UNIVERSIDAD NACIONAL DEL CENTRO DEL PERÚ
FACULTAD DE CIENCIAS FORESTALES Y DEL AMBIENTE
TESIS
“ INVENTARIO DE LA ENTOMOFAUNA ASOCIADA A Ficus benjamina L. Y Ficus microcarpa L.f. (URTICALES:
MORACEAE) EN LA PROVINCIA DE LIMA”
PRESENTADA POR EL BACHILLER:
JACK LENNON MACEDO ALARCÓN
PARA OPTAR EL TÌTULO PROFESIONAL DE:
INGENIERO FORESTAL Y AMBIENTAL
HUANCAYO - PERU 2015
II
Asesor: Dr. Hernán Baltazar Castañeda
III Dedicado a Dios y mi madre Adela Alarcón, que es una mujer muy valiente y que puso la convicción de madre sobre todo ayudándonos a mi hermano y a mí en la formación académica y vocación, junto a sus primeras enseñanzas las cuales me han hecho el hombre que soy.
Y a mi prima Carolay Brañez que es como mi hermana y hermano Marden Harold a los cuales aprecio mucho, gracias por el apoyo incondicional que me ha brindado a lo largo de la vida merece toda mi gratitud.
IV
AGRADECIMIENTOS
A la Dra. Elizabeth Nuñez Sacarias de Dioses, por su apoyo incondicional y desinteresado, en su asesoramiento y orientación brindado en todo el proceso de la investigación y culminación del proyecto.
A mi asesor el Dr. Hernán Baltazar de la misma manera que mi co-asesora merece mi gratitud de por vida; ya que con sus ilustres conocimientos en Entomología, despertaron en mí un modelo a seguir. Al Mg. Jose Avalos Cairampoma por su inigualable apoyo en toda la ejecución del proyecto. A las Biólogos Paola Dioses, Maryvel Pereyra y María Luis Bull, junto a la Sra Mirna Achaca encargada del museo en la Sub Dirección de Control Biológico, las cuales ayudaron en la identificación de algunos especímenes encontrados a lo largo de toda la ejecución del proyecto de investigación y por su apoyo incondicional e invaluable amistad. A mis tíos, Gloria Rubio, Janet, Lidia, Jose, Aquiles, Karina y Brígida Alarcón los cuales al igual que mi madre también fueron grandes gestores de mi vocación. Finalmente al mis amigos Raul Quincho, Roxana Barra y Lesli Orellana los cuales me ayudaron en la culminación del trabajo de investigación y por haber compartido cinco años de su vida académica junto a mi persona, no tengo palabras para expresar mi gratitud.
V INDICE
RESUMEN ... XI SUMMARY ... XII
INTRODUCCIÓN ... 13
I. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA ... 13
1.1. Clasificación botánica y características generales de la especie en estudio ... 15
1.1.1. Clasificación sistemática y descripción botánica de Ficus spp. ... 15
1.1.2. Especies del género Ficus reportadas en el Perú ... 17
1.2. Relaciones interespecíficas existentes entre fitófagos y controladores biológicos ... 17
1.3. Fitófagos registrados y reportados en Ficus benjamina y F. microcarpa para Perú... 18
1.4. Controladores biológicos de plagas en Ficus benjamina y F. microcarpa – MORACEAES ... 20
1.5. Antecedentes de la entomofauna registrada para F. benjamina y F. microcarpa en la provincia de Lima - Perú ... 21
1.6. Ciclo biológico de la entomofauna registrada en Ficus benjamina y F. microcarpa... 25
II. MATERIALES Y MÉTODOS ... 27
2.1. Lugar de ejecución y condiciones climáticas de la provincia de Lima. ... 27
2.1.1 Ubicación ... 27
2.1.2 Ámbito de trabajo ... 27
2.1.3 Ecología ... 27
2.1.4 Condiciones Climáticas ... 28
2.1.5 Equipos y Materiales ... 30
2.2. Metodología o diseño de la investigación ... 32
2.2.1 Aspectos metodológicos ... 32
2.2.2 Diseños empleados en las investigaciones ... 33
A. Muestreo dirigido o direccionado para el registro de la entomofauna ... 33
B. Muestreo sistemático para la abundancia y distribución de las plagas ... 34
VI
2.3. Lugar de ejecución ... 36
2.3.1 Identificación del área de trabajo ... 36
2.3.2 Duración de trabajo en campo ... 36
2.3.3 Evaluación de los árboles de Ficus ... 37
2.3.4 Registro de la entomofauna encontrada... 37
2.3.5 Colecta de insectos presentes en árboles de Ficus ... 38
2.3.6 Proceso de identificación de la entomofauna en árboles de Ficus ... 38
2.4. Procedimiento ... 39
2.4.1 Fase de pre campo ... 39
2.4.2 Fase de campo ... 39
2.4.3 Fase post campo o gabinete ... 40
2.5. Proceso de recuperación de parasitoides ... 50
2.6. Procesamiento de la información obtenida... 41
III. RESULTADOS ... 42
3.1 Entomofauna registrada en F. benjamina y F. microcarpa en la provincia de Lima ... 42
3.1.1 Especies fitófagas ordenadas según su posición taxonómica y descripción ... 43
A. Singhiella simplex (Singh, 1931) (Figs 3-6) ... 43
B. Aleurodicus cocois (Curtis) Morgan, 1892 (Figs 7-10) ... 44
C. Greenidea ficicola Takashi, 1921 (Figs 11-14) ... 46
D. Ceroplastes cirripediformis Comstock,1881 (Figs 15-18) ... 48
E. Pulvinaria sp. Targioni Tozzetti (Figs 19-20) ... 49
F. Chrysomphalus aonidum (Linneus), 1758 (Figs 21-24) ... 50
G. Chrysomphalus dictyospermi (Morgan), 1889 (Figs 25-28) ... 52
H. Abgrallaspis cyanophylli (Signoret, 1869) (Figs 29-32) ... 53
I. Gynaikothrips uzeli Zimmerman, 1900 (Figs 33-36) ... 55
3.1.2 Relación interespecífica: Parasitoidismo, orden de especies según posición taxonómica y descripciones ... 57
VII
A. Encarsia sp. 1 (Figs 37-40) ... 57
B. Encarsia sp. 2 (Figs 41-44) ... 58
C. Signiphora aleyrodis Ashmead, 1900 (Figs 45-48) ... 60
D. Scutellista cyanea Mostchulky, 1859 (Figs 49-50) ... 61
3.1.3 Relación interespecífica: Predación, orden de especies según posición taxonómica y descripciones ... 62
A. Montandoniola moraguesi (Putton), 1896 (Figs 51-54) ... 62
B. Ceraeochrysa cincta Schneider, (1851) (Figs 55-58) ... 64
C. Chrysoperla externa Hagen, 1861 (Figs 59-62) ... 66
D. Harmonia axydiris Pallas, 1773 (Figs 63-66) ... 68
E. Scymnobious galapagoensis Waterhouse, 1845 (Figs 67-68) ... 69
F. Nephaspis isabelae Gonzáles, 2009 (Figs 69-70) ... 70
G. Allograpta exotica Wiedemann, 1830 (Figs 71-74) ... 71
H. Toxomerus sp. (Figs 75-78) ... 73
3.2 Comportamiento poblacional de la entomofauna asociada a Ficus benjamina y F. microcarpa en las estaciones de invierno y verano ... 74
3.2.1 Comportamiento poblacional en la estación de invierno ... 74
3.2.2 Comportamiento poblacional en la estación de verano ... 75
3.3 Distribución y abundancia de la entomofauna presente en F. benjamina Y F. microcarpa en la provincia de lima durante las estaciones de invierno y verano ... 75
3.3.1 Distribución de los insectos fitófagos por localidades en las estaciones de invierno y verano ... 75
3.3.2 Abundancia de los insectos fitófagos ... 80
3.3.3 Abundancia de cada insecto fitófago comparado en las estaciones de inverno y verano. ... 81
IV. DISCUSIONES ... 89
V. CONCLUSIONES ... 92
VI. RECOMENDACIONES ... 93
VII. BIBLIOGRAFÍA ... 94
VIII. ANEXOS ... 101
VIII ÍNDICE DE TABLAS Y FIGURAS
TABLAS
Tabla 1. Relación de la entomofauna registrada a lo largo de todo el periodo de
la investigación. ... 32
Tabla 2. Comparación de la entomofauna presentre en ficus entre invierno y verano ... 74
FIGURAS Figura 1. Diseño de la investigación: muestreo dirigido o direccionado para el registro de la entomofauna. ... 28
Figura 2. Diseño de la investigación: muestro sistemático para la evaluación de abundancia de población de insectos ... 59
Figuras 3-6. Singuiella simplex ... 104
Figuras 7-10. Aleurodicus cocois ... 105
Figuras 11-14. Greenidea ficicola ... 106
Figuras 15-18. Ceroplastes cirripediformis ... 107
Figuras 19-20. Pulvinaria sp. ... 108
