UNIVERSIDAD NACIONAL DEL CENTRO DEL PERÚ

UNIVERSIDAD NACIONAL DEL CENTRO DEL PERÚ FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS

ESCUELA ACADÉMICA PROFESIONAL DE AGRONOMÍA

TESIS

PRESENTADO POR EL BACHILLER:

MELVIN DANIEL LLANOS YAURI

PARA OPTAR EL TÍTULO PROFESIONAL DE INGENIERO EN CIENCIAS AGRARIAS

ESPECIALIDAD AGRONOMÍA SATIPO, PERÚ

2015

CRECIMIENTO DE LAS VARIEDADES DE Coffea arabica L.

CATIMOR Y CATURRA CON INOCULACIÓN DE SUELO MICORRIZADO EN VIVERO TEMPORAL DE IPOKI – RÍO

NEGRO.

ASESOR

M Sc. José Manuel Alomía Lucero

A

Dios por darme la vida, paz y tranquilidad, para ser un buen profesional.

mis padres Oscar y Flavia y hermanos Jorge y Jemmyl por su incondicional apoyo, durante toda una vida.

A

AGRADECIMIENTOS

 Al Mg. Saúl Efraín Rojas Medina docente de la Facultad de Ciencias Agrarias Satipo de la Universidad Nacional del Centro del Perú por los conocimientos y experiencias brindadas durante mi formación profesional.

 Al M.Sc. Carlos Faustino Marcelo Oyague docente de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad Nacional del Centro del Perú, por lo conocimientos y experiencias brindadas durante mi formación profesional.

 Al M.Sc. Pedro Nolasco Arizapana Anccaasi docente de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad Nacional del Centro del Perú, por lo conocimientos y experiencias brindadas durante mi formación profesional.

 Al Ing. Edwin Hugo Mendoza Juárez docente de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad Nacional del Centro del Perú, por lo conocimientos y experiencias brindadas durante la elaboración de la tesis.

 Quiero agradecer también la ayuda incondicional y contribución con la tesis de muchos amigos que hoy en día siguen trabajando en la investigación y algunos realizan labores fuera de la provincia de Satipo; aquí sus nombres: Ing. JAVIER URBANO FUENTES DONAYRES, Ing. EDWAR RAUL QUISPE PALOMINO, Ing. CARLOS MALPARTIDA SEDANO, muchas gracias

ÍNDICE

Pág.

RESUMEN

I. ^INTRODUCCIÓN 01

II. MARCO TEÓRICO 02

2.1. Antecedentes de micorrizas en café 02

2.2. Cultivo de café 03

2.3. Micorrizas 03

2.4. Beneficio de los hongos micorriticos 06

2.5. Fisiología de la simbiosis 06

2.6. Efectos de la micorriza 07

2.7. Dosis óptima 08

III. MATERIALES Y MÉTODO 10

3.1. Lugar de ejecución 10

3.2. Insumos, materiales y equipos 11

3.3. Método 11

3.4. Actividades realizadas en la ejecución del experimento 14 3.5. Variables en las que se medirán las respuestas 15

3.6. Procesamiento estadístico 16

IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 17

4.1. Análisis de las variables respuesta de catimor y caturra 16 4.2. Evaluación cualitativa de las unidades experimentales 25 4.3. Estimación de suelo micorrizado para inoculo 26

V.

28

VI.

29

VII.

30

ANEXOS

33

LISTA DE CUADROS

Pág.

4.1. Análisis de varianza de la altura (cm) de C. arabica con 04 meses, tratadas

con suelo micorrizado. 16

4.2. Prueba de comparación de promedios de altura (cm) de C. arabica con

modelo Tukey. 17

4.3. Análisis de varianza del número de hojas (unidades) de C. arabica con 04

meses, tratadas con suelo micorrizado 18

4.4. Análisis de varianza del diámetro (mm) de tallos de C. arabica con 04

meses, tratadas con suelo micorrizado 18

4.5. Prueba de comparación de promedios del diámetro (mm) de tallos de C.

arabica con modelo Tukey. 19

4.6. Análisis de varianza del área (cm²) foliar de C. arabica con 04 meses,

tratadas con suelo micorrizado. 19

4.7. Prueba de comparación de promedios del área (cm²) foliar de C. arabica

con modelo Tukey. 20

4.8. Análisis de varianza del peso (g) fresco de la parte aérea de C. arabica con

04 meses, tratadas con suelo micorrizado. 21

4.9. Prueba de comparación de promedios del peso (g) fresco de la parte aérea

de C. arabica con modelo Tukey. 21

4.10. Análisis de varianza del peso (g) fresco de la raíz de C. arabica con 04

meses, tratadas con suelo micorrizado. 22

4.11. Prueba de comparación de promedios del peso (g) fresco de la raíz de C.

arabica con modelo Tukey 23

4.12. Prueba de apariencia de las variedades Catimor y Caturra sometidas a

fertilización biológica con suelo micorrizado. 24

4.13. Estimación de altura de C. arabica según dosis de suelo micorrizado 26 LISTA DE GRÁFICOS

01. Influencia de las dosis de inoculación de suelo micorrizado en altura de

las plantas de café. 25

RESUMEN

La investigación se realizó en el fundo Llanos en un vivero temporal, ubicado en el Centro Poblado de Ipoki, del distrito de Río Negro-Satipo, a una altitud de 600 msnm, con el objetivo de determinar el efecto de suelo micorrizado en el crecimiento de altura, diámetro de tallo, área foliar, peso fresco de la parte aérea, peso fresco de la raíz y apariencia de las plantas en dosis gradientes de 20, 40 y 60 gramos por planta y determinar el modelo matemático para estimar la dosis adecuada de inóculo mediante la función de crecimiento de las variedades de Coffea arabica L, variedad Catimor y Caturra. Después de 120 días de inoculación las variable altura total, diámetro de tallo, área foliar, peso de la parte aérea, peso de la raíz y apariencia de las plantas control fueron significativamente inferiores al de la unidades tratadas con suelo micorrizado.

Asimismo no se encontró diferencia estadística significativa entre los resultados de las variables respuesta, variedad Catimor y Caturra. Sin embargo se observó que las unidades experimentales tratadas con 60 gramos de suelo micorrizado tuvieron un crecimiento promedio de altura 18,98 cm; diámetro 2,1 mm, área foliar 14,99 cm², peso de la parte aérea 7,05 gramos, peso de la raíz 1,21 gramos con la variable cualitativa aceptable. La dosis adecuada estimada mediante el modelo de regresión de crecimiento está entre 70 y 80 gramos por planta.

