
Justificación e Importancia del Estudio
El uso de microorganismos en el manejo integrado de plagas ha demostrado ser una buena alternativa como agente de control biológico para reducir las poblaciones de R. similis en el cultivo de banano, dado que es de vital importancia en un combate que sea menos perjudicial por su alta toxicidad para el medio ambiente y sean más eficaces como lo indica. (Van der Veken et al., 2020).
En este sentido se plantea el uso de controles biológicos para disminuir la incidencia de Radopholus similis en plantaciones comerciales de banano en el Cantón Simón Bolívar Provincia del Guayas.
Delimitación del problema
La investigación se realizó en la finca Margarita; propiedad de la Sra. Margarita Saltos Jiménez, situada en el Cantón Simón Bolívar, Provincia del Guayas a 20 msnm, con las siguientes coordenadas geográficas UTM: X: 623714 de latitud sur, y Y: 9761577.
Formulación del problema
¿La incidencia de los nematodos en las raíces de las plantas de banano afecta la producción del cultivo en el Cantón Simón bolívar de la Provincia del Guayas?
3 Objetivos
Objetivo General
Evaluar el uso de diferentes biocóntroladores para el manejo de Radopholus similis en banano (Musa paradisiaca AAA), Cantón Simón Bolívar, Provincia del Guayas
Objetivos Específicos
Cuantificar la incidencia inicial de Radopholus similis en plantas de banano en el sector Rio Milagro del Cantón Simón Bolívar.
Analizar el porcentaje de daño en raíces de banano.
Determinar el control biológico del nematodo R. similis en plantas de banano. Realizar un análisis económico de los tratamientos en estudio mediante la
relación beneficio /costo.
Hipótesis
Los biocontroladores tendrán un control del nematodo fitoparásito R. similis en plantaciones de banano en el Cantón Simón Bolívar.
Aporte Teórico o Conceptual
Al finalizar el proyecto de investigación se espera obtener una alternativa eficiente para el control del nematodo Radopholus similis que afectan los rendimientos en la producción del cultivo de banano (Musa AAA).
Aplicación práctica
Los resultados del mejor tratamiento en campo y vivero sobre el manejo del Radopholus similis podrá ser aplicado en plantaciones de banano del Cantón Simón Bolívar, con la finalidad de mejorar los rendimientos y disminuir los costos de producción protegiendo al medio ambiente.
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CAPITULO 1.
MARCO TEÓRICO
1.1 Estado del ArteCabe indicar que debido al uso indiscriminado de bioplaguicidas el incremento de plagas y enfermedades fitosanitarias es alarmante por lo que se buscan alternativas.
Los nematodos fitoparásito en banano según lo que expresa (Da Silva Araujo et al., 2018). El sistema radical de las plantas de banano es influenciada por El uso de enmiendas orgánicas que incrementan los microrganismos del suelo que ayudan en la descomposición de los nutrientes disminuyendo los daños en las labores tradicionales dentro del cultivo.
Por otra parte, según investigaciones los extractos botánicos han demostrado ser una buena alternativa para bajar la incidencia de nematodos fitoparásito en el cultivo de banano debido a la cantidad de especies que ejercen propiedades nematicidas (Espinoza, 2017).
El uso de biocóntroladores que provienen de microorganismos en la actualidad representa una gran ventaja y diferencia entre los productos de síntesis químicas por ser amigables con el medio ambiente en el control de plagas (Bechem et al., 2018).
Según lo que explica (Chiriboga et al., 2015). Referente a los controles con Trichoderma spp. Este es un agente de control biológico con características muy favorables y ventajas por el rápido crecimiento en su desarrollo y además posee enzimas este logra desarrollarse en varios tipos de sustratos lo que resulta de gran ayuda para la producción en gran número y su utilización dentro de la agricultura.
El uso indiscriminado de moléculas químicas prácticas agrícolas entre ellas como el monocultivo han hecho que exista una urgencia por tratar de salvar el mundo de los cambios climáticos consiste en la producción de alimentos que vayan
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en armonía con lo natural utilizando técnicas alineadas a una agricultura sostenible (Soto, 2020).
Los hongos hematófagos como agente de control biológico han demostrado tener un buen potencial las investigaciones revelan que pueden existir variados resultados se les atribuyen a estas condiciones el poco estudio en lo que tiene que ver con la biología y la ecología de los patógenos información que es de suma importancia para determinar la eficiencia los hongos.
(Varela-Duran y Guazman, 2017).
Un aspecto importante es la actividad microbiana que sirve como indicador para poder evaluar sustancias contaminantes debido a que la masa microbiana juega un papel vital en la descomposición de la materia orgánica y aprovechamiento de nutrientes según lo señala (Montero, 2016) por tal razón es importante la conservación de los mismos en las prácticas agrícolas en el momento de realizar las labores agrícolas.
Una de las formas para competir con los patógenos es la utilización de la materia orgánica porque incrementa la estimulación en las poblaciones de los microorganismos del suelo consiguiendo contrarrestar las enfermedades que provocan los patógenos en su según lo expresa en su estudio (Pérez, 2019).
Las pérdidas económicas causadas por R. similis son significativas en las plantaciones de banano y la principal forma está en comprometer la salud de las raíces las cuales dejen de realizar sus funciones lo que conlleva a que las plantas pierdan anclaje y no exista una absorción de nutrientes adecuada ocasionando pérdidas en el rendimiento del cultivo como lo explica (Romero, 2018).
Los efectos del teflubenzorun son poco favorables sobre el manejo de los nematodos estos tienen a lixiviarse rápidamente luego de su aplicación cabe indicar que dependerá en gran medida de las condiciones de suelo donde exista mayor cantidad de materia orgánica tendría una mayor durabilidad cita además que no es demasiado toxico según manifiesta (Chuya, 2017).
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Las prácticas agrícolas como lo es la rotación de los cultivos en conjunto con el uso de semillas de calidad y resistentes a plagas y enfermedades más la aplicación de moléculas químicas en el trascurso del tiempo ha evidenciado un control poco favorable en el manejo de las enfermedades de cultivos de importancia económica según (Conrado et al., 2019).
1.2 Bases Científicas y Teóricas de la Temática 1.2.1 Cultivo de Banano
El cultivo de banano ocupa el cuarto producto de exportación a nivel mundial es uno de los más importantes a nivel mundial siendo el cultivo que más manos de obra necesita lo que da lugar a la generación de múltiples empleos a nivel mundial según lo señala (Vargas et al., 2017)
1.2.2 Taxonomía
La clasificación taxonómica del cultivo de banano se detalla de la siguiente manera según lo señala ( Zambrano, 2020).
Reino: Plantae División: Magnoliophyta Clase: Liliopsida Orden: Zingiberales Familia: Musaceae Género: Musa
Especie: M. paradisiaca AAA
Morfología Raíz
El sistema radical se encuentra se encuentran raíces primarias y secundarias donde luego de la fase de la floración se reducen en la emisión de nuevas raíces las mismas que pueden alcanzar hasta los 3 metros de largo y 1.5 de profundidad el tipo de suelo está relacionado con el anclaje de las raíces como lo manifiesta (Zambrano, 2020).