Figuras 21-24. Chrysomphalus aonidum. ... 109
Figuras 25-28. Chrysomphalus dictyopsermi ... 110
Figuras 29-32. Abgrallaspis cyanophylli ... 111
Figuras 33-36. Gynaikothrips uzeli ... 112
Figuras 37-40. Encarsia sp. 1 ... 113
Figuras 41-44. Encarsia sp. 2 ... 114
Figuras 45-48. Signiphora aleyrodis ... 115
Figuras 49-50. Signiphira cyanea ... 116
Figuras 51-54. Montandoniola moraguesi ... 117
Figuras 55-58. Ceraeochrysa cincta ... 118
Figuras 59-62. Chrysoperla externa ... 119
Figuras 63-66. Harmonia axydiris ... 120
Figuras 67-68. Scymnobious galapagoensis ... 121
Figuras 69-70. Nephaspis isabelae ... 122
IX Figuras 71-74. Allograpta exotica ... 123 Figuras 75-78. Toxomerus sp ... 124 Figura 79. Comportamiento poblacional de la entomofauna expresado en porcentaje durante el invierno ... 72 Figura 80. Comportamiento poblacional de la entomofauna expresado en porcentaje durante el verano ... 73 Figura 81. Número de individuos fitófagos presentes en las zonas de evaluación presentes en invierno y verano ... 78 Figuras 82 y 83. Abundancia por zonas del número de individuos por hoja en ficus de S. simplex en invierno y verano ... 79 Figuras 84 y 85. Abundancia por zonas del número de individuos por hoja en ficus de A. cocois en invierno y verano ... 80 Figuras 86 y 87. Abundancia por zonas del número de individuos por hoja en ficus de G. uzeli en invierno y verano ... 81 Figuras 88 y 89. Abundancia por zonas del número de individuos por hoja en ficus de G. ficicola en invierno y verano ... 82 Figuras 90 y 91. Abundancia por zonas del número de individuos por hoja en ficus de C. cirripediformis en invierno y verano ... 83 Figuras 92 y 93. Abundancia por zonas del número de individuos por hoja en ficus de C. aonidum en invierno y verano ... 84 Figuras 94 y 95. Abundancia por zonas del número de individuos por hoja en ficus de C. dyctiospermi en invierno y verano ... 85 Figuras 96 y 97. Abundancia por zonas del número de individuos por hoja en ficus de A. cyanophylli en invierno y verano ... 86
X RESUMEN
El trabajo se realizó en la provincia de Lima; se tomaron muestras de árboles de Ficus (Ficus benjamina y F. microcarpa) en los parques, y alamedas de 12 distritos divididos en cinco zonas: norte conformado por: San Martin de Porres y Los Olivos, este: La Molina y Ate, sur: Barranco y Chorrillos, centro: Lince y La Victoria y moderna: Miraflores, San isidro, San Borja, Santiago de Surco. Se realizó dos colectas en invierno del 2014 y verano del 2015. Al terminar la primera colecta se obtuvo los siguientes registros: fitófagos; Singhiella simplex, Aleurodicus cocois, Greenidea ficicola, Ceroplastes cirripediformis, Pulvinaria sp., Chrysomphalus aonidum, Chrysomphalus aonidum y Gynaikothrips uzeli.
Parasitoides; Encarsia spp 1 y Scutellista cyanea. Predadores; Ceraeochrysa cincta, Chrysoperla externa, Montandoniola moraguesi, Nephaspis isabelae, Harmonia axyridis y Toxomerus sp. Al finalizar la segunda colecta se añadieron los siguientes registros: Fitófagos; Abgrallaspis cyanophylli.
Parasitoides; Encarsia spp 2 y Signiphora aleyrodis. Predadores; Scymnobius galapagoensis, y Allograpta exotica. La abundancia y distribución depende no solo de la T° y HR de las zonas muestreadas también de que tan constantes son los riegos a los parques, ya que se realizan lavados de manera indirecta.
Adicionalmente se realizó la fluctuación poblacional de los fitófagos en la Sub Dirección de Control Biológico, Vitarte del cual se obtuvo 3 registros de plagas presentes atacando los árboles de Ficus siendo G. uzeli la plaga que causa más daño que S. simplex y A. cocois.
Palabras Clave: fitófagos, parasitoides y predadores.
XI SUMMARY
In the current held at twelve Lima districts, and samples Ficus tree (Ficus benjamina and F. microcarpa) were taken in the parks and malls. These districts were divided in five areas: North included by San Martin de Porres and Los Olivos, East; La Molina y Ate, West; Barranco and Chorrillos, Center; Lince and La Victoria, and finally Modern area by Miraflores, San isidro, San Borja, Santiago de Surco. This study had two important dates for pick up samples, on winter 2014 and summer 2015. After the first sampling the following records were obtained: pests; Singhiella simplex, Aleurodicus cocois, Greenidea ficicola, Ceroplastes cirripediformis, Pulvinaria sp., Chrysomphalus aonidum, Chrysomphalus aonidum and Gynaikothrips uzeli. Parasitoids; Encarsia spp 1 and Scutellista cyanea. Predators; Ceraeochrysa cincta, Chrysoperla externa, Montandoniola moraguesi, Nephaspis isabelae, Harmonia axyridis and Toxomerus sp. To finish the second sampling were added the following records:
Pests; Fitófagos; Abgrallaspis cyanophylli. Parasitoids; Encarsia spp 2 and Signiphora aleyrodis. Predators; Scymnobius galapagoensis, y Allograpta exotica. Abundance and distribution depends not only on the T ° and RH of the sampled area also the times of risks to parks because these cause washes trees. Additionally, the population dynamics of pests was performed on SDCB, Vitarte. and we obtained three registers that attacking to Ficus trees being G.
uzeli the pests that causes more damage than S. simplex y A. cocois.
Key words: pests, parasitoids and predators.
13 INTRODUCCION
Según la OMS en el 2013, actualmente Lima es de una de las ciudades más contaminadas del mundo, debido a que los niveles de gases contaminantes como plomo (LMP anual; 0,5 ppm PM10*), monóxido de carbono (LMP anual; 400 ppm*), dióxido de azufre (LMP anual; 80 ppm*) y dióxido de nitrógeno (LMP anual; 100 ppm*) se encuentran en tres veces más por encima de los niveles permisibles. Por lo que ha llevado a plantar más áreas verdes en nuestra ciudad; con el paso de los años el ficus que captura un promedio de un kg/m3 de CO2 al año**, se ha utilizado de forma masiva, debido a su crecimiento rápido, capacidad de captación de CO2, por ser grandes filtradores de oxígeno y fijadores de metales. (Cifuentes, 2011).
Sin embargo, la extensión de áreas verdes incluyendo a los árboles es de apenas 2m2 por habitante, siendo lo mínimo recomendado por la Organización Mundial de la Salud de 8 m2. (OMS, 2013).
Adicionalmente para contrarrestar estos efectos la ciudad de Lima tiene árboles de
“Ficus” F. benjamina y F. microcarpa, además de F. macrophyla, F. carica, F.
elástica, entre otras. Las dos primeras especies son más abundantes y son empleadas como arte de la decoración de los principales parques, y alamedas.
Por otro lado los Ficus presentan problemas como consecuencia del monocultivo y su utilización masiva, ya que estos árboles necesitan una gestión de recortes (podas), para dar formas geométricas en sus copas para controlar la superficie foliar.
Asi mismo dichos árboles forman nichos ecológicos para diferentes especies de la entomofauna que albergan especies fitófagas, fitopestes, especies entomófagas (parasitoides, parásitos, predadores y antagonistas), polinizadores, insectos de
* Valores obtenidos según la La RM 315-96-EM/VMM
**Valor sacado de la Rev. Mex. Cien. For. Vol. 5 Núm. 22, ISSN: 2007-1132
14 uso industrial y comestible entre otros. Estas especies merecen un estudio morfológico para el reconocimiento en campo y su posterior manejo, basado en el uso de la biodiversidad localizada.