I. INTRODUCCIÓN

La producción del café orgánico, es resultado de un manejo ecológico basado en el uso óptimo de los recursos naturales y subproductos orgánicos, obviando insumos externos, productos como plaguicidas y fertilizantes químicos, en algunos casos sustituyéndolas por materias orgánicos, aceptados por las certificadoras orgánicas (Guzmán, 2003).

En las últimas décadas se le ha dado especial importancia a los hongos micorrízicos, particularmente a las endomicorrizas, con base en los efectos benéficos que estos micosimbiontes proveen a sus hospedantes; por lo que el manejo que tienen estos endófitos tiene uso potencial en los diferentes procesos de propagación de plantas, aunque puede aplicarse en campo, con diversas restricciones, la principal aplicación de estos hongos es en aquellos sistemas que requieren de una fase de vivero, antes que se liberen a campo (Yusimy, 2007).

Los caficultores en el distrito de Río Negro de zonas con suelos de baja fertilidad tienen parcelas que producen poca cantidad y calidad de café, repercutiendo en bajos ingresos familiares lo cual limita su desarrollo personal, educativo y baja calidad de vida. Utilizando técnicas como micorrización podemos plantearles alternativas viables de bajo costo, para incrementar la producción de sus cosechas.

Con los antecedentes se plantea el problema ¿Cuál es la dosis adecuada de inoculo de suelo micorrizado y su efecto en el crecimiento de plantones de café variedad Catimor y Caturra, en la zona de Ipoki – Río Negro? La hipótesis propuesta fue; La dosis de 60 gramos de inoculo de suelo micorrizado por planta es adecuada, para probar la hipótesis se planteó los siguientes objetivos:

 Determinar el efecto de suelo micorrizado en el crecimiento de altura, diámetro de tallo, área foliar, peso fresco de la parte aérea, peso fresco de la raíz y apariencia de plantas, con dosis gradientes de 20, 40 y 60 gramos por planta

 Determinar el modelo matemático para estimar la dosis adecuada de inóculo mediante la función de crecimiento.

II. MARCO TEÓRICO

2.1. ANTECEDENTES DE MICORRIZAS EN CAFÉ.

La producción del café orgánico, es resultado de un manejo ecológico basado en el uso óptimo de los recursos naturales y subproductos orgánicos, minimizando el uso de insumos externos y evitando el uso de plaguicidas y fertilizantes químicos, en algunos casos sustituyéndolas por insumos orgánicos, aceptados por las certificadoras orgánicas (Guzmán, 2003).

Según Feniagro (2010), en viveros se da un adelanto entre 25 y 50 días en la producción de plantas con la aplicación de micorriza, la producción de área foliar se incrementa entre 10 y 263 % con respecto a los testigos.

Después de una época seca de 4 meses se encontró que las plantas de café micorrizadas presentaron 74.22% de sobrevivencia en comparación con 36.25% de las no micorrizadas (104% de incremento de resistencia a la sequía). Esto comprueba que las plantas micorrizadas son más resistentes al estrés de agua ya que cuentan con una mayor capacidad de exploración en el suelo y mayor eficiencia en la extracción de nutrientes gracias a sus hongos simbiontes (Feniagro, 2010).

Un trabajo realizado en Brasil demostró que plantas inoculadas pueden tener un incremento en la producción de grano de 72%, lo que representa un incremento económico. Hay evidencia experimental de que se ha mantenido el efecto positivo sobre el rendimiento de cafeto en las primeras cosechas de la plantación (Siqueira et al., 1993).

Pero ¿qué es lo que sucede entre el suelo, la planta y los hongos? Lo que ocurre es una simbiosis entre la planta (raíces) y el hongo por medio del suelo, en el que ambos se benefician. Las raíces toman del hongo todos los nutrientes que necesitan del suelo y el hongo toma de la planta el carbono para su desarrollo. También estos

hongos ayudan a prevenir enfermedades en la planta durante su desarrollo (Mestre, 1993).

2.2. CULTIVO DE CAFÉ.

La especie Coffea arabica constituye alrededor del 99% del café producido en el mundo, la variedad Caturra es originario de Brasil, se caracteriza por presentar porte bajo, tronco grueso, ramas laterales con numerosas ramificaciones secundarias, lo que le da a la planta un aspecto vigoroso y compacto. El Caturra, es más precoz y productivo que las líneas comunes Typica y Bourbón, los frutos a la madurez adquieren el rojo vinoso, en otro instante amarillo (Castañeda, 1982).

Existen numerosas especies de cafeto y diferentes variedades de cada especie. Las más importantes comercialmente son conocidas como Arabica y Robusta o Canephora. Ambas fueron halladas originalmente salvajes en regiones africanas. El 70% del café que se consume en el mundo pertenece a la especie Coffea arabica y se cultiva particularmente en América y en algunas regiones de África y Asia. El 30%

restante del consumo está representado por la Coffea canephora o café robusta, la cual por sus condiciones especiales y resistencia a la roya, es sembrada en África.

Ambas especies se cultivan en distintos climas y altitudes: altura, para arabica y zona baja para canephora (CMC, 1992).

2.3. MICORRIZAS.

Las micorrizas fueron descubiertas por el botánico alemán Frank en 1885 en las raíces de algunos árboles forestales. Sin embargo, recién en 1900 el francés Bemard puso de manifiesto su importancia estudiando las orquídeas (Biología, 2005).

La utilización de las micorrizas como biofertilizantes no implica que se pueda dejar de fertilizar, sino que la fertilización se hace más eficiente y puede disminuirse la dosis a aplicar desde comúnmente 50 - 80 % y en ocasiones hasta un 100 %. Se plantea que de las cantidades de fertilizantes aplicadas, sólo se aprovecha un 20 %, y el resto normalmente se filtra o se lixivia sin remedio; con la aplicación de las micorrizas, puede ser recuperado por las plantas un porcentaje mucho mayor (Pérez, 2000).

En las últimas décadas se le ha dado especial importancia a los hongos micorrízicos, particularmente la micorriza arbuscular, con base en los efectos benéficos que estos micosimbiontes proveen a sus hospedantes; por lo que el manejo que tienen estos

endófitos tiene uso potencial en los diferentes procesos de propagación de plantas.

Aunque puede aplicarse en campo, con diversas restricciones, la principal aplicación de estos hongos es en aquellos sistemas que requieren de una fase de vivero, antes que se liberen a campo (Yusimy, 2007).

En el caso de microbios específicos como las bacterias y hongos, algunos de ellos viven pegados a las raíces de plantas que tienen vainas, y esta convivencia hace que los nutrientes que se encuentran en el aire se bajen y fijen en la tierra, dando como resultado que la tierra tenga una mayor cantidad de nutrientes (Garro, 2006).