7 Fases Fenológicas
Dentro del desarrollo de una planta de banano está compuesta por dos fases la fase la vegetativa y la reproductiva la primera que se caracteriza por la emisión foliar lo que está relacionado con el desarrollo de la planta y la reproductiva que consiste en la finalización de la emisión de hojas y formación de los frutos segun indica (Bert et al., 2020).
Inflorescencia
Las flores femeninas como masculinas. Las flores femeninas se disponen en dos filas una encima de otra, y se le denomina a esto como mano, dispuestas en forma de hélice sobre el raquis; al grupo de todas estas flores y se diferencian por los brotes florales o racimos (Tuz, 2018).
Enfermedades
Las enfermedades fitosanitarias del cultivo de banano debido a la alta susceptibilidad; estas por lo general siempre están presentes en todo el ciclo dando lugar a grandes pérdidas en los rendimientos del cultivo, las condiciones climáticas favorecen la proliferación de plagas (Yanez, 2019).
Fertilización
La fertilización en el cultivo de banano está establecida por un correcto manejo de la fertilización si se desean alcanzar un máximo en sus rendimientos necesitan de macro y microelementos siendo los microelementos los que se aplican en mayores proporciones los cuales deben ser usados de manera oportuna en cada fase vegetativa del cultivo (Vera, 2018).
Riego
El banano es un cultivo muy sensible al déficit hídrico, por lo que no sebe faltarle diariamente cierta lámina de agua sobre todo en la época de ausencia de lluvias para evitar las perdidas en sus rendimientos según lo señala (Caicedo y Proaño, 2015).
8 1.2.3 Taxonomía de Radopholus similis
Clasificación Taxonómica Filo: Nematoda Clase: Chromadorea Orden: Rhabditida Suborden: Tylenchina Infraorden: Tylenchomorpha Superfamilia: Tylenchoidea Familia: Pratylenchidae Subfamilia: Radopholinae Género: Radopholus Especie: similis
Características morfológicas y ciclo de vida de Radopholus similis
En nematodo barrenador de raíces en condiciones óptimas logra desarrollar un ciclo biológico entre 22 y 25 días aproximadamente en los estadios dos, tres y cuatro momentos donde lesionan las raíces de las plantas siendo las hembras las más agresivas (Roy et al., 2018).
Parasitismo de Radopholus similis
Los endoparásitos producen modificaciones en toda la estructura del huésped, su ingreso lo realiza mediante el uso de un estilete que perfora la pared celular y se alimentan del citoplasma según lo manifiesta (Zavaleta, 2016).
Síntomas y Daños de Radopholus similis
R. similis es un nematodo endoparásito que se alimenta de las raíces de las plantas de banano y de plátano ocasionan daños irreparables dentro de los síntomas presentados por el nematodo es la atrofia que se produce en sistema radical los daños que provocan son las manchas de coloración oscuras en ocasiones logran llegar hasta el cormo y demás tejidos de las plantas como lo detalla (Cobeña, 2019).
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De acuerdo a lo indicado por (Vawa et al., 2016). R. similis produce en crecimiento limitado en las plantas de banano, aunque sus síntomas resultan de poca ayuda en la interpretación de daños provocados por nemátodos atribuyéndole en muchos de los casos a problemas de deficiencias nutricionales.
1.2.4 Taxonomía de Paecilomyces sp. Clasificación Taxonómica
Según lo detalla ( Bendezu, 2017) Reino: Fungi Filo: Ascomycota Clase: Sordariomycetes Orden: Hipocreales Familia: Ophiocordycipitaceae Género: Paecilomyces
Especie: Paecilomyces lilacinus
La especie de hongos Paecilomyces spp. Se desarrollan en rangos de temperatura que oscilan entre 8 y 38ºC; Sus conidióforos alcanzan longitud de 400 a 600 micras puede estar presente en diferentes sustratos cultivados según investigaciones se los ha encontrado en huevos de algunas especies de nematodos y también en diferentes cultivares como lo detalla (Barrera y Echenique, 2019).
1.2.5 Taxonomía de Trichoderma spp. Clasificación Taxonómica
Según lo define (Caiza, 2017). Reino: Fungi División: Ascomycota Subdivisión: Pezizomycotina Clase: Sordariomycetes Orden: Hypocreales Familia: Hypocreaceae Género: Trichoderma 1.2.6 Trichoderma spp.
Es un hongo Trichoderma ejercen un excelente control biológico su habilidad de sobrevivencia en condiciones adversas posee una fuerte actividad contra los
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hongos fitoparásito tiene la capacidad de colonizar rápidamente Por lo que se puede identificar a la Trichoderma como un buen controlador natural y es un buen promotor en el desarrollo de las plantas debido a su modo de acción en los cultivos de expresa (Hernández et al., 2019).
Dentro de los biocóntroladores más eficientes en la agricultura están los Trichoderma como un agente biocóntroladores y uno de los más usado en todo el mundo como lo describe (Flores et al., 2018).
Bio-Root Revitalizador
Existen elementos como el fósforo que por lo general se encuentran en cantidades deficiente en el suelo y las plantas no pueden aprovecharlo, una opción es el uso de los bioefectores que permiten que nutrientes sean movilizados en especial el fósforo estos BE son sustancias de microorganismos descritos en productos de nombres comerciales que se utilizan para una agricultura más amigable con el medio ambiente. (Holečková, 2017).
11 1.3 Fundamentación Legal
Constitución Política de la República del Ecuador Ley de Desarrollo Agrario
Capítulo I: Los Objetivos de la Ley Artículo 3. Políticas agrarias.
El fomento, desarrollo y protección del sector agrario se efectuará mediante el establecimiento de las siguientes políticas:
a) De cultivo, cosecha, comercialización, procesamiento y en general, de aprovechamiento de recursos agrícolas;
b) De capacitación integral al indígena, al montubio, al afroecuatoriano y al campesino en general, para que mejore sus conocimientos relativos a la aplicación de los mecanismos de preparación del suelo;
c) De preparación al agricultor y al empresario agrícola, para el aprendizaje de las técnicas modernas y adecuadas relativas a la eficiente y racional
administración de las unidades de producción a su cargo (Asamblea Nacional de la Republica del Ecuador, 2016).
CAPÍTULO V
Protección y recuperación de la fertilidad de la tierra rural l de producción Artículo 49.- Protección y recuperación. Por ser de interés público, el Estado impulsará la protección, la conservación y la recuperación de la tierra rural, de su capa fértil, en forma sustentable e integrada con los demás recursos
naturales; desarrollará la planificación para el aprovechamiento de la capacidad de uso y su potencial productivo agrario, con la participación de la población local y ofreciendo su apoyo a las comunidades de la agricultura familiar campesina, a las organizaciones de la economía popular y solidaria y a las y los pequeños y medianos productores, con la implementación y el control de buenas prácticas agrícolas (Asamblea Nacional de la Republica del Ecuador, 2016).