Motivo por el cual, se tenía que saber cuál era la entomofauna que estaba presente en los árboles de F. benjamina y F. microcarpa en la provincia de Lima entre las dos estaciones de invierno y verano. Trabajando con la revisión bibliográfica se determinó que la entomofauna reportada fueron los siguientes fitófagos: Toxoptera aurantii, Greenidea ficicola, Ischnaspis longirostris, Chrysomphalus pinnulifer, Gynaikothrips ficorum y Gynaikothrips uzeli.
Hasta el 2014 solo se conocía, según bibliografía que en la provincia de Lima que la entomofauna presente en los árboles de Ficus eran fitófagos y que la zona norte de la provincia de Lima registraba una mayor abundancia y distribución de fitófagos que en el resto de la misma. De manera a dar respuesta
Los objetivos fueron:
Objetivo General:
- Evaluar la entomofauna asociada a Ficus benjamina L. y Ficus microcarpa L.f en la provincia de Lima durante las dos estaciones de invierno y verano.
Objetivos específicos:
- Clasificar la entomofauna de acuerdo a su comportamiento poblacional, en F.
benjamina L y F. microcarpa L.f en la provincia de Lima entre las dos estaciones de invierno y verano.
- Determinar las zonas de mayor abundancia en plagas en F. benjamina y F.
microcarpa en la provincia de Lima entre las dos estaciones de invierno y verano.
15 I. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA
1.1 CLASIFICACIÓN BOTÁNICA Y CARACTERÍSTICAS GENERALES DE LA ESPECIE EN ESTUDIO.
1.1.1. Clasificación sistemática y descripción botánica de Ficus spp.
A. Clasificación sistémica y descripción botánica de Ficus benjamina L.
Según (Lugduno, 2013):
• Reino : Plantae (Haeckel, 1866 - Plants)
• División : Tracheophyta (Smith,1998)
• Clase : Magnoliopsida (Brongniart, 1843)
• Orden : Urticales (Perleb, 1826)
• Familia : Moraceae (Dumort., 1829)
• Género : Ficus (C. Linnaeus, 1753)
• Especie : benjamina
• Nombre Científico : Ficus benjamina L.
• Nombre común : Ficus llorón
B. Clasificación sistémica y descripción botánica de Ficus microcarpa L.f.
Según (Lugduno, 2013):
• Reino : Plantae (Haeckel, 1866 - Plants)
• División : Tracheophyta (Smith,1998)
• Clase : Magnoliopsida (Brongniart, 1843)
• Orden : Urticales (Perleb, 1826)
• Familia : Moraceae (Dumort., 1829)
• Género : Ficus (C. Linnaeus, 1753)
16
• Especie : microcarpa
• Nombre Científico : Ficus microcarpa L.f
• Nombre común : Laurel cubano
C. Descripción botánica
(Anton, 2004) Los Ficus son especies leñosas mayormente arbóreas o arbustivas, a veces trepadoras o rastreras, al menos en su fase juvenil, con látex lechoso.
Poseen hojas simples, espiraladas, generalmente alternas, enteras, dentadas o lobadas, con la base simétrica o asimétrica, a veces provistas de glándulas en el pecíolo o en la parte basal del envés de la lámina; estípulas libres, amplexicaules, normalmente caedizas. Flores unisexuales, a veces estériles, diminutas, dispuestas en el interior de un receptáculo carnoso acopado denominado sicono, abierto por un poro u ostiolo apical que se encuentra cerrado por pequeñas brácteas imbricadas.
Se emplea mucho como planta decorativa de interior, pero en exteriores amplios es un árbol muy atractivo por su brillo foliar y su follaje, convirtiéndose en un excelente productor de sombrío. Por su porte y gran follaje es un excelente purificador del medio ambiente, brindando además belleza y sombra en general, propicio para el descanso de numerosas aves en la noche, y en sus grandes y altas ramas extendidas hacen nido unos pájaros muy bonitos llamados arrendajos, sembrarlo en espacios abiertos y evitar la sombra sobre el para que no pierda las hojas, también en espacios pequeños como arbusto decorativo organizándolo de diversas formas o en interiores en materas, como cerca viva.
D. Distribución
(National Tropical Botanical Garden, 2015) Este árbol crece naturalmente en India, Sur de China e islas Salomón. El ficus es plantado al aire libre a lo largo de los trópicos y es la planta de interior más común en Estados Unidos.
Regularmente se puede observar plantado como un cerco o en jardineras, a veces con sus troncos entrelazados. Una de las especies más comunes para el arte del Bonsay.
17 1.1.2 Especies del género Ficus reportadas en el Perú.
(Anton, 2004) Las especies del género Ficus reportadas para el Perú son:
Ficus cuatrecasana
Ficus crassiuscula
Ficus macbridei
Ficus microcarpa
Ficus trigona
Ficus guianensis
Ficus gigantosyce
Ficus máxima
Ficus mutisii
Ficus paraensis
Ficus killipii
Ficus pertusa
Ficus benjamina
Ficus obtusifolia
Ficus americana
Ficus citrifolia
Ficus insipida
Ficus citrifolia aff.
Ficus andicola
Ficus casapiensis
Ficus eximia
Ficus carica
1.2. RELACIONES INTERESPECÍFICAS EXISTENTES ENTRE FITÓFAGOS Y CONTROLADORES BIOLÓGICOS
Parasitismo: Relación íntima obligatoria entre dos individuos de distinta especie en que uno de los simbiontes (parasito) depende metabólicamente del otro (hospedador) y existe respuesta inmunitaria por parte del hospedador.
(Bertha, 2011).
Depredación: Relación que se produce cuando una especie consume a ora.
En esta interacción hay un beneficiado, que es el predador, mientras que la otra especie se ve afectada negativamente (presa). (Bertha, 2011).
1.3. FITÓFAGOS REGISTRADOS Y REPORTADOS EN Ficus benjamina y F. microcarpa PARA PERÚ
Chrysomphalus aonidum (L.), "queresa roja de Florida". Esta especie aparecía en una colección peruana (Dept. Entom, Est. Exp. Agr. La Molina) y en la literatura (Wille, 1952), como Aonidiella aurantii Mask, especie que no existe en el Perú.
Este error fue disipado en tiempos relativamente recientes por (Morrison, 1961).
Como una plaga de los cítricos está restringida a los valles de la costa norte. Dos parásitos han sido hallados atacando a esta queresa en el Perú: Aphytis sp. y una avispita negra no determinada que actúa como un endoparásito. (Beingolea O.
G., 1967).
El género Aleurodicus comprende diferentes especies de mosquitas blancas que afectan distintas plantas y éste es el primer reporte del género para el país (2004); la plaga se encuentra bajo control oficial en etapa de contención. El género no está bien estudiado considerándose A. cocois como la especie presente en algunos países, sin haberse descrito la actual como una nueva especie. Aleurodicus sp cercano a cocois se encuentra en Perú y Chile. En Perú
es considerada como la especie A. cocois. La distribución conocida de A. cocois comprende Centro América, México y Sud América hasta Brasil. (Vergara, 2004).
La plaga de A.cocois es un insecto extraordinariamente “oportunista” que puede ovipositar en muchas especies de árboles aunque su descendencia no prospere, tal como ocurre con el ficus que es un árbol ornamental (Ficus benjamina).
Mientras que en otras plantas hospederas, se observó una gran cantidad de posturas junto con poblaciones altas tanto adultos como de larvas de Nephaspis sp., como es el caso de la lúcuma y en menor grado del palto. (Valencia L. , Aleurodicus juleikae BONDAR (HEMIPTERA: ALEYRODIDAE): PLASTICIDAD, 2008).
El Ficus benjamina es la única planta en la cual se sabe que la plaga de (Gynaikothrips uzeli) completa su ciclo de vida. También otros hospederos incluyen F. obtusa, F. pilosa, F. microcarpa, y Macaranga sp. (Mannion, Weeping Ficus Thrips (Gynaikothrips uzeli), 2008).