Aproximadamente el 85% de las especies vegetales viven en simbiosis con una gran cantidad de hongos del suelo. Ésta comunidad de vida es denominada mocorriza, la que se subdivide en dos tipos, según la forma de vida conjunta: endomicorriza y ectomicorriza (Arpalia, 2008).

En las endomicorriza las hifas de los hongos penetran en el tejido cortical de la raíz de la planta y provocan una infección progresiva de las células de la corteza. En este proceso la endomicorriza o micorriza vesículo-arbuscular (MVA) forma en las células de la corteza extremos de hifas ramificadas, similares a un árbol (arbúsculos), que actúan en calidad de órganos nutritivos, mediante los cuales tiene lugar el metabolismo simbiótico entre hongo y planta. Además se forman vesículas como órganos de reserva. Las endomicorrizas se encuentran en muchas plantas herbáceas (inclusive en plantas de cultivo, también en plantas leñosas, tales como palmeras, café, té, cacao, cítricos) (Arpalia, 2008).

Ectomicorrizas, son las formaciones que se observan en el orden de las coníferas.

Las hifas de los hongos envuelven las raíces de las plantas, penetran intracelularmente en el parénquima de la corteza, sin infectar sus células. La ectomicorrizase desarrolla sobre todo en coníferas (Arpalia, 2008).

Están ampliamente dispersas en la naturaleza y se estima que el 10% de la flora mundial presenta este tipo de asociación. Principalmente las familias pinaceas, betulaceas, fagáceas, ericáceas y algunas myrtaceas, junglandaceas y salicaceas (Biologia, 2005).

Los hongos que forman esta micorriza son, los conocidos hongos de sombrero, como amanita y boletus. Sólo en Norte América son más de 2000 especies. En su mayoría Basiodiomycetes y algunos Ascomycetes. Muchos de estos hongos pueden ser cultivados en cultivo puro, aislados de su planta huésped (Biología, 2005).

La dispersión de esporas por el aire, el agua y los animales pequeños es importante en la distribución de los hongos formadores de micorrizas arbusculares, especialmente con respecto a los suelos severamente degradados y alterados, y los suelos agrícolas que han quedado bien sin cultivo de cobertura o donde se han cultivado especies de plantas no micorrizadas durante largos periodos de tiempo.

Estas zonas suelen tener un número muy bajo de esporas u otros propágulos de hongos y la importación de las esporas de las zonas adyacentes se convierten en crítico para la revegetación de áreas degradadas y para la producción de cultivos en zonas agrícolas (Feniagro, 2010).

2.3.1. Tipos de micorrizas

Las micorrizas han sido agrupadas, con base en la anatomía de las plantas colonizadoras en: ectomicorrizas, endomicorrizas y un grupo intermedio denominado ectendomicorrizas (Sánchez, 1999).

Clases de micorrizas: Las micorrizas se han venido clasificando con base en su estructura, morfología y modo de infección en dos tipos principales:

ectomicorrizas y endomicorrizas. Este ultimo de divide en varios subtipos:

ectendomicorrizas, arbustoides, monotropicales, aricoides, orquídeas y las arbusculares (Sieverding, 1991).

a) Ectomicorrizas o micorrizas ectotróficas

En estas micorrizas las hifas del hongo envuelven los segmentos de raíces colonizadas y se entretejen alrededor de ellas formando una estructura anatómica denominada manto, característica de esta simbiosis; apartir del manto, se desprenden hifas que colonizan el medio y cordones hifales denominados rizomorfos, los cuales pueden dar origen a cuerpos fructíferos epigeos o hipogeos. En general, en la literatura revisada los hongos asociados pertenecen a las subdivisión es basidiomycotina y ascomycotina (Bowen, 1994).

Las ectomicorrizas son relativamente poco frecuentes: entre un 3 y un 5 % de las plantas terrestres establecen este tipo de simbiosis. Su mutualismo se ha reportado especialmente con plantas de importancia forestal, como los pinos, robles, abedules, encinas,sauces, tilos o nogales (Sadanandan y Brown, 1997).

El extremo de una raíz ectomicorrizada típicamente está cubierto por un manto de hifas, como una vaina, que puede ser desde una capa floja hasta seudo-parenquimatica. Desde este manto se extiende una red de hifas entre las primeras capas de células de la corteza radical y rara vez llegan hasta la endodermis, pero sin entrar en el interior de las células, de aquí el nombre de ectomicorrizas. Esta red se llama "red de Hartig", donde las hifas también pueden tener muy variadas formas. Desde el manto hacia afuera se extiende la red miceliar, incluso llegando a formar cordones especializados en la conducción de sustancias. Las ectomicorrizas están ampliamente dispersas en la naturaleza y se estima que el 10% de la flora mundial presenta este tipo de asociación. Principalmente las familias pinaceas, betulaceas, fagaceas, y también ericaceas y algunas myrtaceas, junglandaceas y salicáceas (Popoff, 2004).

b) Endomicorrizas o micorrizas endotróficas.

Se caracterizan por la penetración del hongo intracelularmente, la ausencia de manto y las acentuadas modificaciones anatómicas en las raíces no visibles a simple vista. Dentro de las endomicorrizas se distinguen varios tipos (Maldonado y Ramírez, 1997).

2.4. BENEFICIOS DE LOS HONGOS MICORRÍTICOS

Para las plantas verdes: Incrementan el área fisiológicamente activa en las raíces.

Incrementan la captación de las plantas de agua y nutrientes como fósforo, nitrógeno, potasio y calcio del suelo. Incrementan la tolerancia de las plantas a las temperaturas del suelo y acidez extrema causadas por la presencia de aluminio, magnesio y azufre. Proveen protección contra ciertos hongos patógenos y nematodos. Inducen relaciones hormonales que producen que las raíces alimentadoras permanezcan fisiológicamente activas por periodos mayores que las raíces no micorrizadas. Para el hongo: reciben principalmente carbohidratos y vitaminas desde las plantas (Roger y Stanier, 1992).

2.5. FISIOLOGÍA DE LA SIMBIOSIS

El beneficio que aporta la simbiosis micorritica a las plantas está determinado por el micelio externo del hongo, ya que este posee mayor capacidad de absorción de los nutrientes del suelo mediante la extensa red de hifas que el hongo pueda generar, de

este modo, la actividad del micelio coadyuva en la función de la raíz cuando se ha agotado los nutrimentos en el suelo (Dakessian, 1986).

Según Potrille y Pedraza (1995), la inoculación con HMA altamente eficaces mejoran en gran medida el estado nutricional de las plántulas de café y su establecimiento después del trasplante.

El principal efecto de los hongos micorriticos es la aportación de fosforo. En este sentido la planta micorrizadas presentan mayores tasas de absorción de fosforo a través de sus hifas que las plantas no micorrizadas (Abbott y Robson, 1991).