Ley Orgánica del Régimen de la Soberanía Alimentaria Investigación, Asistencia Técnica y Diálogo de saberes
Artículo 9. Investigación y extensión para la soberanía alimentaria. - El Estado asegurará y desarrollará la investigación científica y tecnológica en materia agroalimentaria, que tendrá por objeto mejorar la calidad nutricional de los alimentos, la productividad, la sanidad alimentaria, así como proteger y enriquecer la agrobiodiversidad.
Artículo 10. Institucionalidad de la investigación y la extensión.- La ley que regule el desarrollo agropecuario creará la institucionalidad necesaria encargada de la investigación científica, tecnológica y de extensión, sobre los sistemas alimentarios, para orientar las decisiones y las políticas públicas y alcanzar los objetivos señalados en el artículo anterior; y establecerá la asignación presupuestaria progresiva anual para su financiamiento (Ley Orgánica del Régimen de la Soberanía Alimentaria, 2014).
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III CAPITULO 2
ASPECTOS METODOLÓGICOS 2.1 Métodos
Experimental de campo
El ensayo se lo instaló durante el mes de octubre y noviembre, en un cultivo establecido de banano del subgrupo Cavendish clon Valery el proyecto de investigación conto con un análisis inicial y final de raíces de banano en los tratamientos de estudio, las muestras fueron debidamente analizadas por el laboratorio del Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias INIAP.
Experimental de Vivero
En el presente trabajo de investigación se utilizaron plantas meristematicas de banano clon Williams, el ensayo estuvo conformado por 5 tratamientos y 4 repeticiones donde procedió a evaluar los tratamientos en estudio bajo la dosis de aplicación de los biocóntroladores mediante recomendaciones técnicas de cada fabricante; las plantas meristemáticas de banano a diferencia del ensayo anterior estas fueron inoculadas con Radopholus similis de raíces que fueron extraídos en laboratorio del centro experimental Iniap donde las evaluaciones se realizaron de acuerdo a la condición del cultivo. Al finalizar el tiempo establecido se obtuvieron muestras de raíces de todas las plantas y se llevaron al laboratorio para su respectivo análisis.
2.1.1 Tratamientos en estudio
Se evaluaron 5 tratamientos y 4 repeticiones con biocóntroladores comerciales: Agrobioneem, Trichobio, Agrobioneem + Trichobio, Bio- Root por cada parcela y sus repeticiones dentro del diseño experimental.
13 Tabla N° 1. Tratamientos estudiados ( ensayo 1 – 2 )
________________________________________________________
Codigo Tratamientos Dosis/ha Dosis /planta Frecuencia/días T1 Paecilomyces spp. 1.0 L 0,66 mL 30- 60-90 T2 Trichoderma spp. 1.0 L 0,66 mL 30- 60-90 T3 Paecilomyces spp. 1.0 L + 1.0 L 0,66 mL + 0,66 mL 30- 60-90 +Trichoderma spp T4 Complejo revitalizador 1.0 L 0.66 mL 30- 60-90 T5 Testigo Absoluto - - -________________________________________________________
Elaborado por: Rodríguez Helen, 2020
2.2 Diseño experimental
El diseño experimental que se empleó en los dos trabajos de investigación fue el de Bloque Completos al Azar (DBCA), con 5 tratamientos y 4 repeticiones, el número total de parcelas experimentales fueron de 20 para los (ensayo 1) y (ensayo 2).
Análisis de varianza
Para el análisis de varianza se utilizó el siguiente esquema:
Tabla 2. Análisis de varianza
__________________________________________________ Fuente de variación Grados de libertad __________________________________________________ Tratamiento (t-1) 4 Repeticiones (r-1) 3 Error experimental (r-1) (t-1) 12 Total 19 ___________________________________________________ Elaborado por: Rodríguez Helen, 2020
14 Análisis Funcional
En la confrontación de los tratamientos se usó Tukey al 5% de probabilidad estadística. Los datos se trasformaron a logaritmo de base 10 y los resultados del análisis de varianza se proyectaron en números reales.
2.3 Estadística descriptiva e inferencial
Se Utilizó el análisis estadístico por medio de la comparación de medias la cual se realiza mediante la prueba Tukey al 5% de probabilidad de error. (p=0,05), el software estadístico utilizado es InfoStat.
InfoStat es un programa que permite realizar análisis estadísticos de bajo el desarrollado bajo la plataforma Windows. Está diseñado para cubrir las exigencias en la obtención de datos estadísticos tanto descriptivos como gráficos según lo expresa (InfoStat, 2018).
Manejo del ensayo en campo
En la finca Margarita ubicada en el Cantón Simón Bolívar Provincia del Guayas Sector Rio Milagro con una ubicación de coordenadas UTM X 671334 Y 9767605 se seleccionó un lote de 2 has de banano establecido del clon Valery con una densidad de 1500 plantas por hectárea y riego subfoliar, se procedió a instalar el ensayo de biocóntroladores para manejar y equilibrar poblaciones de R. similis en banano, en este lote se realizaron análisis de raíces para constatar la población de nematodos existes, del lote de 2 has se tomaron muestras de raíces para analizar cuál de aquellos lotes poseían R. similis, cabe indicar que esta finca no había sido tratada con enraizadores ni nematicidas por varios años, luego del muestreo del lote y con los resultados de las muestras analizadas en el laboratorio del Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias INIAP Estación experimental Boliche; se procedió a la instalación del ensayo la cual empezó con la delimitación del terreno y medición de las parcelas con sus respectivos tratamientos, durante la época lluviosa se seleccionaron plantas recién paridas con hijos de altura de entre 1,5 a 2 metros, se tomaron frente al hijo realizando un hoyo de 30 centímetros de longitud por 30 cm de ancho y 30 cm de profundidad, se obtuvieron 3 submuestras por cada parcela; conformando 4 muestras por cada uno de los tratamientos las cuales fueron trasladadas al laboratorio antes mencionado. El área del proyecto de investigación es de 5.292 metros cuadrados conformado
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por 5 tratamientos y 4 repeticiones, el área total de cada parcela experimental es de 264,60 metros cuadrados; existiendo entre 35 a 40 plantas aproximadamente donde se seleccionaron 3 plantas útiles por parcela dando un total de 60 plantas en su estudio, La aplicación de los biocóntroladores en cada tratamiento fue dirigida frente del hijo en tres pases en dren y en media luna con bomba de mochila y boquilla 65 – 15 a una distancia de 25 cm del suelo aproximadamente a dosis de 0.66 mL/planta de cada unidad de producción con una frecuencia de 30, 60, y 90 días.