Ficus Whitefly (Singuiella simplex) se han encontrado infestando al higo llorón (Ficus benjamina), también se han visto en Ficus altísima, F. bengalensis (árbol del banyan), el F. macrocarpa, y el F. maclellandii. Otros hospederos incluyen el higo estrangulador (F. aurea), el laurel cubano (F. microcarpa), el F. lyrata y el F.
macllandii. Esta mosca blanca puede ser encontrada eventualmente en otras especies de ficus. (Mannion, Weeping Ficus Thrips (Gynaikothrips uzeli), 2008).
La especie Greenidea ficicola Takahashi ( Hemiptera: Sternorrhyncha: Aphididae) colectada durante muestreos intensivos realizados durante el primer semestre de 2008 en el Valle de Aburrá y municipios aledaños. Dicha especie de áfido también fue colectada en falso laurel “Ficus benjamina”. (David Giraldo, Quiroz Gamboa, Smith Pardo, & Yepes Rodriguez, 2009).
Este “áfido” Greenidea ficicola se registró por primera vez en Ficus sp., de allí el nombre ficicola (Greenidea ficicola), además se alimenta de guayabo (Psidium guajava) y de plantas de otras familias, en la India. (Blackman & Eastop, 2000).
La plaga de Singuiella simplex empieza a atacar a las hojas del ficus que comienzan a tornarse amarrillas antes de caerse de la planta, a menudo en grandes cantidades. La defoliación es un síntoma de un árbol de ficus infestado con esta mosca blanca. Este daño ha sido observado principalmente en el Higo llorón (Ficus benjamina) pero se puede observar también en F. altissima y F.
bengalensis, éste último llamado “árbol banyan” en Miami, F. microcarpa y F.
maclellandii. (Mannion, 2010).
S.simplex se encontró por ambos lados de las hojas de Ficus microcarpa L.
(Moraceae) con poblaciones muy numerosas y en el caso de F. benjamina L. su presencia fue menor y sólo en el envés del follaje. La “mosca blanca del Ficus” se alimenta principalmente de las hojas (haz y envés) de sus plantas hospederas, por lo que el daño directo que causa es la succión constante de savia. Puede cubrir porciones considerables del follaje, dando un mal aspecto, lo que demerita la condición estética de los árboles; en infestaciones fuertes, el follaje se aprecia notoriamente clorótico. (Myartseva, Blanco, & Cancino., 2013).
1.4. CONTROLADORES BIOLÓGICOS DE PLAGAS EN Ficus benjamina y F. microcarpa – MORACEAES
Chrysoperla externa (Hagen) es una crisopa que muestra alta voracidad tanto en larva como en estado adulto. Se le ha registrado predando Spodoptera frugiperda, S. eridania y áfidos en cultivos de maíz; también en los olivos se le encuentra alimentándose de Orthezia olivícola y Margaronia quadristigmalis.
(Nuñez, Registro y utilización de Chrysoperla externa Hagen y Ceraeochrysa cincta Schneider en la Agricultura Peruana, 1985).
Toxomerus lacrymosus es una especie que se observó predando huevos y ninfas de mosca blanca. (Vilarinho de Oliveira & dos Santos, 2005).
El antocórido exótico Montandoniola moraguesi (Puton) fue introducido intencionalmente en Hawaii y Bermuda para el control de trips en las siembras de campo de plantas ornamentales del género Ficus. Entre los cuales se tiene a Gynaikothrips uzeli como plaga de Ficus benjamina (Mound et al. 1995). Estos programas resultaron con éxito en esfuerzos similares para introducir este depredador en varios lugares en el continente de los Estados Unidos. (Dobbs &
Boyd, 2006).
Chrysopidae es una de las familias de entomófagos más importantes del orden Neuroptera, debido a que 15 géneros presentan especies con potencial como agentes de control biológico (López, 2003). La voracidad de las larvas las ha convertido en uno de los agentes de control biológico más favorecidos en cultivos agrícolas (Oswald, 2002). Las larvas de todas las especies y los adultos de algunos géneros son depredadores y se alimentan de una amplia variedad de insectos fitófagos tales como áfidos, cóccidos, mosquitas blancas y otros insectos de cuerpo blando que se localizan en el follaje. Por esta razón, algunas especies se reproducen actualmente de manera masiva y se utilizan exitosamente para el control biológico de plagas agrícolas (New 1975, Adams & Penny 1987, Hunter 1997, Arredondo 2000). Citados (Valencia, Romero, Valdez, Carrillo, & López, 2006).
1.5. ANTECEDENTES DE LA ENTOMOFAUNA REGISTRADA PARA F.
benjamina y F. microcarpa EN LA PROVINCIA DE LIMA
(Ortiz, 1972). Realizó su trabajo de investigación con el propósito de reiniciar y actualizar en nuestro medio (Lima), el estudio de los insectos de la orden Thysanoptera. Las zonas donde se procedió a colectar las plantas infestadas con thrips fueron: Lima, Lurin, Pachacamac, Manchay, Cieneguila, La Molina, Vitarte, Chaclacayo, Chosica, Moyopampa, Sta. Eulalia y Ricardo Palma. Los métodos de colección y las técnicas de montaje, usando preferentemente el tratamiento cáustico, carboxilol y posteriormente lo pasamos a xilol puro. Se informa de un total de 12 especies, pertenecientes a 9 géneros y 3 familias de Thysanoptera, provenientes de la Provincia de Lima, con anotaciones sobre sinonimia,
distribución y rango de plantas hospedadoras para dicha localidad. Asimismo se ofrece una clave para el reconocimiento de tales especies.
FAMILIA AEOLOTHRIPIDAE 1. Aeolothrips sp, 1943
A. FAMILIA THRIPIDAE
2. Vrankliniella auripes Hood, 1925 3. Vrankliniella difficilis Hood, 1925 4. Euthrips insularis Franklin, 1908 5. Frankliniella tympanona Hood, 1951 6. Taeniothrips simplex Steele, 1935
7. Microcephalothrips abdominalis, Moulton, 1928 8. Thrips tabaci Lindeman, 1888
9. Leucothrips theobromae, Moulton, 1933 10. Chaetanaphothrips orchidii, Priesner, 1926
B. FAMILIA PHLAEOTHRIPIDAE 11. Gynaikothrips ficorum Marchal, 1908 12. Liothrips tessariae Hood, 1915
Asimismo (Ortiz, 1972) da como registros nuevos para el Perú el género Microcephalothrips, Bagnall y las especies M. abdominalis (D.L. Crawford), Frankliniella difficilis Hood y FICUS insularis (Franklin). Cabe indicar que GynaikothrifKs ficorum (Marchal) ya ha sido registrada para el Perú, pero específicamente para Lima, la cita es por primera vez.
(Beingolea & Vásquez, 1994). Realizaron un estudio muy detallado sobre el
“Gusano peludo del Ficus” (Ficus benjamina L.) el cual tuvo como objetivo reconocer el ciclo biológico, la dinámica poblacional y los factores de mortalidad durante 5 años en el parque Habich, distrito de Jesús Maria - Lima de Ammalo helops Cramer var. trujillaria Dognin (G.Lamas 1970). Durante los muestreos se determinó los niveles de parasitismo observando directamente (Netelia y
Euphorocera). En el caso de grandes números de orugas (I a IV) se determinó el parasitismo sobre 100 individuos de esa clase; en las orugas medianas y grandes, en todos los individuos visibles (muchas veces en la totalidad de individuos presentes en la muestra). Los datos obtenidos son múltiples, describen la dinámica de poblaciones frente a las tasas de mortandad. Hay gran mortalidad en los estadios de larvas jóvenes, debido a los factores ya mencionados.
Finalmente, cabe señalar el hecho, ya comentando por Lamas (1970), de que las orugas de Ammalo no comen las hojas de Ficus señaladas por el trips Gynaikothrips ficurum, lo que debe tener una influencia considerable sobre la magnitud y viabilidad de las poblaciones de Ammalo; y del mismo modo, la defoliación que la oruga causa, al favorecer al trips, es un factor ecológico igualmente poderoso en la dinámica poblacional de éste. Más estudios son necesarios para una evaluación cabal de estas interrelaciones.
(Rubín, 2006), realizó notas científicas del trabajo de investigación de Menandro S. Ortiz y Claudia F. Barletta para la revista entomológica del Perú, el cual detalla que el áfido Greenidea ficicola Takahashi fue registrado por primera vez para América del Sur, hallada sobre hojas de Ficus benjamina L. Junto con esta especie se observó la presencia de individuos de Hippodamia convergens (Guérin-Méneville) (Coleóptera: Coccinellidae) y Chrysoperla externa (Hagen) (Neuroptera: Chrysopidae), presuntos depredadores de dicho áfido.