La simbiosis de planta y hongos es mutualista porque recibe los fotosintatos de la planta, se estima que el hongo requiere del 1 al 17% de los carbohidratos suministrados por la planta, para la producción de biomasa de las raíces, la demanda de los hongos limita la producción de biomasa en las plantas, además los hongos necesitan carbohidratos para la producción de esporas (Sánchez, 1997).

Se han comprobado que micronutrientes como Zn, Cu, Bo, y Mo, son tomados activamente por las hifas de los hongos y transportados para la planta como Fe y Mn, generalmente en mayores concentraciones en las plantas micorrizadas, por lo tanto se dice que la principal función de las MA es el incremento de volumen del suelo explorado y el aumento de la eficiencia de absorción de nutrientes de la solución del suelo (Sánchez, 1997).

La inoculación de las plantas con hongos micorrizógenos provoca, de manera general, un marcado incremento en los procesos de absorción y traslocación de nutrientes como: N, P, K, Ca, Mg, S, Zn, Cu, Mo, Fe, Mn, entre otros (Smith & Read, 1997). De hecho, la presencia de micorrizas en los suelos, moviliza una gran cantidad de nutrientes que antes no estaban a disposición de las plantas, por lo que incrementa la fertilidad de éstos (Smith y Read, 1997)

2.6. EFECTOS DE LA MICORRIZA

Las hifas del hongo crecen extensivamente desde la raíz hacia el suelo, donde desarrollan una red tridimensional de micelio especializado en colonizar y explorar muy eficazmente los microhábitats del mismo, para captar elementos minerales y agua. Las hifas externas del hongo actúan realmente como «puentes», que superan la zona de «agotamiento» en nutrientes que rodea la raíz y llega a distancias de varios centímetros de la superficie de la misma. Se considera que la función del

micelio externo es particularmente crítica para la captación de nutrientes poco móvil, como son fósforo, nitrógeno y algunos micronutrientes (Maldonado JM & Ramírez GA., 1997).

Se ha observado que en los suelos con bajos contenido de fosforo disponible, las plantas con micorrizas tienen mayores tasas de crecimiento que las plantas si ellas.

Las micorrizas parecen modificar las propiedades de la absorción por el sistema radical a través de: el desarrollo de hifas en el suelo, provenientes de las raíces, la absorción de fosforo por las hifas, la translocación de fosfato a grandes distancias por las hifas, la transferencia de fosfato desde el hongo a las células de la raíz y, como resultado del mejoramiento de su alimentación con fosfato, las plantas incrementan la absorción de otros macronutrientes, tales como K y S, y micronutrientes Cu y Zn (Smith y Gianinnazzi-Parson, 1998).

Las plantas micorrizadas obtiene otros beneficios, como: control biológico para algunos patógenos provenientes del suelo, e incremento de la tolerancia de la planta a ellos, el efecto positivo sobre el desarrollo y distribución de biomasa, mejoramiento de la tolerancia a condiciones de estrés hídrico y salinidad, producción de hormonas estimulantes y reguladoras de crecimiento vegetal, incremento de la parte aérea/raíz de la planta micorrizada, aportes en la recuperación del suelo por ser formadores de agregados del suelo, uso potencial en suelos degradados o áridos en programas de revegetación, buena interacción con organismos fijadores de nitrógenos y otros microorganismos benéficos de la rizosfera (Turipana, 2004).

2.7. DOSIS ÓPTIMA.

La dosis recomendada por el Dr. Erich Raddatz es de cinco g en semillero, 60 g en vivero y 120 g en campo. Esta fue probada por (Romero Oseguera, 2006) quien realizó un estudio con diferentes dosis de Mycoral® a la siembra y obtuvo los mejores resultados con cinco g en semillero, 60 g en almacigo y 120 g al trasplante a campo (Raddatz, 2001).

La ley de los rendimientos decrecientes (Mistcherlicht) consiste, a medida que aumentamos las dosis de un elemento fertilizante disminuye el incremento de cosecha que se consigue por cada unidad fertilizante suministrada, hasta llegar un momento en que los rendimientos no solo no aumentan sino que disminuyen (Fertiberia, 2002).

La función de producción, expresa la cifra máxima de producción obtenida aplicando distintas cantidades de uno o varios insumos, los rendimientos decrecientes es una expresión utilizada con frecuencia y que está relacionada con la función de producción, y quiere decir que la el producto total no siempre aumentará con los insumos variables adicionales, sino que en algún punto determinado se incrementará a una tasa más lenta o disminuirá (Castle et, 1999).

III. MATERIALES Y MÉTODO

3.1. LUGARDE EJECUCIÓN:

El presente trabajo de investigación, se realizó en el fundo “Llanos” ubicado en el Centro Poblado de Ipoki, distrito de Rio Negro, provincia Satipo. La ubicación geográfica y política se indica a continuación:

a. Ubicación política

Región : Junín

Provincia : Satipo

Distrito : Río Negro

Lugar : Centro Poblado Ipoki ¨ b. Ubicación geográfica

Latitud Sur : 11° 15’ 03” de la Línea Ecuatorial

Longitud Oeste : 74° 42’ 49” del meridiano de Greenwich

Altitud : 600 msnm

3.1.1. HISTORIAL DE CAMPO

El terreno donde se instaló el experimento fue usado como biohuerto durante los años 2009 y 2010.

3.1.2. CARACTERÍSTICAS DEL SUSTRATO.

La muestra analizada indica que es de textura franco arenoso (arena 77,00%, limo 13,56%, arcilla 9,43%), de reacción neutro (pH 6,85), materia orgánica bajo (1,75%), presentó un contenido muy Alto de fósforo (71,60 mg.kg^-1), contenido medio de potasio (16,62 mg.kg^-1) y la capacidad de intercambio catiónico alto (9,28 cmol.kg^-1), la acidez cambiable es muy baja (0,00 cmol.kg^-1) (Fuente: Laboratorio agrícola KIPATSI).

3.1.3. CARACTERÍSTICAS CLIMÁTICAS.

Temperatura : 24 °C en promedio Precipitación Anual : 2 204 mm.

Humedad Relativa : 85%

Clima : Sub tropical húmedo Fuente : (ONERN, 1976).

3.2. INSUMOS, MATERIALES Y EQUIPOS 3.2.1. INSUMOS

 Semilla de café Var catimor y caturra

 Sustrato.

 Inóculo de suelo micorrizado.

 Bolsas 4*7’.

3.2.2. MATERIALES

 Machete.

 Lampones.

 Tamiz.

3.2.3. EQUIPOS

 Computadora.

 Balanza analítica.