Manejo del ensayo en vivero
El procedimiento de extracción, análisis y la dosis de recomendación para la inoculación de R. similis estuvo dada mediante los servicios y colaboración del laboratorio de la Estación Experimental Boliche del Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias INIAP. Para este ensayo se utilizaron 60 plantas meristemáticas clon Williams con 5 semanas de edad y 25 cm de altura al momento de haber sido trasplantadas en fundas llenas con suelo solarizado, el distanciamiento entre planta fue de 80 cm x 80 cm, donde se evaluaron 5 tratamientos con 4 repeticiones y 4 plantas útiles por parcela haciendo un total de 12 plantas por cada tratamiento. Se inocularon con 500 R. similis por cada planta. A los 15 días, luego de la inoculación con R. similis se realizó la aplicación de las dosis de 0,66 mL por cada planta con una frecuencia de 30, 60 y 90 días. Se realizaron 3 riegos semanales.
2.4 Variables
Variable Independiente
Los tratamientos utilizados fueron cinco y cuatro repeticiones con dosis comerciales; los tratamientos en estudio serán los señalados a continuación: Paecilomyces spp.; Trichoderma spp.; Paecilomyces spp. + Trichoderma spp. y complejo revitalizador a base de macro y microelementos.
Datos evaluados
Se realizó las evaluaciones de 0 y 90 días, para los 2 ensayos en estudio. Las variables evaluadas fueron:
16 Peso total de raíces extraídas por tratamiento
Después de la recolección de las muestras de raíces se lavaron con cuidado sobre un tamiz No. 20 y cuando el agua haya escurrido se registró su peso en gramos totales por plantas, es decir en las categorías de sanas y dañadas (Triviño et al., 2013).
Peso de raíces sanas
El peso de raíces sanas se lo obtuvo con la ayuda de una balanza electrónica. Luego de la lectura del peso y mediante cálculo matemático se obtuvo el peso de raíces sanas.
Peso de raíces dañadas afectadas por nemátodos
En este procedimiento se clasificaron las raíces dañadas afectadas por nematodos, y se procedió a pesarlas en una balanza electrónica. Y se realizó mediante formula el porcentaje de las raíces sanas, luego se hizo un corte recto tipo longitudinal con un cuchillo, estas fueron picadas en cuadritos bien pequeños y removidas homogéneamente una vez finalizado este trabajo se procedió a licuarlos en una solución con 100 mL con agua en tiempos de dos segundos.
Porcentaje de raíces sanas
El porcentaje de las raíces sanas se lo hizo mediante la siguiente formula Una vez realizado el peso de las raíces, se efectuó el cálculo matemático para obtener el porcentaje de raíces sanas mediante formula:
Peso de raíces sanas (g)
% RS = ____________________ X 100 Peso total de raíces (g)
Densidad poblacional de nematodos fitoparásito Radopholus similis
Para los niveles poblacionales se determinaron por el método de „‟Licuado -Tamizado‟. Se evaluó la población de R. similis con el uso de un microscopio y contadores-chequeadores el valor de cada especie o género es multiplicado por 200 y el equivalente corresponde a la densidad poblacional en 100 g de raíces totales. (Triviño et al., 2013).
17 2.5 Población y muestra.
La evaluación de variables fue determinada por diferencias entre los tratamientos en estudio.
Muestra
Las muestras de raíces fueron bajo el análisis de laboratorio correspondiente a 5 submuestras que equivalen a una hectárea para identificar la presencia de Radopholus similis (Triviño et al., 2013).
2.6 Técnicas de Recolección de datos
Para el caso de la recolección de datos de las poblaciones de nematodos, pesos totales, porcentajes de las raíces sanas y dañadas; estas se determinaron mediante análisis de laboratorio del Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias INIAP.
En la obtención de datos para los tratamientos de los biocontroladores estos fueron aplicados con frecuencia de 30 días durante 90 días de estudio mediante análisis estadístico de InfoStat.
18
RESULTADOS
Cuantificar la incidencia inicial de Radopholus similis en plantas de banano en el sector Rio Milagro del Cantón Simón Bolívar en condiciones de campo Densidad poblacional de nematodo fitoparásito Radopholus similis
La densidad poblacional de R. similis inicial con mayor población fue del tratamiento de Paecilomyces spp con 8.325 especímenes en 100 g de raíces, seguido de Trichoderma con 8.175 mientras que el tratamiento de la combinación entre Paecilomyces spp. y Trichoderma spp. Tuvo una menor población de 6.675 nematodos con un C.V. = 2.54 % (Figura 1).
Figura 1 Densidad poblacional de nematodos Radopholus similis antes de la aplicación de los tratamientos Elaborado por: Elaborado por: Rodríguez H, 2021.
Analizar el porcentaje de daño en raíces de banano. Peso de raíces sanas
La fuente de variación del peso de raíces sanas no fue significativa a los 90 días luego de la aplicación de los tratamientos; los valores más altos, lo registró la mezcla entre Paecilomyces con Trichoderma en cuanto a la producción de raíces sanas con una media de 128,75 g, el tratamiento Paecilomyces con el menor peso de raíces sanas con 90 g, C.V. = 10.13% (Figura 2).
8325 8175 6675 7575 6975 0 1000 2000 3000 4000 5000 6000 7000 8000 9000
Paecilomyces Trichoderma Paecilomyces + Trichoderma BioRoot Testigo Dens ida d po bl ac ion al en 10 0 g d e raíc es Tratamientos
19
Figura 2. Peso de raíces sanas antes y después de la aplicación de los tratamientos. Elaborado por: Elaborado por: Rodríguez H, 2021.
Porcentaje de raíces sanas
El tratamiento que presento el mejor porcentaje de raíces sanas fue el Bio Root con un 5,2 % de incremento seguido por Paecilomyces + Trichoderma (1%) y Trichoderma con el 0,5 % de aumento en relación al muestreo inicial (Figura 3), sin embargo, no hubo diferencia estadística entre los tratamientos C.V. = 12.96%
Figura 3 Porcentaje de raíces sanas antes y después de la aplicación de los tratamientos. Elaborado por: Elaborado por: Rodríguez H, 2021.
Peso de raíces dañadas afectadas por nemátodos
El daño producido en el sistema radical por nematodos se redujo en los tratamientos Bio-Root de 14,75 g, seguido de por Paecilomyces (17,25 g) y Trichoderma (8 g) (Figura 4), en el análisis de varianza se demostró que no existe diferencia estadística. Con C.V. = 2,04%.
57,3 50,8 59,6 53,8 50,0 49,1 51,3 60,6 59,0 56,5 0,0 10,0 20,0 30,0 40,0 50,0 60,0 70,0
Paecilomyces Trichoderma Paecilomyces + Trichoderma BioRoot Testigo P orc en taj e de r ai c es s an as Tratamientos Antes Después 79,5 94,5 108 116,25 96 90 97,5 128,75 101,25 101,25 0 20 40 60 80 100 120 140
Paecilomyces Trichoderma Paecilomyces + Trichoderma BioRoot Testigo P es o de r ai c es s an as en g. Tratamientos Antes Despues
20 Figura 4. Peso de raíces dañadas afectadas por nemátodos antes y después de la
aplicación. Elaborado por: Elaborado por: Rodríguez H, 2021.