(Mannion, 2008). Con su trabajo finalizado Weeping Fig Thrips – Gynaikothrips uzeli, reporta y describe a Gynaikothrips uzeli como una especie plaga para Ficus obtusa, F. pilosa, F. microcarpa y Macaranga sp. Registrando así sus hospederos, importancia, daño y control.
(Valencia, 2009). Tuvo como objetivos; en primer lugar identificar los enemigos naturales de Aleurodicus juleikae en el área urbana del distrito de Santiago de Surco y evaluar su presencia en las plantas hospederas que allí ocurren, y en segundo lugar discutir su contribución potencial para un programa de control biológico. La investigación fue realizada en el área urbana del distrito de Surco en Lima, Perú. La frecuencia de las observaciones fue de una vez al mes en
especies arbóreas de frutales y ornamentales ubicadas en parques y jardines.
Por lo tanto se tiene que en estos árboles del área urbana de Surco (Lima, Perú) colonizados por la “mosca blanca” A. juleikae se encontraron cuatro especies de depredadores: Chrysoperla sp., Ceraeochrysa sp. (Neuroptera: Chrysopidae), Toxomerus sp. (Diptera: Syrphidae) y Nephaspis sp. (Coleoptera: Coccinellidae), y un parasitoide Encarsia sp. cercana a dispersa. Bajo estas condiciones, A.
juleikae presentó poblaciones regulares a través de todo el año, destacando las especies de árboles donde el insecto pudo completar su ciclo biológico, como ocurrió en Ficus benjamina L, Eucalyptus sp., Dypsis lutescens, Annona muricata, Musa paradisiaca, Plumeria rubra, Schinus terebinthifolius y Psidium guajava. La presencia de enemigos naturales de A. juleikae en estas especies hospederas varió desde muy alto a casi inexistente.
(Mannion, 2010). Reportó a la mosca blanca en Ficus sp. [Singhiella simplex (Singh) (Hemiptera: Aleyrodidae)] con las siguientes características que el ciclo de vida de la mosca blanca del Ficus es aproximadamente un mes. También se determinó que los huevos, que usualmente se encuentran en la parte inferior de las hojas, eclosionan en una etapa de oruga. La larva que es muy pequeña se pasea alrededor de la hoja hasta que comience a alimentarse. Desde este punto hasta que emerge como adulto, permanece en el mismo lugar en la planta. Estas etapas de alimentación, no móviles (ninfas) son generalmente ovaladas y planas, y en un principio transparente. Los estados de ninfa temprana pueden ser muy difíciles de ver pero como las ninfas ya luego de un tiempo maduran, se vuelven más de color amarillo, más convexa, y sus ojos rojos se hacen más visibles, lo que facilita ver.
(Ortiz, 1972). En el trabajo de Insectos forestales asociados a otros hospederos, determinaron la taxonomía de los insectos entre ellos Microcerotermes sp.
(termita) y Greenidea ficicola como especie fitófaga, que están asociados a los arboles forestales y no forestales; dentro del último grupo está incluyendo al ficus (Ficus benjamina L., F. microcarpa, F. indica, F. carica y F. retusa.)
(Narrea Cango, Vergara Cobián, & Malpartida Zevallo, 2013). Realizaron un trabajo de investigación donde tuvo como objetivo determinar qué insectos fitófagos se desarrollan sobre árboles de Ficus benjamina L. y Ficus microcarpa sembrados con fines ornamentales y agrícolas. La fase de muestreo consistió en la colecta mensual de 10 hojas de ramas infestadas provenientes de 10 árboles con síntomas de daño, de modo que se tenían en cada colecta 100 hojas. Con lo cual llegaron a reportar a las siguientes especies fitófagas: Toxoptera aurantii, Greenidea ficicola, Ischnaspis longirostris, Chrysomphalus pinnulifer, Gynaikothrips ficorum y Gynaikothrips uzeli. De las dos especies de áfidos, se encontraron que G.ficicola fue reportada en el Perú sólo en Ficus benjamina L.
Esta especie tiene ahora como nuevos registros a Ficus microcarpa L.f. , la mandarina, la naranja y la higuera. Por otro lado de los dos diaspídidos encontrados, I. longirostris es la más común, y en el presente estudio se registró también en el mango, mientras que C. pinnulifer, se reporta como nuevo registro para el Perú, siendo sus hospederos Ficus benjamina L., Ficus microcarpa, el palto y la higuera. Finalmente se concluye en el presente estudio que ambas especies de Ficus son hospederos de plagas de importancia en frutales, condición que debe ser tomada en cuenta al momento de decidir su siembra como cercos vivos de fundos y al momento de implementar un programa de manejo de plagas en frutales. De las seis especies identificadas cuatro fueron encontradas en frutales de importancia y coincidentemente esas cuatro tienen como hospedero a Ficus benjamina L., la especie de Ficus más comúnmente sembrada.
1.6. CICLO BIOLÓGICO DE LA ENTOMOFAUNA REGISTRADA EN F.
benjamina Y F. microcarpa.
El desarrollo de huevo a adulto de Chrysoperla externa (Hagen) se cumplió en 27 días y se obtuvieron 523 huevos por hembra. Por otro lado el periodo de desarrollo de Ceraeochrysa cincta Schneider es de 35 días, produciendo 482 huevos por hembra. (Nuñez, 1989).
Para Ceroplastes cirripediformis se obtuvo un ciclo de vida en promedio de 50,6 días (41-59) en verano, por otro lado en invierno C. cirripediformis tiene un ciclo de vida de 71,9 días (64-77). (Marín & Cisneros, 1995).
Pulvinaria sp. tuvo un ciclo de vida promedio de 77 días y pasa por dos ínstares y el adulto. El número de crías por hembra en promedio fue de 179, se ubican en el envés de las hojas y son poco móviles. (Girón, Lastra, Gómez, & Mesa, 2005).
El periodo de vida de Toxomerus lacrymosus es de 14,3 días en promedio, en condiciones de laboratorio. (Vilarinho de Oliveira & dos Santos, 2005).
La cochinilla negra circular “Chrysomphalus aonidum” tiene definido cuatro generaciones anuales, siendo las dos de verano las más abundantes. La distribución de estos individuos de pertenecientes a los distintos sexos muestra diferencia en su distribución sobre las hojas, teniendo los machos una clara preferencia por situarse sobre el haz de la hoja. También. (Borrás, Soto, & García , 2006).
El ciclo biológico de esta mosca blanca “Singhiella simplex” no se conoce, no obstante, probablemente sea parecido al de otras especies en la Florida. Los huevos usualmente se encuentran en el envés de las hojas y eclosionan al estadio de larva o ninfa. Al eclosionar los huevos, el estado móvil (gateadoras) se desplazan sobre la hoja hasta que comienza a alimentarse. El estado de ninfa se vuelve inmóvil y permanece en el mismo lugar en la planta. En esta etapa las ninfas son de forma ovalada, planas y de apariencia simple. (Mannion, Ficus Whitefly (Singhiella simplex), 2008).
La queresa cerosa (Ceroplastes cirripediformis) es una especie ovípara que se reproduce por partenogénesis. Los estadios juveniles se establecen en el haz y envés de hojas y luego se trasladan a las ramillas. Las ninfas se fijan sobre las ramillas en forma relativamente dispersa. En general, es un insecto que se presenta en poblaciones muy reducidas. Aparentemente presenta una sola generación al año. (Ripa & Parral, 2010).
II. MATERIALES Y MÉTODOS
2.1. LUGAR DE EJECUCIÓN Y CONDICIONES CLIMÁTICAS DE LA PROVINCIA DE LIMA.
2.1.1. Ubicación
La investigación se ejecutó en la provincia de Lima localizada en las coordenadas UTM E: 0277594 y N: 8666936; y altitud media de 432 m.s.n.m.
durante las estaciones de invierno (julio-diciembre) y verano (enero-marzo); en dichas estaciones se eligió 12 distritos en las cuales se ejecutaron toda a fase de campo. Por otro lado la fase de laboratorio se realizó en los centros de investigación de la Sub Dirección de Control Biológico – Dirección de Sanidad Vegetal – SENASA, Lima.