 Cámara fotográfica.

 Navegador Garmin Montana 650.

3.3. MÉTODO

a) UBICACIÓN Y LIMPIEZA DEL TERRENO

Se eliminó malezas, estacas, rastrojos y todo material que impedía la preparación del terreno.

b) DISPONIBILIDAD DE INÓCULO (SUELO MICORRIZADO)

Se adquirió suelo micorrizado procedente del piso forestal de Pinus patula.

3.3.1. FACTORES EN ESTUDIO a) VARIABLES CONSTANTE

Los aspectos que se citan son considerados como generales para toda la investigación.

 Clima (temperatura, precipitación, vientos, humedad relativa).

 Labores Culturales.

 Ataque de plagas y enfermedades.

 Manejo del cultivo.

b) VARIABLES DE ESTUDIO:

FACTOR A: Variedades de Café a1= Catimor

a2=Caturra

FACTOR B: dosis de Fertilización

b1= 0 gramos de inóculo de suelo micorrizal.

b2= 20 gramos de inóculo de suelo micorrizal.

b3= 40 gramos de inóculo de suelo micorrizal.

b4= 60 gramos de inóculo de suelo micorrizal.

c) COMBINACIÓN DE LOS NIVELES DE LOS FACTORES A Y B . Tratamientos Combinación de factores

T1 a1b1

T2 a1b2

T3 a1b3

T4 a1b4

T5 a2b1

T6 a2b2

T7 a2b3

T8 a2b4

3.3.2. DISEÑO EXPERIMENTAL

El tipo de diseño utilizado fue el Diseño Completamente al Azar (DCA) con arreglo factorial dos variedades, cuatro dosis y 3 repeticiones.

3.3.3. MODELO DE LAS OBSERVACIONES El modelo aditivo lineal a utilizar fue:

Donde:Y_ijk = Observación cualquiera U = Media general

A_i = Efecto del i – ésimo Variedad Bj = Efecto de la j – ésima dosis

AB_ij = Efecto de la i– ésimo j – ésima interacción Eijk = Efecto del error Experimental

3.3.4. POBLACIÓN Y MUESTRA

La población fue de 25 plantas por unidad experimental, de café variedad Catimor y Caturra, haciendo un total 600 plantas en todo el experimento.

La muestra estuvo constituida por 5 plantas de café, elegidas al azar; de la fila central de cada tratamiento en estudio; resultando en total 120.

3.3.5. CARACTERÍSTICAS DEL EXPERIMENTO

 Número de tratamientos : 08

 Numero de repeticiones por tratamiento : 03

 Distancia entre tratamientos : 0.40 m

 Número de plantas/U.E. : 25

 Número total del experimento : 600 plantas de café

 Peso de sustrato por bolsa : 675 g

 Área total del experimento : 19.04 m²

3.4. ACTIVIDADES REALIZADS EN LA EJECUCIÓN DEL EXPERIMENTO a. TRAZADO Y DISTRIBUCIÓN DE PARCELAS

Se realizó la demarcación de las unidades experimentales utilizando estacas, wincha, cordel y rafia. La distribución de los tratamientos en cada uno de los suelos se realizó según el croquis experimental.

b. SELECCIÓN DE SEMILLAS.

Se recolectó de un cafetal de 18 años de variedad caturra y catimor de tercio medio de la planta recolectado de la misma finca y despulpado a mano que luego se fueron desechando los granos deficientes tales como caracoles, triángulos y gigantes.

c. SIEMBRA DE LAS SEMILLAS.

Realizado en una cama germinadora de 1m² zarandeada sin terrones, se utilizó para ello 1 kilogramo de café pergamino de variedad caturra y catimor.

d. RIEGO DEL GERMINADERO.

Se realizó dos veces al día (uno en la mañana y otra en la tarde) hasta el término de su germinación.

e. PREPARACIÓN DEL SUSTRATO

.

Para el sustrato se utilizó tierra de baja fertilidad tomado del mismo terreno zarandeada con una malla de 0,5 centímetros, se mezcló con sustrato de inoculo de suelo micorrizado. A las que se adicionó inóculo de suelo micorrizado a razón de 0; 20; 40 y 60 gramos por bolsa, según tratamientos, luego se procedió a embolsar en bolsas de polietileno de color negro 4 x 8 perforadas, una cantidad de 600 bolsas.

f. REPIQUE DE PLÁNTULAS.

Se realizó a los 50 días después de la siembra al germinador en día nublado seleccionando las mejores plántulas bien formadas eliminando las débiles, las de raíces torcidas para así garantizar la calidad de la futura planta; para el trasplante se utilizó un palo cónico de punta aguda para hacer un hoyo al centro de la bolsa, finalmente se aprieta la tierra contra las raíces.

g. DESHIERBO.

Se realizó en forma manual cada 15 días, haciendo un total de 8 deshierbo durante el periodo de investigación.

h. RIEGO DEL VIVERO.

Realizado cada 4 días, en horas de las mañanas haciendo el uso de una regadora manual metálica de 5 galones.

3.5. VARIABLES EN LAS QUE SE MEDIERON LAS RESPUESTAS.

Las evaluaciones se realizaron a los 120 días después del trasplante.

a. ALTURA DE PLANTA/(cm)

Se realizó la medición con la ayuda de una regla de 30 cm, desde el ras del suelo hasta el ápice terminal de crecimiento donde los resultados se expresan en centímetros.

b. DIÁMETRO DE TALLO/(mm)

Se realizó la medición con la ayuda de una regla vernier a una altura de 4 centímetros del ras del suelo, los resultados se expresan en milímetros.

c. NUMERO DE HOJAS POR PLANTA/(Unidad)

Consistió en contar el número de hojas que tenía cada planta. Los resultados se expresaron en unidades y se transformó a .

d. ÁREA FOLIAR/(cm²)

Se realizó a 120 días después del trasplante, y consistió en dibujar la silueta de 2 hojas del tercer par de hojas del cafeto, luego se cortó la silueta y se pesó en una balanza analítica, se midió un área de 4 cm² y se pesó. Los resultados se obtuvieron por regla de tres simple y se expresaron en centímetros cuadrados.

e. PESO FRESCO DE LA PARTE AÉREA DE LA PLANTA/(g)

Se realizó el pesado con la ayuda de una balanza, se pesó la parte aérea de la planta cortadas del ras de suelo para obtener los resultados que se expresan en gramos.

5 .

0 X

f. PESO FRESCO DE LA RAÍZ/(g)

Se realizó el pesado de las raíces de las plantas, sin tierra, con la ayuda de una balanza, los resultados se expresan en gramos.

g. APARIENCIA DE LA PLANTA/(escala hedónica)

Se realizó utilizando una escala hedónica, dando los siguientes valores, según la apariencia: muy buena (5), buena (4), regular (3), mala (2), muy mala (1 ).