Peso total de raíces por planta
En la evaluación efectuada a los 90 días se notó un incremento de 40 g aproximadamente en la mezcla comercial entre Paecilomyces + Trichoderma de 226,25 g. En relación con el testigo que fue de 177,5 g (Figura 5). C.V. = 2.51 %
Figura 5 Peso total de raíces por planta antes y después de la aplicación de los tratamientos. Elaborado por: Elaborado por: Rodríguez H, 2021.
Determinar el control biológico del nematodo Radopholus similis en plantas de banano
Según el análisis de varianza en la variable control de nematodo Radopholus similis en plantas de banano no se encontró variabilidad estadística con un coeficiente de variación de 2,54 %. Sin embargo, encontramos una diferencia numérica con mayor control en la población (15.375) especímenes, con el T3 el mismo que se aplicó Paecilomyces + Trichoderma, mientras que el tratamiento con menor control fue el T4 con 26000 (Figura 6).
54 74,25 57,75 77,25 90 71,25 66,25 65 62,5 81,25 0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100
Paecilomyces Trichoderma Paecilomyces + Trichoderma BioRoot Testigo P es o de r aíc es da ña da s af ec tad as po r ne m ato do s Tratamientos Antes Despues 141,75 191,25 180 209,25 192,75 190 196,25 226,25 178,75 177,5 0 50 100 150 200 250
Paecilomyces Trichoderma Paecilomyces + Trichoderma BioRoot Testigo P es o tot al de r ai c es po r pl an ta en g. Tratamientos Antes Despues
21
Los tratamientos no ejercieron control sobre las poblaciones iniciales de los nematodos durante el tiempo evaluado de 90 días. Lo que indica que R. similis no detuvo su reproducción y por el contrario aumentó sus niveles poblacionales demostrando una elevada actividad en las raíces.
Se observó que los tratamientos que presentaron mayor población del nematodo en estudio fueron el T5 y el T4 dado que este último es un estimulante radical y no tiene efecto nematicida.
Los tratamientos Paecilomyces, Trichoderma, Paecilomyces + Trichoderma mostraron efecto reductor en poblaciones, sin embargo, los tratamientos no ejercieron un efectivo control del nematodo.
Figura 6 Densidad poblacional de nematodos Radopholus similis antes y después de la aplicación de los tratamientos Elaborado por: Elaborado por: Rodríguez H, 2021.
Densidad poblacional de nematodos fitoparásitos Radopholus similis en invernadero.
La densidad poblacional de nematodos fitoparásitos R. similis, el tratamiento que presento menor población fue Trichoderma con 17.000 especímenes en relación al testigo de 18.500 cabe mencionar que no hubo diferencia estadística entre los tratamientos evaluados con un coeficiente de variación de 7,15 % como se muestra en la (Figura 7). Los microrganismos en este estudio: con la combinación de Trichoderma y Paecilomyces, demostraron antagonismo dado estos compiten por espacio y se desplazan entre sí.
8325 8175 6675 7575 6975 20000 16000 15375 26000 22250 0 5000 10000 15000 20000 25000 30000
Paecilomyces Trichoderma Paecilomyces + Trichoderma BioRoot Testigo Densid ad po bl ac ion al en 10 0 g Tratamientos Antes Despues
22 Figura 7. Densidad poblacional de nematodos Radopholus similis después de la aplicación
de los tratamientos. Elaborado por: Elaborado por: Rodríguez H, 2021.
Peso de raíces sanas
En el peso de raíces sanas se pudo evidenciar un incremento de 18,7 g, donde se aplicó el biocontrolador Trichoderma (122.5 g) en relación al testigo (103,8 g), sin embargo no hubo diferencia estadística entre los tratamientos evaluados (Figura 8). C.V. = 7,61%.
Figura 8. Peso de raíces sanas después de la aplicación de los tratamientos. Elaborado por: Elaborado por: Rodríguez H, 2021.
23125,0 17000,0 23750,0 20875,0 18500,0 0,0 5000,0 10000,0 15000,0 20000,0 25000,0
Paecilomyces Trichoderma Paecilomyces + Trichoderma BioRoot Testigo P o b lac ion d e R . simis en 10 0 g de raíc es Tratamientos 100,0 122,5 81,3 87,5 103,8 0,0 20,0 40,0 60,0 80,0 100,0 120,0 140,0
Paecilomyces Trichoderma Paecilomyces + Trichoderma BioRoot Testigo P es o d e raíc es sa n as en g Tratamientos
23 Porcentaje de raíces sanas
En el porcentaje de raíces sanas no hubo diferencia estadística entre tratamientos evaluados, prestando el mayor porcentaje de raíces sanas el tratamiento de Trichoderma con 24,1% (Figura 9) y mostro un C.V. = 8,57%.
Figura 9 Porcentaje de raíces sanas después de la aplicación de los tratamientos. Elaborado por: Elaborado por: Rodríguez H, 2021.
Peso de raíces dañadas afectadas por nemátodos
Los tratamientos donde se aplicaron los biocóntroladores a base de Trichoderma fue de 321,3 g, mientras que Paecilomyces + Trichoderma fue de 313,8 g los cuales mostraron el menor peso de raíces dañadas por nematodos y se diferenciándose aritméticamente al testigo (351,3 g) y a Paecilomyces (383,8 g) (Figura 10) y un C.V. = 12,33%.
Figura 10. Peso de raíces dañadas afectadas por nemátodos después de la aplicación de los tratamientos. Elaborado por: Elaborado por: Rodríguez H, 2021.
383,8 321,3 313,8 330,0 351,3 0,0 50,0 100,0 150,0 200,0 250,0 300,0 350,0 400,0 450,0
Paecilomyces Trichoderma Paecilomyces + Trichoderma BioRoot Testigo P es o d e raíc es d añad as p o r nem áto d o s en g . Tratamientos 18,8 24,1 18,3 19,0 21,0 0,0 5,0 10,0 15,0 20,0 25,0 30,0
Paecilomyces Trichoderma Paecilomyces + Trichoderma BioRoot Testigo P orc en taj e de r aíc es sa n as Tratamientos
24 Peso total de raíces extraídas por planta
En el tratamiento donde se aplicó el biocontrolador Paecilomyces presentó el mayor peso de raíces con 528,8 g, Trichoderma con 491,3 g, y en la interacción entre Paecilomyces + Trichoderma el peso fue de 430 g (Figura 11), y un C.V= 4,10%
Figura 11 Peso total de raíces por planta después de la aplicación de los tratamientos. Elaborado por: Rodríguez H, 2021.
Análisis económico de los tratamientos en estudio mediante la relación beneficio /costo.