2.1.2. Ámbito de trabajo
De acuerdo a la distribución del mapa político de la provincia Lima los distritos son las siguientes: San Martin de Porres y Los Olivos, zona norte; Ate y La Molina, zona este; Chorrillos y Barranco, zona sur; Lince y La Victoria; Zona centro o cercado, San Borja, Santiago de Surco, Miraflores y San Isidro, Zona moderna. (Ver anexo 1)
2.1.3. Ecología
Flora y fauna: Amancay, flor típica de las lomas de Lima. La flora capitalina está formada por una gran variedad de hierbas, plantas, arbustos y árboles que crecen en las lomas y en los montes ribereños. El amancay es la flor típica de la ciudad, es endémica de las lomas costeras del Perú y sólo aparece en la estación fría y nublada. Otras especies que forman parte de la flora limeña son la begonia, la ortiga, el Ficus, la ponciana vb, la oreja de elefante, el olivo y el geranio. En cuanto a la fauna, en la ciudad se puede
encontrar más de cien especies distintas de aves.80 Las más comunes son la paloma doméstica o paloma de Castilla, la cuculí, los jilgueros y los gorriones.
(Atlas Ambiental de Lima, 2008).
Zona de vida: De acuerdo a la clasificación de Holdrige (1976) están comprendidas las zonas de desierto desecano-subtropical, desierto perárido- premontano tropical y la zona del desierto superárido-subtropical.
2.1.4. Condiciones Climáticas
En concordancia con la clasificación climática de Thornthwaite, el departamento de Lima tiene entre sus principales climas el tipo árido con deficiencia de lluvias durante todo el año (SENAMHI, 2008: pág. 128); es por ello que solo se presentan lloviznas ligeras entre los meses de abril y diciembre, con un ambiente atmosférico húmedo. Este tipo de clima incluye a las Provincias de Barranca, Huaura, Huaral, Cañete y Lima Metropolitana, todas ellas ubicadas en el litoral costero.
La Provincia de Lima tiene un clima que se caracteriza por dos estaciones bien marcadas: el invierno y el verano:
- En los meses del invierno, de mayo a noviembre, la temperatura oscila entre 14 ºC y 18 ºC.
- Aunque el clima invernal parece suave, durante el invierno la alta humedad atmosférica produce una sensación mayor de frío.
- El litoral de la ciudad se cubre de una constante nubosidad y se ocurren intermitentes lloviznas o garúas.
- A pesar de la alta humedad atmosférica, las lluvias son escasas, teniendo un promedio de 0 a 10 mm al año.
- En verano, entre los meses de diciembre y abril, el clima es soleado y agradable, con cielos dominantemente despejados: la humedad atmosférica disminuye y las temperaturas oscilan entre 20 ºC y 28 ºC.
- El clima de la ciudad de Lima es muy particular, debido a que se caracteriza por presentar los días menos soleados de toda la franja costera a lo largo de todo el año. (Ministerio de Ambiente - Senamhi, 2008)
Además, es necesario reconocer que existen microclimas en las diferentes Áreas Interdistritales, y dentro de cada una de ellas a nivel de distritos y zonas específicas.
Ejemplo de ello son los distritos de Lurigancho, Chaclacayo y Cieneguilla, que tienen un clima templado y brillo solar la mayor parte del año. Por lo tanto, una caracterización del clima en la Provincia de Lima, no debería olvidar la heterogeneidad que lo caracteriza. (Ministerio de Ambiente - Senamhi, 2008)
Temperatura: El promedio anual es de 18,5 a 19 °C, con un máximo estival anual de unos 29 °C. Los veranos, de diciembre a abril, tienen temperaturas que oscilan entre los 29 a 30 °C durante el día y 21 a 22 °C en las noches.
Solamente cuando ocurre el Fenómeno del Niño, la temperatura en la estación de verano puede superar los 31 °C. Los inviernos van de junio a mediados de septiembre, con temperaturas que oscilan entre los 19 y 12 °C, siendo 8,8 °C la temperatura más baja comprobada históricamente.[57] Los meses de primavera y otoño (septiembre, octubre y mayo), tienen temperaturas templadas que oscilan entre los 23 y 17 °C. (Ministerio de Ambiente - Senamhi, 2008)
Humedad relativa: Es sumamente alta (hasta el 100%), produciendo neblina persistente de junio a diciembre hasta la entrada del verano cuando las nubes son menores. Es soleado, húmedo y caliente en los veranos (diciembre-abril), nuboso y templado en los inviernos (junio a septiembre). (Ministerio de Ambiente - Senamhi, 2008)
Precipitaciones: La lluvia es casi nula.[58] El promedio anual es de 7 mm reportado en el Aeropuerto Internacional Jorge Chávez, siendo la menor cantidad en un área metropolitana en el mundo. Una lluvia en Lima puede ser vista como un fenómeno extraño por la mayor parte de la población.
(Ministerio de Ambiente - Senamhi, 2008)
Registro de las variables climáticas: Los datos fueron registrados por el Servicio Nacional de Meteorología e Hidrología (SENAMHI), desde el 01 de Enero 2014 hasta el 31 de diciembre del 2014; siendo los datos la media mensual de temperatura (°C), humedad relativa (%), precipitación (mm).
Tomado como referencia la Estación de meteorológica 2 Von Humboldt ubicado en la Universidad Nacional Agraria La Molina, en el Distrito de La Molina con una latitud 12° 4’ 55.63’’ y longitud 76° 56’ 21.42’’; con una altitud aproximada de 246 msnm.
2.1.5. Equipos y Materiales
Equipos de laboratorio - Cocinilla para baño maria - Computadora o laptop - GPS
- Microscopio compuesto Zeizz - Microscopio estereoscopio Zeizz - Slides warmer
Equipos de gabinete - Formato de apuntes - Materiales de escritorio
- Software estadístico (SPSS, Excel).
- Procesador de datos (Word, Power Point)
Materiales de campo
- Bolsas de papel - Bolsas de plástico - Cámara fotográfica - Cápsulas de gelatina
- Cinta adhesiva - Engrapador
- Folleto de claves de identificación y síntomas de enfermedades causados por insectos.
- Libreta de campo - Lupa de 10x - Navajas
- Plumón tinta indeleble - Tapers de diversos tamaños - Tijera de podar
- Tubos de eppendorf
Materiales de laboratorio - Agujas entomológicas - Alcohol (96%)
- Bálsamo de Canadá - Cubre objetos cuadrados - Cubre objetos redondos - Double stain (tinte)
- Equipo de micro disección - Bálsamo de Euparal - Goteros
- Hidróxido de potasio (KOH 5%) - Piceta
- Pinceles
- Pinzas de punta fina - Placas petri
- Placas de tinción - Porta objetos - Regla de 30cm - Solución de Hoyers
2.2. METODOLOGÍA O DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN
2.2.1. Aspectos metodológicos
Método Científico: Es una herramienta de la ciencia para su progreso, el cual tiene la particularidad de usar técnicas específicas para cada área del conocimiento de la comunidad científica. El conocimiento científico se obtiene mediante el empleo del método científico. Se pueden definir como: Un proceso ordenado, falibre, reflexivo, racional, etc., que emplean los científicos para obtener nuevos conocimientos (leyes, principios, teorías, métodos, etc.) calificados como científicos o tecnológicos. (Orellana, 2013)
En la investigación se aplicó el método científico; siendo del tipo aplicada, no experimental y descriptivo, para así poder conocer la entomofauna de los árboles de Ficus en toda la provincia de Lima. (Campbell & Stanley, 1973)
Tipo de investigación: Aplicada porque guarda íntima relación con la investigación básica y depende de los descubrimientos y avances de esta última, enriqueciéndose de los mismos, con utilización y consecuencias prácticas de los conocimientos. La Investigación aplicada busca el conocer, para hacer, para actuar, para construir y para modificar. (Orellana, 2013)
Diseño: No experimental porque no se manipula la variable independiente, solo se seleccionan y observan. Estas ocurren y no es posible manipularlas. No se construye ninguna situación, se observan fenómenos ya existentes en un ambiente natural; grupos naturales ya formados. (Orellana, 2013)
Nivel de investigación:
Descriptivo: Por lo que se describió las características más importantes de la entomofauna con respecto a su identificación o simplemente se buscó describir el comportamiento poblacional en que éste se parece o diferencia de él mismo en otra provincia u otra época del año. (Campbell & Stanley, 1973).