(Fuente: Elaboración propia).

3.6. PROCESAMIENTO ESTADÍSTICO

Para el análisis estadístico de los resultados se utilizó el análisis de variancia al 0,05 (ANVA), además se utilizó la prueba de comparación de medias Tukey a un nivel de 0,05 de significación.

IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

4.1. ANÁLISIS DE LAS VARIABLES RESPUESTA DE CATIMOR Y CATURRA.

Las plántulas de las variedades Catimor y Caturra (factor A) de C. arabica, fueron trasplantadas a contenedores previamente preparados según los tratamientos que consistían en tres dosis de suelo micorrizado y un control. Después de 04 meses de inoculación se analizó la variable respuesta de las unidades experimentales como muestran los siguientes cuadros:

CUADRO 4.1. Análisis de varianza de la altura (cm) de C. arabica de 04 meses, tratadas con suelo micorrizado.

Fuente de variación Suma de

Cuadrados G.l Cuadrado

Medio Razón-F Valor-p

Variedades (A) 2,0592 1 2,05920 2,49 0,1343

Dosis (B) 23,9185 3 7,97284 9,63 0,0007

Interacción AB 1,3876 3 0,46255 0,56 0,6498

Residuos 13,2451 16 0,82782

Total 40,6105 23

S = 0,910 Promedio =17,91 CV= 5,08%

En el cuadro 4.1, se muestra el análisis de varianza de la altura de las plántulas de las variedades Catimor y Caturra (factor A) tratadas con tres dosis de suelo micorrizado (factor B) y un grupo control sin tratamiento. La última columna del cuadro indica que existe diferencia estadística altamente significativa de la variable altura de las unidades experimentales tratadas con diferentes dosis de suelo micorrizado, porque el valor p = 0,0007 es mucho menor que 0,01. En las otras fuentes de variación no existen diferencias estadísticas de altura de plantas. Para conocer qué dosis tiene mayor efecto se realizó la prueba de comparación de las medias de altura con el modelo de Tukey que muestra el siguiente cuadro 4.2.

CUADRO 4.2. Prueba de comparación de promedios de altura (cm) de C. arabica, con modelo Tukey.

Dosis de suelo micorrizado (g)

Media de altura de

plantas Grupos Homogéneos

60 ^{18,9800 a}

40 18,4550 a

20 17,8883 a

0 16,3150 b

ALS (T) 0,05 = 1,50358

Al realizar la prueba de comparación de promedios de altura de las variedades Catimor y Caturra se halló dos grupos de plantas con alturas homogéneos; las micorrizadas que tuvieron 18,98; 18,46 y 17,89 cm, la amplitud o rango de 1,097 cm no es significativo según la prueba de Tukey a un nivel de alfa 0,05. Sin embargo existe diferencia estadística significativa contrastando con el promedio de altura de las plantas del grupo considerado como testigo o control que alcanzó sólo 16,32 cm. La diferencia se atribuye a que las plantas inoculadas en el proceso de nutrición fueron ayudadas por los hongos simbiontes; los resultados concuerdan con los obtenidos por varios investigadores que enfatizan las riquezas en nutrientes (en especial nitrógeno y potasio) del material orgánico empleado (Potrillé y Pedraza, 1995) y su efecto beneficioso sobre los parámetros morfológicos del cultivo del cafeto en la fase de vivero. (Mestre, 1993). Se han demostrado además los múltiples beneficios que reportan las micorrizas a las plantas, sobre todo en la absorción y transporte de los nutrientes fundamentales para su desarrollo, presentes en el suelo o en la materia orgánica empleada (Koide, 1991; Marschner y Dell, 1994; Sánchez y otros, 1997).

El mismo concepto tienen Smith y Gianinnazzi-Parson (1998) y Yusimy (2007) al afirmar que los hongos simbiontes brindan a sus hospedantes moléculas de fósforo por las hifas mejorando su alimentación con fosfato, las plantas incrementan la absorción de otros macronutrientes, como K y S, y micronutrientes Cu y Zn, mejorando la nutrición y el crecimiento de las plantas.

CUADRO 4.3. Análisis de varianza del número (unidades) de hojas de C. arabica con 04 meses, tratadas con suelo micorrizado .

Fuente de variación Suma de

Cuadrados Gl Cuadrado

Medio Razón-F Valor-P

Variedades (A) 0,00375 1 0,00375 0,18 0,6764

Dosis (B) 0,10215 3 0,03405 1,64 0,2196

Interacción AB 0,00868 3 0,00289 0,14 0,9349

Residuos 0,33207 16 0,02075

Total 0,44665 23

S = 0,144 Promedio = 3,10 CV= 4,64%

El número de hojas de las variedades Catimor y Caturra fueron evaluadas después de 120 días de la inoculación con suelo micorrizado cuyos resultados muestra el cuadro 4.3. En el análisis de varianza del número de hojas no existen diferencias estadísticas significativas de las fuentes de variación como muestra la última columna del cuadro; en todos los casos los valores de 0,674; 0,2196 y 0,9349 son mayores que el nivel alfa 0,05 escogidos para la prueba de varianza. El número de hojas es una variable discreta, se supone depende del factor genético de las variedades y no del hongo simbionte que ayuda a las plantas en la absorción de nutrientes y no en cambio del número de las unidades experimentales

CUADRO 4.4. Análisis de varianza del diámetro (mm) de tallos de C. arabica con 04 meses, tratadas con suelo micorrizado.

Fuente de variación Suma de

Cuadrados Gl Cuadrado

Medio

Razón-

F Valor-P

Variedades (A) 0,063038 1 0,063038 2,34 0,1454

Dosis (B) 0,428546 3 0,142849 5,31 0,0099

Interacción AB 0,006346 3 0,002115 0,08 0,9707

Residuos 0,430467 16 0,026904

Total 0,928396 23

S = 0,164 Promedio = 2,45 CV= 6,69%

Al realizar el análisis de varianza de la variable respuesta diámetro de tallos de las unidades experimentales se encontró que existe diferencia estadística altamente significativa de los efectos de dosis de suelo micorrizado como muestra el cuadro 4.4, en la última columna el valor p= 0,0099 es menor que alfa 0,01 escogido para

5 .

0 X

esta prueba, esto indica que al menos una dosis influye en el diámetro de tallos de plantas de C. arabica. La comparación de los promedios del factor dosis de suelo micorrizado muestra el cuadro 4.5.

CUADRO 4.5. Prueba de comparación de promedios del diámetro (mm) de tallos de C. arabica, con modelo Tukey.