Al realizar un análisis en base al beneficio costo del mejor tratamiento en este estudio se expone que el tratamiento 3 de Paecilomyces y Trichoderma en condiciones de campo obtuvo una mejor respuesta en el manejo con menores poblaciones en relación al testigo con un costo de aplicación de USD 156,00, seguido del tratamiento 2 cuyo costo es de USD 87,00
528,8 491,3 430,0 440,0 483,8 0,0 100,0 200,0 300,0 400,0 500,0 600,0
Paecilomyces Trichoderma Paecilomyces + Trichoderma BioRoot Testigo P es o t o tal d e raíc es en g . Tratamientos
25
Análisis Económico de costos de los biocontroladores en los tratamientos.
TRATAMIENTO DOSIS COSTO DE PRODUCTOS/ USD/Ha COSTO DE APLICACIÓN USD/Ha COSTO POR APLICACIÓN NUMERO DE APLICACIONES COSTO TOTAL APLICACION/ Ha Paecilomyces spp. 1 L/Ha 23,00 $ 6,00 29 3 $ 87 Trichoderma spp. 1 L/Ha 23,00 $ 6,00 29 3 $ 87 Paecilomyces spp. + Trichoderma spp. 2 L/Ha 46,00 $ 6,00 52 3 $ 156 Complejo revitalizador 1 L/Ha 15,00 $ 6,00 21 3 $ 63
Cuadro 1. Análisis Económico de costos de los biocontroladores en los tratamientos. Elaborado por: Rodríguez H, 2021
26
DISCUSIÓN
El porcentaje de raíz funcional de las plantas tratadas fueron mayores que el tratamiento testigo, aunque las poblaciones de Radopholus similis no disminuyeron concordando con Torres et al., (2019), quienes mencionan que, a pesar de la presencia de R. similis; se mejora la microflora del suelo, activando el crecimiento radical de las plantas, estimularon la producción de nuevas raíces para maximizar la absorción de los nutrientes.
Según lo expone Lazo et al., (2017), la presencia de R. similis afecta el desarrollo del sistema radical, lo que resulta importante señalar la efectividad de los microorganismosen plantas inoculadas con biocóntroladores que incrementan el peso de las raíces; lo cual coincide con la respuesta positiva en cuanto al incremento del sistema radical encontrados en los resultados del presente estudio.
Vargas et al., ( 2015), menciona que al control biológico como una de las alternativas en el manejo de R. similis con el uso de los hongos Trichoderma spp., y Paecilomyces lilacinus. Por lo que crean una respuesta muy satisfactoria dado al potencial de los microrganismos que tienen la capacidad de combatir varias especies de nematodos en varios cultivos alrededor de muchos países evidenciándose su medio de acción en parasitismo, aunque las poblaciones de R. similis no disminuyeron estas no alcanzaron un alto impacto en los tratamientos estudiados, el combate biológico en este sentido se debe emplear alternativas en donde se logre obtener el establecimiento y la reproducción de los microorganismos aplicados que resulten en un control más eficiente de los nematodos fitoparásitos. Para lo cual se confirma lo expuesto con los resultados obtenidos en los presentes ensayos tanto en campo como en invernadero.
En la presente investigación entre las especies de microorganismos Trichoderma en combinación con Paecilomyces, demostraron antagonismo, competencia física y bioquímica por espacio y nutrientes lo cual coincide con lo que describe Poveda et al., (2020), que los hongos son capaces de colonizar en las raíces de las plantas y reducir daños ocasionados por los nematodos por acción de parasitismo, parálisis, competencia por sustrato, antagonismo y antibiosis.
27
Kepenekcl et al., ( 2017), detalla que P. lilacinum resulta ser muy eficiente porque mejora las condiciones y aspectos de la planta tratada que se reflejan en su crecimiento y peso de raíces lo que está relacionado principalmente a la dosis de conidios empleada, por otro lado indica que los efectos ambientales perjudican y pueden obstaculizar en gran medida el desempeño de los biocontroladores sobre el cultivo, lo cual confirma la respuesta de los resultados obtenidos en el presente estudio experimental.
Las plantas que fueron tratadas con Paecilomyces, Trichoderma, Paecilomyces + Trichoderma no mostraron una mayor agresividad en las poblaciones de R. similis, sin embargo, los tratamientos no ejercieron un efectivo control del nematodo. Lo cual coincide con lo expresado por Gortari y Roque ( 2016), P. lilacinum no es estrictamente un hongo nematófago sino un parásito oportunista que infecta, coloniza y consume estructuras reproductivas de los nematodos de raíces durante su ciclo de vida.
En relación al presente estudio, R. similis no obtuvo un efecto controlador sobre las poblaciones iniciales de los nematodos durante el trabajo de investigación evaluado de 90 días, el endoparásito no detuvo su reproducción,y demostró una elevada actividad en las raíces de las plantas evaluadas, lo que coincide con lo que expresa Guzmán (2015), quien expone que los endoparásitos migratorios completan el ciclo de vida dentro de las raíces de las plantas entre 20 y 25 días y en ocasiones produce varias generaciones sin estar expuestos a los antagonistas.
28
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
CONCLUSIONES:
Este trabajo experimental estuvo dirigido a determinar el uso de biocóntroladores para manejar y equilibrar poblaciones de R. similis en banano puesto que el control biológico en el manejo integrado de plagas ha demostrado ser una buena alternativa en relación a las prácticas tradicionales o químicas en plantaciones comerciales, según los resultados se concluye lo siguiente:
En los presentes ensayos se pudo observar que en las plantas tratadas con los biocóntroladores no existió una disminución de las poblaciones de R. similis pero cabe indicar que estas no alcanzaron una mayor agresividad observándose un equilibrio en las poblaciones de los nematodos en relación al testigo y al corto periodo del ensayo experimental.
Se concluye que el tiempo de evaluación fue muy corto dado que los microorganismos biológicos requieren mayor tiempo para adaptarse al ambiente competir con otros patógenos, establecerse y ejercer un control más efectivo.
29 RECOMENDACIONES:
En base a las conclusiones se recomienda:
La dosis de 4x10^8 esporas/planta con un tiempo de mayor del estudio para observar la eficacia de los tratamientos en cuanto al manejo adecuado de nematodos y sanidad del sistema radical, ya que por tratarse de productos biológicos su capacidad de respuesta es más lenta.
Se sugiere realizar ensayos de interacción entre los hongos Paecilomyces y Trichoderma con la misma frecuencia de aplicación para correlacionar la respuesta del cultivo de banano y aumenta el tiempo de evaluación en 12 meses.
Se recomienda implementar programas de biocóntroladores para el manejo integrado de plagas (nematodos) ya que esto nos permite mejorar las condiciones edáficas de los suelos para contribuir a la sanidad y protección vegetal de los cultivos y medio ambiente.