2.2.2. Diseños empleados en las investigaciones
A. Muestreo dirigido o direccionado para el registro de la entomofauna:
A diferencia de los científicos físicos que realizan experimentos, los científicos sociales y de la vida silvestre llevan a cabo encuestas para recolectar una muestra. Reconocemos así, que existen diferencias de un campo de la ciencia a otro, en la naturaleza de las poblaciones y la naturaleza en la que una muestra puede ser extraída (SENASA, 2010). Por lo tanto se tomó muestras dirigidas que van en los intervalos de 6 a 20 árboles de Ficus por cada uno de los 12 distritos, que presentan signos y/o síntomas de tener insectos en toda su extensión o en parte de ella, como la copa, el fuste, las ramillas o algunas ramas. Obteniéndose así un muestreo de un 5% del total de árboles de ficus en cada uno los distritos.
Se estudiaron los árboles presentes en los parques, avenidas y/o alamedas principales que son representativos de cada distrito y que fueron accesibles para la colecta de los insectos. (Fig 1).
Figura 1. Diseño de la investigación: muestreo dirigido o direccionado para el registro de la entomofauna.
Elección:
A y B = Árboles que pueden ser seleccionados o no, de acuerdo al tipo de muestreo a seguir.
B. Muestreo sistemático para la abundancia y distribución de las plagas
Para la selección de los árboles de ficus se tomó en cuenta el estado fitosanitario de los individuos, la dirección del viento, la orientación del norte magnético y finalmente se geo-referenció el parque al cual pertenecían por lo que estos puntos GPS ayudaron a determinar la ubicación exacta del árbol en el distrito que se evaluó, a continuación se siguió el diseño sistemático.
(SENASA, 2010)
Árboles elegidos
Figura 2. Diseño de la investigación: muestro sistemático para la evaluación de abundancia de población de insectos.
Elección:
A = Árboles no seleccionados B = Árboles seleccionados
Población: Es el conjunto total de individuos, objetos o medidas que poseen algunas características comunes observables en un lugar y en un momento determinado. (González & Salazar , 2008)
En la investigación estuvo conformada por los 3425 árboles de Ficus benjamina y F. microcarpa cuyo estado de desarrollo son a partir de un año y medio de edad con altura media a partir de 2,50mts (aprox.) en la provincia de Lima.
Muestreo: El muestreo es una técnica empleada, para obtener una o más muestras de la población. Esta se realiza una vez que se ha establecido un marco muestral representativo de la población, luego se procede a la selección de los elementos de la muestra a través de los tipos de muestras, según sea el caso. (González & Salazar , 2008)
En la investigación se eligió el 5% aproximadamente del total de Ficus benjamina y F. microcarpa de los distritos seleccionados en la provincia de Lima.
Resultados
Fueron procesados de manera sistemática mediante el software de Microsoft Excel, a través de cuadros, histogramas y tortas, las cuales se presentan en el capítulo de resultados.
2.3. LUGAR DE EJECUCIÓN
2.3.1. Identificación del área de trabajo
Se localizó dentro de los distritos pre-seleccionados, los lugares donde hay una cantidad representativa de Ficus como avenidas con plantaciones, alamedas, aceras, parques entre otros, donde se realizó la respectiva colección de las muestras según el protocolo de SENASA.
Cuando se realizó la identificación de la entomofauna en los árboles de Ficus se tomó en cuenta aquellos individuos que tenían signos y síntomas de enfermedad asociada con plagas en toda o parte de la copa, ramas, ramitas y/o fuste. Se realizó la captura de los mismos; se preservó, se envió, caracterizó e identificó con los métodos que se mencionaron en el proyecto de tesis.
2.3.2. Duración del trabajo en campo
Se tomaron los datos y se colectaron los insectos desde el 30 de mayo del 2014 hasta el 06 de abril del 2015. Teniendo en cuenta que la evaluación en la estación de invierno de los distritos fue se cuatro semanas para las zonas del este, oeste, norte y sur; sin embargo fueron seis semanas para la zona moderna por tener una mayor cantidad de distritos. Para las evaluaciones de verano fueron
2 semanas para las cuatro primeras zonas y 4 semanas para la zona moderna;
por la misma razón explicada anteriormente.
Para la identificación de la entomofauna se realizó un pre muestreo para tener una idea de lo que posiblemente se encontraría. Este se realizó el 26 de mayo del 2014. Posteriormente se realizaron cuatro salidas para la identificación en los meses de junio, agosto, octubre y diciembre de manera que se tenga una idea de lo que puede haber antes de muestrear y evaluar.
2.3.3. Evaluación de los árboles de ficus
Para medir la abundancia se aplicó la prueba del 7, metodología que siguen en SENASA, 2001. Consistió en evaluar 7 ramas y 7 hojas, las primeras fueron tomadas de la zona este, oeste, norte y sur de la copa del árbol, una rama del comienzo de la copa, otra de la parte media interior de la copa y por último una del final de la copa, obteniendo así 7 ramas. Seguidamente el mismo día o el siguiente se llevó las ramas a las instalaciones de SENASA para su evaluación.
Una vez dentro de los invernaderos se registraron las plagas presentes en la séptima hoja de cada porción de rama de 15 a 20 cm aproximadamente.
Finalmente las ramas con el resto de hojas se colocaban en cajas de vidrio donde al cabo de 2 o 3 días se podían observar y capturar a los parasitoides y/o predadores emergidos del ficus.
2.3.4. Registro de la Entomofauna encontrada
Se registró en campo de acuerdo a los formatos manejados en SENASA – Lima.
Se colectó las muestras con las metodologías descritas en el proyecto de tesis.
Finalmente se identificó a nivel laboratorio con ayuda de los respectivos especialistas que trabajan en las diferentes instalaciones de dicha institución.
2.3.5. Colecta de los insectos presentes en los árboles de ficus
Se realizaron las colectas de la entomofauna presente en el los arboles de ficus, bajo la metodología correspondiente a la FAO, 2008. Donde se empacó cuidadosamente a los especímenes en un tubo o frasco pequeño con papel tisú o algodón (cada uno) para evitar daño. Los insectos pequeños pueden preservarse en alcohol de 75%. Se colocó las etiquetas de identificación (escritas con lápiz o con tinta indeleble negra sobre el papel) dentro de los contenedores. Todos los especímenes fueron cuidadosamente etiquetados con el nombre del recolector, fecha de recolección, sitio y cualquier información sobre el hospedante (especie, tamaño y edad). Finalmente se obtuvo una colección de referencia cuidadosamente etiquetada de todos los insectos, para su posterior identificación a cargo del personal especializado de SENASA.
2.3.6. Proceso de identificación de la entomofauna en árboles de Ficus
Para la identificación de trips, pulgones, querezas y mosca blanca se realizaron micropreparados de los individuos adultos junto a los métodos de colección y técnicas de montaje. Estas fueron realizadas con el tratamiento cáustico y a temperatura ambiental; están ampliamente referidos en el trabajo de Medina, 1961. En los montajes se empleó bálsamo de Canadá o solución Hoyers como medio de montaje, seguidamente se dejó secar los micropreparados en posición horizontal en el Slides Warmer a 45°C por dos semanas o más para su posterior manipulación, caracterización y reconocimiento.
Para los insectos grandes (+ 100 ml) se procedió con la metodología de Collecting and Preserving insects and mites: Techniques and Tools, de acuerdo al Museo Nacional de Historia Natural de Washington D.C. – Metodología seguida por (Nuñez Sacarías, 2014)
Generación de la ficha de identificación
Se envió los especímenes colectados en cada uno de los distritos a la Sub Dirección de Control Biológico, área de manejo integral de plagas de SENASA- Lima, dejándose dichas muestras a cargo del personal especializado bajo el correcto rellenando del formato para su posterior emisión ficha identificación. ´
2.4. PROCEDIMIENTO 2.4.1. Fase de pre campo
Se consolidó la información de los distritos a los cuales se realizará la visita.
Se colectó información de F. benjamina y F. microcarpa sobre su biología y posibles plagas recurriendo a la búsqueda electrónica, revisión de libros, revistas y tesis de la biblioteca especializada de la Sub dirección de control Biológico – Dirección de Sanidad Vegetal – SENASA, Lima.
Las salidas de campo se realizaron en coordinación con el asesor, co-asesor y con las instituciones.