Dosis de suelo micorrizado (g)

Media del diámetro de

tallos Grupos Homogéneos

60 2,61167 a

40 2,52500 a

20 ^2,41833 a b

0 ^2,25333 b

ALS (T) _0,05 = 0,271062

Al realizar la prueba de comparación de promedios de diámetro de tallos de las variedades Catimor y Caturra se encontró dos grupos de plantas con alturas homogéneas como se muestra en el cuadro 4.5. En el primer grupo están las plantas inoculadas con 40 y 60 gramos de suelo micorrizado cuyas alturas alcanzaron de 2,53 – 2,61 mm, estos resultados estadísticamente no son significativos, sin embargo son significativamente mayor que las micorrizadas con 20 gramos y sin inoculación o testigo que sólo alcanzaron 2,42 y 2,25. La simbiosis micorritica en las plantas está determinado por el micelio externo del hongo, ya que el simbionte tiene mayor capacidad de absorción de los nutrientes del suelo mediante la extensa red de hifas que penetra sitios donde el sistema radicular no llega, de este modo, la actividad del micelio contribuye en la función de la raíz como ha observado también Dakessian (1986) y Garro (2006).

CUADRO 4.6. Análisis de varianza del área (cm²) foliar de C. arabica con 04 meses, tratadas con suelo micorrizado.

Fuente de variación Suma de

Cuadrados Gl Cuadrado

Medio Razón-F Valor-P

Variedades (A) 0,0012 1 0,0012 0,03 0,9578

Dosis (B) 57,1357 3 19,0452 45,64 4,5691E-21

Interacción AB 1,1864 3 0,3955 0,95 0,4410

Residuos 6,6772 16 0,4173

Total 65,0006 23

S = 0,646 Promedio = 13,06 CV= 4,95%

En el cuadro 4.6, se muestra el análisis de varianza del área foliar, como en los análisis anteriores solamente existe diferencias altamente significativas entre los niveles del factor dosis de suelo micorrizado, por lo que fue necesario la comparación de los promedios con el modelo Tukey a un nivel de significación de alfa 0,05 muestra que muestra el cuadro 4.7.

CUADRO 4.7. Prueba de comparación de promedios del área (cm²) foliar de C.

arabica, con modelo Tukey.

Dosis de suelo micorrizado (g)

Media del área foliar de las hojas de las

plantas

Grupos Homogéneos

60 14,9900 a

40 13,7717 b

20 12,6983 c

0 ^10,7883 d

ALS (T) _0,05 = 1,06757

Al realizar la prueba de comparación de promedios del área foliar de C. arabica con Tukey se halló cuatro grupos de plantas con alturas homogéneas; las inoculadas con 60 gramos llegó tener 14,99 cm² significativamente mayor que los otros tratamientos, las plantas del grupo testigo sólo alcanzó 10,79 cm² significativamente inferior que las plantas inoculadas con suelo micorrizado. El incremento del área foliar en las plantas tratadas aumenta gradual y positivamente con el aumento de dosis de suelo micorrizado, FINEAGRO (2010) reporta que el área foliar con la aplicación de las micorrizas se incrementa entre 10 y 263% con respecto a los testigos.

Maldonado y Ramírez (1997) reportaron sobre la función del micelio externo de los simbiontes que captan los nutrientes poco móvil, como son fósforo, nitrógeno y algunos micronutrientes en beneficio de la planta particularmente las hojas.

CUADRO 4.8. Análisis de varianza de peso (g) fresco de la parte aérea de C.

arabica de 04 meses, tratadas con suelo micorrizado.

Fuente de variación Suma de

Cuadrados Gl Cuadrado

Medio Razón-F Valor-P

Variedades (A) 0,4760 1 0,4760 1,46 0,2449

Dosis (B) 20,2446 3 6,7482 20,66 0,000009

Interacción AB 0,4842 3 0,1614 0,49 0,6915

Residuos 5,2272 16 0,3267

Total 26,4320 23

S = 0,572 Promedio = 5,93 CV= 9,64%

En el cuadro 4.8 se muestra el análisis de varianza de peso fresco de la parte aérea de las plantas Catimor y Caturra tratada con suelo micorrizado y del grupo de plantas control. La fuente correspondiente a la dosis creciente del factor B indica que existe diferencias altamente significativo porque la probabilidad p 0,00009 es menor que 0,01, esto indica que al menos una dosis influye en el peso de la parte aérea de las plantas. La comparación de los promedios del factor dosis, con el modelo Tukey a un nivel de significación de alfa 0,05 muestra el cuadro 4.9.

CUADRO 4.9. Prueba de comparación de promedios del peso (g) fresco de la parte aérea de C. arabica, con modelo Tukey.

Dosis de suelo micorrizado (g)

Media del peso de la parte aérea de las

plantas

Grupos Homogéneos

60 7,04833 a

40 ^6,46500 a b

20 5,58833 b

0 4,61833 c

ALS (T) 0,05 = 0,94457

Al realizar la prueba de comparación de promedios del peso de la parte aérea de las variedades Catimor y Caturra con Tukey se halló tres grupos de plantas; las micorrizadas que tuvieron un peso promedio de 7,05; 6,47 y 5,59 g, significativamente mayor que el peso de las plantas control. Además se observa la gradiente del efecto del inóculo; cuando se incrementa suelo micorrizado a las unidades experimentales aumenta gradualmente el peso de la parte aérea de las variedades.

El contraste entre unidades experimentales micorrizadas y no micorrizadas, es porque las hifas de los hongos incrementan el volumen de suelo explorado aumentando la eficiencia de absorción de nutrientes, incrementando el peso de la parte área de las plantas de C. arabica, como observó Sánchez (1997) que coincide los resultados del análisis. Se han comprobado que micronutrientes como Zn, Cu, Bo, y Mo, son tomados activamente por las hifas de los hongos y transportados para la planta como Fe y Mn, generalmente en mayores concentraciones en las plantas micorrizadas, por lo tanto se dice que la principal función de las micorrizas es el incremento de volumen del suelo explorado y el aumento de la eficiencia de absorción de nutrientes de la solución del suelo.

CUADRO 4.10. Análisis de varianza del peso (g) fresco de la raíz de C. arabica de 04 meses, tratadas con suelo micorrizado.

Fuente de variación Suma de

Cuadrados Gl Cuadrado

Medio Razón-F Valor-P

Variedades (A) 0,0063375 1 0,0063375 0,92 0,3526

Dosis (B) 0,1928460 3 0,0642819 9,30 0,0009

Interacción AB 0,0049125 3 0,0016375 0,24 0,8693

Residuos 0,1106000 16 0,0069125

Total 0,3146960 23

S = 0,083 Promedio = 1,12 CV= 7,44%

Realizando el análisis de varianza de peso fresco de la raíz de las variedades Catimor y Caturra se encontró diferencia estadística altamente significativa entre los niveles del factor dosis (p 0,0009 < 0,01). No hay diferencias estadísticas significativas para las otras fuentes de variación. La comparación de los efectos promedios del factor dosis se procesó con el modelo Tukey a un nivel de significación de alfa 0,05 muestra el cuadro 4.11.