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BIBLIOGRAFÍA
Almendariz , I., Quiña, D., Rios, M., & Landazuri, P. (2015). Nematodos Fitopatogenos Y Sus Estrategias De Control. Rumiñahuii Sangolqui: Universidad De Las Fuerzas Armadas Espe. Obtenido De Http://Repositorio.Espe.Edu.Ec/Jspui/Bitstream/21000/10174/3/Nem%C3% A1todos%20fitopat%C3%B3genos.Pdf
Araujo, D. S. (2018). Bacillus Subtilis No Tratamento De Mudas De Bananeira Infectadas Por Fitonematoides. Scielo.
Asamblea Nacional De La Republica Del Ecuador. (2016). Ley Organica De Tierras Rurales Y Territorios Ancentrales. Quito: Editora Nacional. Recuperado El
20 De Febrero De 2018, De
Http://Www.Eltelegrafo.Com.Ec/Images/Cms/Edicionimpresa/2016/Marzo/1 4-03-16/14-03-16-Pol-Ley-De-Tierras.Pdf
Barrera, J., & Echenique, D. (2019). Efecto De Crecimiento De Hongos Antagonistas (Trichoderma Sp Y Gliocladium Sp) Frente A Hongos Entomopatógenos (Metarhizium Sp, Paecilomyces Sp Y Beauveria Sp) En Medio Nutritivo De Pda. Universidad De Los Llanos. Obtenido De Https://Repositorio.Unillanos.Edu.Co/Bitstream/001/1410/3/Efecto%20de% 20hongos%20antagonistas.Pdf´
Bechem. (2018). Nematicidal Properties Of Endophytic Fungi Isolated From Some Musa Species In Cameroon, For The Management Of Radopholus Similis And Platylenchus Coffeae. Journal Of Advances In Biology & Biotechnology. Bendezu, R. (2017). Control De Meloidogyne sp. En Vivero De Coffea Arabica L. Mediante Quinoleína Fenolica, Paecilomyces Lilacinus Y Estiércol En La Zona De Satipo. Satipo, Perú: Universidad Nacional Del Centro Del Perú Facultad De Ciencias Agrarias.
Bert. (2020). Banana Biomass Estimation And Yield Forecasting From Non-Destructive Measurements For Two Contrasting Cultivars And Water Regimes. Agronomy.
Caicedo , O & Proaño, J. (2015). Programación Del Riego Del Banano (Musa Paradisiaca) En Finca San José 2, Los Ríos, Ecuador. Scielo.
31
Caiza, S. (2017). Evalucion De La Capacidad Antagonica De Trichoderma Comercial ( Trichoderma Harzianum) Y Trichoderma Nativo ( Trichoderma Spp) Frente A Los Patogenos Alternaria Sp. Fusarium Oxysporum Y Heterosporium Hechilonatum Del Cultivo Del Calvel. Quito: Escuela
Politecnica Nacional. Obtenido De
Https://Bibdigital.Epn.Edu.Ec/Bitstream/15000/17534/1/Cd-8039.Pdf
Chiriboga , H., Gómez , G., & Garcés, K. (2015). Trichoderma Spp. Para El Control Biológico De Enfermedades. Instituto Interamericano De Cooperación Para
La Agricultura (Iica), 13. Obtenido De
Https://Repositorio.Iica.Int/Bitstream/Handle/11324/2647/Bve17038725e.Pd f;Jsessionid=Dcfa41c1d8f71d0aca1f956cde6c1ef5?Sequence=1
Chuya, J. (2017). Efecto De Teflubenzuron A Diferentes Concentraciones En El Control De Nematodos En El Cultivo De Banano (Musa Aaa). Machala: Universidad Técnica De Machala.
Cobeña, J. (2019). Efecto Del Fluopyram (Verango) En El Control De. Guayaquil: Universidad De Guayaquil.
Conrado Meyer, M., Miguel Mazaro, S., & Da Silva, J. (2019). Trichoderma. Corporación Brasileña De Investigación Agropecuaria. Obtenido De File:///D:/Tesis/Fraceto.Lf.%20versaoeditor.Soro.Uso.Pdf.Pdf
Espinoza. (2017). Extractos Botanicos Con Potencial Aplicacionen El Control De Nematodos En El Cultivo De Banano. Machala: Unidad Tecnica De Machala. Flores E, Huanca G, Onofre X, Jimenez P, Torres M, Guarachi H, . . . Fernandez Chavez. (2018). Producción De Trichoderma Spp, En Diferentes Sustratos. Revista Estudiantil Agro – Vet.
Gortari, M., & Roque , A. (2016). Purpureocillium Lilacinum Lpsc # 876: Producción De Conidias En Cultivos Sobre Sustratos Sólidos Y Evaluación De Su Actividad Sobre Nacobbus Aberrans En Plantas De Tomate. Revista De La Facultad De Agronomía, La Plata.
Hernández, D., Ferrera, R., & Alarcón, A. (2019). Trichoderma: Importancia Agrícola,Biotecnológica, Y Sistemas De Fermentación Para Producir Biomasa Y Enzimas De Interés Industrial. Scielo. Obtenido De
32
Holečková, Z. K. (2017). Use Of Active Microrganisms In Crop Production–A Review. Journal Of Food Processing And Technology.
Infostat Software Estadistico. (2018). Infostat Software Estadistico. Obtenido De Https://Www.Infostat.Com.Ar/
Jaramillo Aguilar, E. E. (2017). Utmach. Machala. Obtenido De Http://Repositorio.Utmachala.Edu.Ec/Handle/48000/11345
Kepenekcl. (2017). Effect Of Purpureocillium Lilacinum On Root Lesion Nematode,Pratylenchus Thornei. Tarım Bilimleri Dergisi Journal Of Agricultural Sciences.
La Ley Orgánica Del Régimen De La Soberanía Alimentaria. (S.F.). La Ley
Orgánica Del Régimen De La Soberanía Alimentaria. 2017:
Http://Www.Asambleanacional.Gob.Ec/Es/Contenido/Manuscritos_Desde_ La_Asamblea_0.
Lazo, Y., Morales, A., Guanolisa, D., Olalla, T., Arteaga, Y., García, Y., . . . Universidad Estatal Amazónica Carrera De Forestal. (2017). Efecto De La Aplicación De Microorganismos Eficientes En La Producción De Musa Paradisiaca Variedad Valery. Revista Amazónica Ciencia Y Tecnología.
Obtenido De
File:///D:/Tesis/Dialnet-Efectodelaaplicaciondemicroorganismoseficientesenl-6413707.Pdf
Ley Orgánica Del Régimen De La Soberanía Alimentaria. (22 De Enero De 2014). Www.Asambleanacional.Gob.Ec. Recuperado El 20 De Febrero De 2018,
De Www.Asambleanacional.Gob.Ec:
Http://Www.Asambleanacional.Gob.Ec/Es/Contenido/Manuscritos_Desde_ La_Asamblea_0
Montero, C. D. (Diciembre De 2016). Vinagre Como Desecante De Plantas De Cobertura. Fundacion Dialnet, Págs. 16-25.