2.4.2. Fase de Campo
La investigación se realizó en la provincia de Lima.
El área de trabajo comprendió los distritos seleccionados con anterioridad.
En cada distrito se ubicaron los sectores de muestreo (según las zonas de vida) y sub sectores (parques) debidamente ubicados con grados UTM con ayuda de un GPS.
En cada sub sector se colectaron insectos a los cuales se les realizó s respectiva identificación.
Las muestras de los insectos de las zonas en estudio fueron identificadas con las claves taxonómicas y el apoyo de la “UCDSV” – Unidad Centro de Diagnóstico de Sanidad Vegetal - SENASA e instituciones a fines.
La validación taxonómica y dendrológica de las especies forestales en estudio se realizaron con el apoyo de la Área de Manejo Forestal, Facultad de Ciencias Forestales y del Ambiente – UNCP.
Todo el proceso y desarrollo del proyecto se ejecutó con tomas de vistas fotográficas las que fueron incluidas en el anexo.
2.4.3. Fase post campo o gabinete
La etapa de identificación de los insectos se realizó con el apoyo de los laboratorios de SENASA (Servicio Nacional de Sanidad Agraria), con ayuda del co-asesor y textos relacionados al tema.
Los datos se registraron en formatos que emplea SENASA, Lima durante las salidas al campo, donde se asignó tiempos prudenciales para cada lugar de muestreo.
2.5. PROCESO DE RECUPERACIÓN DE PARASITOIDES
Seguidamente al proceso de colección insitu de la entomofauna presente en los árboles de Ficus, se realizó la colecta de órganos u organismos dañados, que posteriormente se incubaron en los laboratorios especializados de control biológico del SENASA – Lima.
Dichas muestras se colocaron cajas de vidrio; las cuales a su vez contenían un taper pequeño circular con agua, para tratar de conservar la humedad dentro de la caja y se asemeje a la humedad del medio ambiente.
Finalmente se realizó un monitoreo diario o interdiario de estos órganos dañados. Donde se observó que los parasitoides lograron emerger, los mismos fueron capturados y micro-montados, para su posterior caracterización e identificación.
2.6. PROCESAMIENTO DE LA INFORMACIÓN OBTENIDA
Se realizó la recopilación de datos en las fichas de evaluación, se analizó mediante cuadros e histogramas en Microsoft Excel en porcentajes de distribución y abundancia de la entomofauna. Finalmente se ordenó las fotografías tomadas en el proceso de ejecución en los arboles ornamentales de Ficus.
III. RESULTADOS
3.1 ENTOMOFAUNA REGISTRADA EN FICUS EN LA PROVINCIA DE LIMA.
Tabla 1. Relación de la entomofauna registrada a lo largo de todo el periodo de la investigación.
I. Plagas:
1. Singhiella simplex 2. Aleurodicus cocois 3. Greenidea ficicola
4. Ceroplastes cirripediformis 5. Pulvinaria sp.*
6. Chrysomphalus aonidum 7. Chrysomphalus dyctiospermi 8. Abgrallaspis cyanophylli**
9. Gynaikothrips uzeli
II. Parasitoides:
1. Encarsia sp1 2. Encarsia sp2**
3. Signiphora aleyrodis**
4. Signiphora sp. **
5. Scutellista cyanea 6. Aphytis holoxantus 7. Aphytis sp1**
8. Aphytis sp2**
III. Predadores:
1. Ceraeochrysa cincta 2. Chrysoperla externa 3. Montandoniola moraguesi 4. Harmonia axyridis
5. Nephaspis isabelae*
6. Scymnobius galapagoensis**
7. Toxomerus sp.*
8. Allograpta exotica**
* Entomofauna encontrada solo en invierno.
** Entomofauna encontrada solo en verano.
3.1.1 Especies fitófagas ordenadas según su posición taxonómica y descripción.
A. Singhiella simplex (Singh, 1931) (Figs 3-6) Orden Hemiptera Linnaeus, 1758
Suborden Sternorrhyncha Superfamilia Aleyrodoidea Familia Aleyrodidae, Westwood, 1840
Subfamilia Aleyrodinae Género Singhiella
Singhiella simplex (Singh, 1931) NOMBRE COMÚN: “Mosca Blanca del Ficus”, “Ficus Whitefly”.
HOSPEDEROS Y DISTRIBUCIÓN: Se han encontrado infestando F.
benjamina, también se han visto en F. altísima, F. bengalensis, F. macrocarpa, y F. maclellandii. Otros hospederos incluyen a F. aurea, F. microcarpa, F. lyrata y F. macllandii. Esta mosca blanca puede ser encontrada eventualmente en otras especies de ficus.
HABITO: S. simplex se encontró por ambos lados de las hojas de F.
microcarpa con poblaciones muy numerosas y en el caso de F. benjamina su presencia fue menor y sólo en el envés del follaje. La “mosca blanca del Ficus” se alimenta principalmente de las hojas (haz y envés) de sus plantas hospederas, por lo que el daño directo que causa es la succión constante de savia. Puede cubrir porciones considerables del follaje, dando un mal aspecto, lo que demerita la condición estética de los árboles; en infestaciones fuertes, el follaje se aprecia notoriamente clorótico.
CARACTERÍSTICAS DE RECONOCIMIENTO: La mosca blanca del ficus se asemeja a una mosca blanca típica; se parece a una polilla pequeña. Las alas son de color blanco con una tenue banda marrón a lo ancho de las alas. Las
etapas inmaduras (huevos, ninfas y cámaras pupales) se pueden encontrar en el envés de las hojas. Las ninfas son ovales, planas, y relativamente translúcidas.
Las pupas son ovales, planas, con los ojos rojos y miden cerca de 1,3 milímetros de largo por 1 milímetro de ancho. Actualmente se está estudiando la biología de esta mosca blanca, sin embargo, probablemente tiene varias generaciones por año. Los huevos los ponen generalmente en el envés de hojas, eclosionan en ninfas móviles moviéndose alrededor de la hoja hasta que comienza a alimentarse. Desde entonces hasta que emergen como adultos, son inmóviles permaneciendo en el mismo lugar en la planta. Con proyecciones de serosidades que se proyectan de la ninfa.
DAÑO: Presenta las hojas amarillas o cloróticas, defoliación rápida y muerte regresiva de las ramas. Ha llegado a ser una plaga de importancia en Florida, Estados Unidos, al alimentarse de las hojas de varias especies de Ficus y consecuentemente provocar la defoliación de los árboles. La mosquita blanca es más comúnmente encontrada infestando F. benjamina
B. Aleurodicus cocois (Curtis) Morgan, 1892 (Figs 7-10) Orden Hemiptera Linnaeus, 1758
Suborden Sternorrhyncha Superfamilia Aleyrodoidea Familia Aleyrodidae, Westwood, 1840
Subfamilia Aleurodicinae Género Aleurodicus Douglas
Aleurodicus cocois (Curtis)
SINONIMIA: Aleyrodes cocois Curtis, 1846. Aleurodicus cocois (Curtis) Morgan, 1892. Aleurodicus anonae Morgan, 1892.
NOMBRE COMÚN: “Mosca blanca del espiral”
HOSPEDEROS Y DISTRIBUCIÓN: Se encuentra en las zonas calidad de Perú y Chile. En Chile es considerada como la especie Aleurodicus cercana a cocois.
La distribución conocida de A.cocois comprende Centro América, México y Sud América hasta Brasil.
Son plagas muy polífagas. La especie detectada en Arica se ha encontrado en F.
benjamina “gomero”, Nerium oleander “laurel rosa”, “chololo”, Persea americana
“palto”, Mangifera indica “mango”, Bougainvillea sp “papelillo” Prunus armeniaca
“damasco”, Fraxinus americana “fraxinus ash”, Psidia guajaba “guayabo”, Musa sp. “plátano”, Citrus sp “cítricos”, Punica granatum “granado”, Passiflora edulis maracuyá, palmeras y otras plantas ornamentales.
HABITO: La hembra deposita los huevos en el envés de las hojas en forma desordenada en secreciones céreas de trayecto en espiral. Las ninfas emergen y se ubican en las hojas, donde una vez fijadas se mantienen en el mismo lugar durante todo su desarrollo, movilizándose sólo como adultos.
Presenta 4 estados ninfales, en el último de los cuales pasa al estado de cámara pupal, del cual emerge el adult