CUADRO 4.11. Prueba de comparación de promedios de peso (g) fresco de la raíz de C. arabica, con modelo Tukey.

Dosis de suelo micorrizado (g)

Media del peso de la

raíz de las plantas Grupos Homogéneos

60 ^{1,20500 a}

40 1,19667 a

20 1,07833 a b

0 0,98833 b

ALS (T) 0,05 = 0,137397

Según la prueba de Tukey las plantas; inoculadas con suelo micorrizado tuvieron peso promedios de sus raíces 1,21 y 1,20 gramos significativamente mayor que del grupo testigo. La aplicación de 20g de suelo micorrizal a las variedades muestra similar peso de la raíz al del grupo testigo como muestra el cuadro 4.11 debido a la cantidad suelo micorrizado. Teniendo referencias de Roger y Stanier (1992) se comprueba que las plantas micorrizadas incrementan el área fisiológicamente activa en las raíces, aumentan la captación de agua y nutrientes como fósforo, nitrógeno, potasio y calcio del suelo. Incrementan la tolerancia de las plantas a las temperaturas del suelo y acidez extrema causadas por la presencia de aluminio, magnesio y azufre. Proveen protección contra ciertos hongos patógenos y nematodos. Inducen relaciones hormonales que producen que las raíces alimentadoras permanezcan fisiológicamente activas por periodos mayores que las raíces no micorrizadas. Los hongos reciben del hospedante principalmente carbohidratos y vitaminas para sus procesos biológico; asimismo Abbott y Robson (1991) reportó que los hongos simbiontes aportan fosforo; la planta micorrizadas presentan mayores tasas de absorción de fosforo a través de sus hifas del hongo que las plantas no micorrizadas, como sabemos el fósforo mejora el crecimiento de las raíces, como se puede observar a mayor dosis de micorrizas, mayor crecimiento de raíces.

4.2. EVALUACIÓN CUALITATIVA DE LAS UNIDADES EXPERIMENTALES

Para evaluar la variable cualitativa apariencia (color, tamaño, sanidad, forma) se ha utilizado la prueba de comparación de Kruskal-Wallis porque esta variable fue calificada con escala gradual (3, 4 y 5) cuyos resultados muestra el cuadro 4.12.

CUADRO 4.12. Prueba de apariencia de las variedades Catimor y Caturra sometidas a fertilización biológica con suelo micorrizado

Dosis de suelo micorrizado

Tamaño Muestra

Rango Promedio

H Calculado (Hc)

Valor de Probabilidad

(p)

Ji Cuadrada (X²)

0 gramos 30 20.5333

100.39 1.28E-21 11.34

20 gramos 30 44.55

40 gramos 30 84.4167

60 gramos 30 92.5

La prueba de Kruskal-Wallis evalúa la hipótesis nula de que las medianas dentro de cada una de las dosis es la misma. Para el proceso de cálculo primero se combinó los datos de todas las dosis y se ordenan de menor a mayor. Después, se calculó el rango promedio para los datos de cada dosis. Puesto que el valor-P es menor que 0,01 existe una diferencia estadísticamente altamente significativa entre las medianas con un nivel del 99,0% de confianza. Esto indica la mejor apariencia de las variedades es tratando con 60 gramos de suelo micorrizado.

4.3. ESTIMACIÓN DE SUELO MICORRIZADO PARA INÓCULO

Fig.1. Influencia de las dosis de inoculación de suelo micorrizado en altura de las plantas de café.

En la figura 01, se observa que al incrementar las dosis de inoculación de suelo micorrizado, se incrementa la altura de las plantas de café. La ecuación de crecimiento para estimar la altura de plantas al aplicar dosis crecientes de micorrizas es:





y  e

CUADRO 4.13. Estimación de altura de C. arabica según dosis de suelo micorrizado.

Altura de C. arabica según dosis de suelo

micorrizado Dosis Altura estimada

20 17.43732458 25 17.64845068 30 17.86213304 35 18.0784026 40 18.2972907 45 18.51882902 50 18.74304967 55 18.96998512 60 19.19966824 65 19.43213229 70 19.66741095 75 19.9055383 80 20.14654882

El cuadro 4.13. Es la estimación de la altura de las variedades Catimor y Caturra con el modelo de crecimiento, se observa que al aumentar la dosis a más de 75 gramos el incremento de altura es mínimo, en consecuencia la dosis adecuada para la producción inicial de las variedades estudiadas estaría entre 70 – 80 gramos.

V. CONCLUSIONES

1. En el fundo “Llanos” localizado en el centro poblado Ipoki del distrito de Rio Negro después de 120 días de inoculación con suelo micorrizado a las variedades Catimor y Caturra de Coffea arabica, se determinó las variables fenotípicas: altura total (16,32), diámetro de tallo (2,25 mm), área foliar 10,79 cm²) , peso fresco de la parte aérea (4,62 g), peso fresco de la raíz (0,99 g) y apariencia de las plantas (regular) estos valores de las unidades testigo fueron significativamente inferiores que las tratadas con suelo micorrizado. Asimismo no se encontró diferencia estadística significativa entre los resultados de las variables respuesta Catimor y Caturra; Comparando el efecto de las dosis de suelo micorrizado entre 20 – 60 gramos se determinó que las unidades experimentales de Catimor y Caturra inoculadas con 60 gramos de suelo micorrizado tuvieron un crecimiento promedio de altura 18,98 cm; diámetro 2,1 mm, área foliar 14,99 cm², peso de la parte aérea 7,05 gramos, peso de la raíz 1,21 gramos con la variable cualitativa aceptable 2. El mejor modelo para estimar la dosis adecuada de suelo micorrizado en el

crecimiento de altura de las variedades Catimor y Caturra con un coeficiente de determinación 0,55 es la función de regresión de la forma:





y  e

VI. RECOMENDACIONES

6.1 Para la crianza de plantas de las variedades Catimor y Caturra de Coffea arabica se debe utilizar suelo micorrizado procedente del piso forestal de Pinus patula o Pinus radiata a una dosis de 70 gramos de suelo micorrizado por bolsa de 675 gramos de sustrato preparado.

6.2 Implementar el laboratorio de la Facultad de Ciencias Agrarias para identificar los recursos biológicos como son los hongos formadores de micorriza.

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