Nury Pérez Valdés, A. S. (2019). Aplicación De Inductores De Resistencia Abióticos En Banano Para El Control De Fusarium Sp / Abiotic Application Of Inductors Of Resistance In Banana For Fusarium Sp. Control. Revista Cientifica De Lka Universiudad Mde Maximo Gomez Baez De Ciego De Avila.
Óscar Adrián Guzmán Piedrahita. (2015). El Nematodo Barrenador (Radopholus Similis [Cobb]. Revista Luna Azul (On Line). Obtenido De Https://Scholar.Google.Es/Citations?User=Awsssxaaaaaj&Hl=Es&Scioq=M
orfologia+De+Radopholus&Oi=Sra#D=Gs_Md_Cita-33
D&U=%2fcitations%3fview_Op%3dview_Citation%26hl%3des%26user%3d awsssxaaaaaj%26citation_For_View%3dawsssxaaaaaj%3a9zlfyxvoiumc% 26tzom%3d300
P. Calle U, J. Gonzaga D., S. Córdova C, E. Moretti A, & K. Núñez H. (2017). Manejo Integrado De Nematodos Del Cultivo De Banano Orgánico En Tumbes. Revista Peruana De Entolomogía. Obtenido De File:///D:/Tesis/1088-Texto%20del%20art%C3%Adculo-4237-1-10-20201219.Pdf
Poveda, (2020). Control Biológico De Nematodos Fitoparásitos Por Hongos Filamentosos Inductores De Resistencia: Trichoderma , Hongos Micorrízicos Y Endofíticos. Fronteras En Microbiología.
Rendon, L. (6 De Febrero De 2020). Capacitación A Productores Sobre El Nematodo Fitoparásito Radopholus Similis, En Cultivos De Musáceas Y Su Respectivo Biocontrolador, Paecilomyces Lilacinus, En El Municipio De Andes-Antioquia, Colombia. Antoquia Colmbia: Universidad De Antioquia.Facultad De Ciencias Exactas Y Naturales. Obtenido De Http://Bibliotecadigital.Udea.Edu.Co/Bitstream/10495/18372/1/Rend%C3% B3nluisa_2020_Radopholussimilis.Pdf
Romero, J. (2018). Uso De Hongos Del Género <I>Trichoderma Spp.</I> Como Controlador De Nematodos En El Cultivo De Banano. Machala: Universidad
Tecnica De Machala. Obtenido De
Http://Repositorio.Utmachala.Edu.Ec/Bitstream/48000/12915/1/De00006_E xamencomplexivo.Pdf
Roy, S. (2018). Ntra-Specific Morphological And Morphometric Variability Of Radopholus Similis(Cobb, 1893) Thorne, 1949. Ournal Of Applied And Natural Science.
Seenivasan. (2017). Management Of Radopholus Similis And Helicotylenchus Multicinctus In Ratoon Banana Grown Under High Density Planting Systems. Soto, G. (2020). El Continuo Crecimiento De La Agricultura Orgánica: Orgánico 3.0.
Revista De Ciencias Ambientales. Obtenido De
Https://Www.Scielo.Sa.Cr/Pdf/Rca/V54n1/2215-3896-Rca-54-01-215.Pdf Torres, P., Segura, R., Sandoval, J., Ortega, R., & Samuels, J. (2019). Manejo De
La Sanidad Radical Del Cultivo Del Banano Mediante Rizoestimulantes Microbianos, Enmiendas Orgánicas Y Minerales. Centro De Investigaciones De Corbana. Obtenido De File:///D:/Tesis/Articulorizoestimulantes.Pdf
34
Triviño, G. C., Santillán, D. N., & Velasco, L. V. (2013). Guía Para Reconocer Daño En Raíces Y Métodos De Muestreo Y Extracción De Nemátodos En Raíces Y Suelo. Boletín Divulgativo No. 433, 09- 16. Obtenido De Http://Repositorio.Iniap.Gob.Ec/Handle/41000/3849
Tuz, I. (2018). Manejo Integrado Del Cultivo De Banano (Musa X Paradisiaca L.) Clon Williams, Usando Biocarbón Y Microorganismos Eficientes. Machala: Unidad Académica De Ciencias Agropecuarias.
Varela Ingrig, Duran Joaquin, & Guazman Tomas. (2017). Evaluación In Vitro De Diez Cepas De Hongos Nematófagos Para El Control De Meloidogyne Exigua, Meloidogyne Incognita Y Radopholus Similis. Scielo, 27-37.
Vargas . (2017). Prácticas Efectivas Para La Reducción De Impactos Por Eventos Climáticos En El Cultivo De Banano En Costa Rica. Costa Rica: Consultor
Clada, Catie. Obtenido De
Http://Www.Mag.Go.Cr/Bibliotecavirtual/Reduccion-Impacto-Por-Eventos-Climaticos/Informe-Final-Banano.Pdf
Vargas, R., Wang, A., Obregón, M., & Araya, M. (2015). Efecto De Trichoderma Spp., Paecilomyces Lilacinus Y La Inyección De Nematicida En El Pseudotallo En El Combate De Radopholus Similis Y La Producción De Banano. Agronomía Costarricense. Obtenido De File:///D:/Tesis/0377-9424-Ac-39-02-00061.Pdf
Vawa. (2016). Host Status Of Plantain Hybrids Fhia 21 And Pita 3 For Populations Of Radopholus Similis And Pratylenchus Coffeae In Côte D’ivoire . Greener Journal Of Agricultural Sciences.
Veken, V. D. (2020). Bio-Protective Effect Of A Root-Nodulating Rhizobium Etli Strain In Common Bean (Phaseolus Vulgaris) Against Meloidogyne Incognita And Radopholus Similis In An In Vitro Autotrophic Tripartite Culture System. Vera, V. (2018). Estudio De La Fertilización Edáfica En Cultivo Establecido De Banano En La Hacienda Isabel María. Babahoyo: Universidad Técnica De
Babahoyo. Obtenido De
Http://Dspace.Utb.Edu.Ec/Bitstream/Handle/49000/5445/E-Utb-Faciag-Ing%20agrop-000020.Pdf?Sequence=1
Yanez, W. (2019). Determinación De La Relación Carga Química Grados Brix En Hojas Y Frutos De Banano Clon Williams (Musa X Paradisiaca). Machala: Universidad Tecnica De Machala Utmach. Obtenido De
35
Http://Repositorio.Utmachala.Edu.Ec/Bitstream/48000/15167/1/De00023_Tr abajodetitulacion.Pdf
Zambrano, C. (2020). Caracterización Morfológica De Un Banco De Germoplasma De Banano Cv. Williams Proveniente De Mutagénesis Física En La Estación Experimental Tropical Pichilingue. Quevedo: Universidad Técnica Estatal De
Quevedo. Obtenido De
Https://Repositorio.Uteq.Edu.Ec/Bitstream/43000/6089/1/T-Uteq-0291.Pdf Zavaleta, E. (2016). Función De La Lignina En La Interacción Planta-Nematodos
